陳曉麗,魏澤鋒,于春娜,牛煥付,王雪楠,楊愛軍
(濟(jì)寧醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院生殖醫(yī)學(xué)科,濟(jì)寧 272029)
丙烯酰胺(Acryl amide,AA)外觀呈片狀晶體,無色無味,有毒性,易溶于水、醇等極性溶劑,在采礦業(yè)、造紙業(yè)、污水處理、化妝品和廢物加工工業(yè),丙烯酰胺聚合物常被用作篩選和凝集的輔助劑[1-2]。日常生活中,淀粉類食物如土豆、谷物在高溫(>120℃)烹飪時發(fā)生美拉德反應(yīng)即非酶褐變反應(yīng),此時某類氨基酸如天冬酰胺酸與葡萄糖結(jié)合形成了丙烯酰胺[3-4]。
研究表明,丙烯酰胺通過職業(yè)性接觸、非職業(yè)性接觸(被其污染的飲用水和食物)等進(jìn)入生物體后引起運(yùn)動失調(diào),平衡紊亂,嗜睡,幻覺,記憶喪失等神經(jīng)毒性作用[5-6]。在大鼠的研究中發(fā)現(xiàn)丙烯酰胺最容易通過消化道、呼吸道和破損皮膚進(jìn)入體液循環(huán),也可通過血液進(jìn)入胎盤使胚胎中毒[7-9]。丙烯酰胺在生物體內(nèi)的主要代謝途徑有兩條,其中一個主要途徑是與谷胱苷肽(GSH)結(jié)合,通過谷胱苷肽S轉(zhuǎn)移酶(GST)催化,產(chǎn)生的代謝物 N-乙酰-S-半胱氨酸通過尿液大量排出;另一代謝途徑是丙烯酰胺通過細(xì)胞色素P450發(fā)生環(huán)氧化反應(yīng)形成環(huán)氧丙酰胺(GA)[10-11]。
有關(guān)于雄性SD大鼠的研究發(fā)現(xiàn),丙烯酰胺會影響大鼠睪丸正常的雄性激素分泌,降低血清中睪酮水平;丙烯酰胺還能減小大鼠精液濃度,增加精子畸形率,使得曲細(xì)精管表現(xiàn)出病理學(xué)損傷[12-13]。通過對大鼠、小鼠腹腔注射丙烯酰胺體內(nèi)染毒處理后發(fā)現(xiàn),初級精母細(xì)胞中紡錘體組裝不正常,染色體非整倍體率增加,姐妹染色單體高頻交換和斷裂,在次級精母細(xì)胞中基因突變率增加,DNA容易發(fā)生斷裂[14-15]。丙烯酰胺的雄性生殖毒理作用已經(jīng)有很多報道,但是有關(guān)于其雌性生殖毒理的研究較少,丙烯酰胺既然影響雄性動物精子的發(fā)生和成熟,是否會影響小鼠卵母細(xì)胞減數(shù)分裂過程中,紡錘體的形成,染色體的排布等生理活動,是否會影響卵母細(xì)胞的成熟,受精和早期胚胎的發(fā)育。我們以暴露于丙烯酰胺的ICR雌性小鼠為研究對象,統(tǒng)計其卵母細(xì)胞的成熟率、孤雌激活率、觀察卵母細(xì)胞成熟后紡錘體、染色體形態(tài)和丙烯酰胺對小鼠卵丘顆粒細(xì)胞凋亡的影響,初步探討丙烯酰胺對小鼠卵母細(xì)胞發(fā)育潛能的影響。
1.實驗動物:購于北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司的6~8周健康SPF級雌性ICR小鼠(動物許可證號:SCXK(京)2012-001),體重24~28 g,購買后在本重點(diǎn)實驗室鼠房內(nèi)飼養(yǎng)一周,使之適應(yīng)新環(huán)境。飼養(yǎng)條件為:22~26℃,控光(12 h光照,12 h黑暗),給予生長、繁殖飼料,自由取食飲水,隨機(jī)分組。
2.分組:將實驗小鼠隨機(jī)分為4組:對照組、丙烯酰胺低、中、高劑量組,每組6只。低、中、高劑量組腹腔注射給藥量分別為:5 mg/kg、10 mg/kg、20 mg/kg。對照組腹腔注射生理鹽水,每天1次,連續(xù)藥物處理7 d,給藥后第3天對小鼠腹腔注射10 U PMSG(孕馬血清促性腺激素,寧波三生藥業(yè)),46 h后腹腔注射10 U HCG(寧波三生藥業(yè)),16 h后引頸處死小鼠,取其輸卵管壺腹部。
丙烯酰胺(Acryl amide)、多聚甲醛購自美國Sigma公司;生物體式顯微鏡購自Motic公司;二氧化碳培養(yǎng)箱購自日本三洋電器公司;激光掃描共聚焦顯微鏡購自德國Zeisis公司。
1. 統(tǒng)計成熟卵母細(xì)胞數(shù)量:用一次性無菌注射器針尖劃破輸卵管壺腹部,取卵丘-卵母細(xì)胞復(fù)合體,用透明質(zhì)酸酶消化掉外面的卵丘顆粒細(xì)胞,統(tǒng)計成熟卵母細(xì)胞的數(shù)量。
2. 統(tǒng)計孤雌激活率:將各組獲得的成熟卵母細(xì)胞置于10 mmol/L SrCl2培養(yǎng)液中,孤雌激活處理2.5 h,隨后將卵母細(xì)胞移入不含有SrCl2的培養(yǎng)液中培養(yǎng)3.5 h,隨后觀察到卵母細(xì)胞有1個或者2個原核或者分裂為2個具有原核的細(xì)胞則被視為孤雌激活成功,統(tǒng)計孤雌激活率。
3. 觀察分析丙烯酰胺對小鼠卵母細(xì)胞紡錘體組裝和染色體排列的影響:各組卵母細(xì)胞先于4%多聚甲醛中固定30 min,再移到透膜液孵育30 min,隨后將卵母細(xì)胞用封閉液處理60 min,接著用稀釋的FITC標(biāo)記的α-微管蛋白抗體孵育60 min,PI避光孵育5 min,清洗卵母細(xì)胞3次,將卵母細(xì)胞移到載玻片上的DABCO微滴中,用蓋玻片輕輕蓋上用激光共聚焦顯微鏡觀察,拍照。
4. 利用TUNEL技術(shù)檢測丙烯酰胺對卵丘-卵母細(xì)胞凋亡的影響:各組卵丘-卵母細(xì)胞在4%多聚甲醛中固定30 min后移到新鮮透膜液孵育30 min,隨后將卵母細(xì)胞用封閉液處理60 min,接著用稀釋的TUNEL試劑孵育60 min,用DAPI避光孵育5 min,清洗卵母細(xì)胞3次,將卵丘-卵母細(xì)胞移到載玻片上的DABCO微滴中,用蓋玻片輕輕蓋上用激光共聚焦顯微鏡觀察,拍照。
實驗數(shù)據(jù)用SPSS 18.0進(jìn)行t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
統(tǒng)計各組獲得的小鼠成熟卵母細(xì)胞數(shù)(圖1)。低劑量組卵母細(xì)胞成熟率為(88.5±1.5)%,與對照組[(92.5±1.2)%]相比無統(tǒng)計學(xué)差異(P>0.05);而中、高劑量組卵母細(xì)胞成熟率分別為(79.5±1.7)%和(76.5±1.8)%,顯著低于對照組(P<0.05)。
將各實驗組別卵母細(xì)胞進(jìn)行孤雌激活實驗,孤雌激活率如圖1所示。其中低劑量組孤雌激活率[(78.5±2.6)%]與對照組[(81.5±1.2)%]相仿(P>0.05),而中、高劑量組孤雌激活率[分別為(61.6±3.2)%和(40.3±5.6)%]顯著降低(P<0.05)。
與對照組比較,*P<0.05,**P<0.01圖1 不同劑量丙烯酰胺對小鼠卵母細(xì)胞成熟率和孤雌激活率的影響
丙烯酰胺染毒處理后獲得的各組小鼠卵母細(xì)胞經(jīng)處理后,觀察其紡錘體形態(tài)(圖2)。對照組(圖2A)卵母細(xì)胞紡錘體呈梭型,染色體整齊的排列在赤道板上;低劑量組(圖2B)中,紡錘體表現(xiàn)多極化、明顯呈桶狀;中劑量組和高劑量組缺少兩極,沒有聚集成紡錘形(圖2C、D),并且有染色體丟失沒有排列到赤道板上,赤道板上的染色體排布散亂,甚至呈現(xiàn)彌散狀態(tài),表現(xiàn)出紡錘體組裝過程受到明顯的干擾,從而影響了染色體的正常排列。
丙烯酰胺染毒處理后獲得的卵丘-卵母細(xì)胞經(jīng)處理后,觀察其對卵丘顆粒細(xì)胞凋亡的影響(圖3)。與對照組(圖3A)比較,實驗組(圖3B、C、D)卵丘顆粒細(xì)胞的凋亡數(shù)量有增加趨勢,而且隨著丙烯酰胺濃度的升高,凋亡趨勢愈加明顯。
A:對照組;B~D:低、中、高劑量組;綠色熒光:α-tubulin;紅色熒光:染色體;Bar=25 μm圖2 丙烯酰胺對小鼠卵母細(xì)胞紡錘體形態(tài)和染色體排列的影響(×400)
A:對照組;B~D:低、中、高劑量組;藍(lán)色熒光:未凋亡的顆粒細(xì)胞;紅色熒光:凋亡的顆粒細(xì)胞;Bar=25 μm圖3 丙烯酰胺對小鼠卵丘顆粒細(xì)胞凋亡的影響(×400)
瑞典國家食品管理局和斯德哥爾摩大學(xué)的科學(xué)家于2002年4月發(fā)表學(xué)術(shù)論文,指出高溫加熱的多種食品中含有高濃度的丙烯酰胺,含量比世界衛(wèi)生組織(WHO)規(guī)定的飲水中丙烯酰胺含量高出500倍以上[16-17],這引起了國際社會的強(qiáng)烈反響,人們開始了大量關(guān)于丙烯酰胺的生物毒性效應(yīng)的實驗。
有充分的證據(jù)表明,丙烯酰胺不僅對動物有神經(jīng)毒性,還有生殖毒性和致癌性,雖然目前關(guān)于丙烯酰胺的生殖毒性尚無人群資料可查,但是在一些動物實驗中丙烯酰胺誘發(fā)雌性小鼠早期卵泡閉鎖,黃體生成數(shù)量減少[18]。丙烯酰胺染毒的雄性大鼠曲細(xì)生精小管萎縮發(fā)生病變,精子數(shù)量減少,畸形率增加,精子活力減弱[19]。本實驗通過對雌性小鼠促排卵處理后,比較對照組和各實驗組之間成熟卵母細(xì)胞的數(shù)目、卵母細(xì)胞的孤雌激活率,以及觀察卵母細(xì)胞的紡錘體形態(tài)和染色體排列,分析卵母細(xì)胞外卵丘顆粒細(xì)胞的凋亡,初步評估丙烯酰胺對小鼠卵母細(xì)胞發(fā)育潛能的影響。
本研究發(fā)現(xiàn)經(jīng)過丙烯酰胺處理后,卵母細(xì)胞外圍的卵丘顆粒細(xì)胞的凋亡有增加趨勢。卵丘顆粒細(xì)胞是卵母細(xì)胞與卵泡液之間進(jìn)行物質(zhì)交換的橋梁[20],卵丘顆粒細(xì)胞的LHR(luteinizing hormone receptor)是卵母細(xì)胞發(fā)育過程中所必需的[21],卵丘顆粒細(xì)胞通過細(xì)胞間的胞間連接支持卵母細(xì)胞發(fā)育成熟過程中物質(zhì)需要,卵丘顆粒細(xì)胞的凋亡勢必會降低卵母細(xì)胞的成熟質(zhì)量,影響其發(fā)育潛能。另外,紡錘體的正確組裝是卵母細(xì)胞成熟過程中細(xì)胞核成熟的關(guān)鍵,正常的紡錘體才能牽引著染色體在細(xì)胞周期中正確排列[22],卵母細(xì)胞內(nèi)部超微結(jié)構(gòu)在不同時間和空間上的有序的分子生物學(xué)變化,是卵母細(xì)胞成熟的關(guān)鍵。各個時期沒有差錯的生物學(xué)變化才能使得卵母細(xì)胞成熟并獲得繼續(xù)發(fā)育的潛能。本實驗結(jié)果顯示經(jīng)丙烯酰胺體內(nèi)染毒后,小鼠卵母細(xì)胞會呈現(xiàn)出異常形態(tài)的紡錘體,例如筒形、多極、形態(tài)散亂等;丙烯酰胺干擾了小鼠卵母細(xì)胞成熟發(fā)育過程中紡錘體的正常組裝,影響了細(xì)胞周期中染色體的正常排列,降低了其成熟質(zhì)量。孤雌激活是指通過外界刺激模仿受精過程,使卵母細(xì)胞在沒有精子的條件下被激活,使卵母細(xì)胞繼續(xù)分裂、發(fā)育的過程。早期卵母細(xì)胞的孤雌激活率能夠整體反映卵母細(xì)胞的成熟質(zhì)量,評估卵母細(xì)胞的后續(xù)發(fā)育潛能[21]。在正常的受精過程中,Ca2+發(fā)揮著決定性的作用,介導(dǎo)卵母細(xì)胞的皮質(zhì)反應(yīng),孤雌激活后卵母細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度升高,啟動皮質(zhì)反應(yīng)[23]。本實驗中丙烯酰胺可能改變了卵母細(xì)胞與外界培養(yǎng)液中Ca2+的正常代謝,干擾了卵母細(xì)胞內(nèi)的鈣離子釋放,降低了卵母細(xì)胞成熟質(zhì)量,阻礙了皮質(zhì)反應(yīng)正常發(fā)生,從而使得卵母細(xì)胞的孤雌激活率降低。
卵母細(xì)胞的發(fā)育成熟是一個連續(xù)、復(fù)雜的過程,是隨后卵母細(xì)胞受精、卵裂發(fā)育的基礎(chǔ)和關(guān)鍵,在這個過程中如若發(fā)生差錯可能會導(dǎo)致卵母細(xì)胞發(fā)育成熟異常從而不能正常受精或受精后發(fā)育形成畸形胚胎。在卵母細(xì)胞發(fā)育成熟過程中,mRNA是必不可少的生物分子,轉(zhuǎn)錄子3'端poly(A)尾巴對早期胚胎的發(fā)育調(diào)控起著關(guān)鍵作用[24]。丙烯酰胺進(jìn)入小鼠體內(nèi)經(jīng)過代謝形成環(huán)氧丙酰胺,環(huán)氧丙酰胺會使得mRNA的生物穩(wěn)定性降低,擾亂了卵母細(xì)胞發(fā)育過程中聚腺苷酸化的調(diào)控,影響其正常發(fā)育成熟[25]。
本實驗通過對小鼠卵母細(xì)胞孤雌激活、卵母細(xì)胞細(xì)胞骨架的組裝、卵母細(xì)胞外卵丘顆粒細(xì)胞凋亡的研究發(fā)現(xiàn),丙烯酰胺加劇了小鼠卵丘顆粒細(xì)胞的凋亡,影響了小鼠卵母細(xì)胞成熟。經(jīng)丙烯酰胺體內(nèi)染毒后小鼠卵母細(xì)胞的發(fā)育成熟受到損害,降低了其發(fā)育潛能。雖然丙烯酰胺的毒性作用機(jī)制尚不明確,有待進(jìn)一步的探討,但是丙烯酰胺的毒性作用已經(jīng)證實,其使用必須要嚴(yán)格遵守國家標(biāo)準(zhǔn)和法規(guī),以免危害大眾的健康。
[1] 高景恒,鄭剛,王忠媛. 關(guān)于丙烯酰胺毒性的研究及相關(guān)規(guī)定(文獻(xiàn)復(fù)習(xí))[J]. 中國美容整形外科雜志,2002,13:148-152.
[2] 李紅秀. 丙烯酰胺毒性及檢測方法[J]. 黑龍江醫(yī)藥,2015,28:472-474.
[3] Mottram DS,Wedzicha BL,Dodson AT. Food chemistry:acrylamide is formed in the maillard reaction[J]. Nature,2002,419:448-449.
[4] 韓嘉媛,張淳文. 丙烯酰胺的毒性研究[J]. 衛(wèi)生研究,2006,35:513-515.
[5] Komoike Y,Matsuoka M. Endoplasmic reticulum stress-mediated neuronal apoptosis by acrylamide exposure[J]. Toxicol Appl Pharmacol,2016,310:68-77.
[6] Pennisi M,Malaguarnera G,Puglisi V,et al. Neurotoxicity of acrylamide in exposed workers[J]. Int J Environ Res Public Health,2013,10:3843-3854.
[7] Fennell TR,Snyder R,Hansen B,et al. Dosimetry of acrylamide and glycidamide over the lifespan in a 2-year bioassay of acrylamide in wistar han rats[J]. Toxicol Sci,2015,146:386-394.
[8] Martin SA,Campbell JL,Tremblay RT,et al. Development of a physiologically based pharmacokinetic model for inhalation of jet fuels in the rat[J]. Inhal Toxicol,2012,24:1-26.
[9] Mehri S,Meshki MA,Hosseinzadeh H. Linalool as a neuroprotective agent against acrylamide-induced neurotoxicity in Wistar rats[J]. Drug ChemToxicol,2015,38:162-166.
[10] Ghanayem BI,McDaniel LP,Churchwell MI,et al. Role of CYP2E1 in the epoxidation of acrylamide to glycidamide and formation of DNA and hemoglobin adducts[J]. Toxicol Sci,2005,88:311-318.
[11] Kirman CR,Gargas ML,Deskin R,et al. A physiologically based pharmacokinetic model for acrylamide and its metabolite,glycidamide,in the rat[J]. J Toxicol Environ Health A,2003,66:253-274.
[12] Yang HJ,Lee SH,Jin Y,et al. Genotoxicity and toxicological effects of acrylamide on reproductive system in male rats[J]. J Vet Sci,2005,6:103-109.
[13] Wang H,Ge JY,Zhou ZQ,et al. [Oral acrylamide affects the development and reproductive performance of male rats] [J]. Zhonghua Nan Ke Xue. 2007,13:492-497.
[14] Manière I,Godard T,Doerge DR,et al. DNA damage and DNA adduct formation in rat tissues following oral administration of acrylamide[J]. Mutat Res,2005,580:119-129.
[15] Ghanayem BI,Witt KL,El-Hadri L,et al. Comparison of germ cell mutagenicity in male CYP2E1-null and wild-type mice treated with acrylamide:evidence supporting a glycidamide-mediated effect[J]. Biol Reprod,2005,72:157-163.
[16] Rosén J,Hellen?s KE. Analysis of acrylamide in cooked foods by liquid chromatography tandem mass spectrometry[J]. Analyst,2002,127:880-882.
[17] Ruenz M,Bakuradze T,Eisenbrand G,et al. Acrylamide -A duplicate diet study[J]. Toxicol Lett,2015,238:S67.
[18] Wei Q,Li J,Li X,et al. Reproductive toxicity in acrylamide-treated female mice[J]. Reprod Toxicol,2014,46:121-128.
[19] 宋宏繡,王冉,曹少先,等.丙烯酰胺的雄性生殖毒性[J].中華男科學(xué)雜志,2008,14:159-162.
[20] Shimada M,Richards JAS. Cumulus cells are an essential mediator of ovulation stimuli from granulosa cells to oocyte[J]. J Mammal Ova Res,2015,27:2-10.
[21] Taweechaipaisankul A,Jin JX,Lee S,et al. The effects of canthaxanthin on porcine oocyte maturation and embryo development in vitro after parthenogenetic activation and somatic cell nuclear transfer[J]. Reprod Domest Anim,2016,51:870-876.
[22] Zhang T,Zhang GL,Ma JY,et al. Effects of DNA damage and short-term spindle disruption on oocyte meiotic maturation[J]. Histochem Cell Biol,2014,142:185-194.
[23] Bernhardt ML,Zhang Y,Erxleben CF,et al. CaV3.2 T-type channels mediate Ca2+ entry during oocyte maturation and following fertilization[J]. J Cell Sci,2015,128:4442-4452.
[24] Li J,Cao Y,Xu X,et al. Increased new incRNA-mRNA gene pair levels in human cumulus cells correlate with oocyte maturation and embryo development[J]. Reprod Sci,2015,22:1008-1014.
[25] Aras D,Cakar Z,Ozkavukcu S,et al. In Vivo acrylamide exposure may cause severe toxicity to mouse oocytes through its metabolite glycidamide[J/OL]. PLoS One,2017,12:e0172026.