麗影和紅韻蝴蝶蘭快速繁殖試驗

曾武清，陳柳嬋，曾瑞珍，易懋升，宿慶連，郭和蓉，黎揚輝，謝 利

（1.廣州花卉研究中心，廣東 廣州 510360；2.華南農(nóng)業(yè)大學林學與風景園林學院，廣東 廣州 510642）

麗影和紅韻蝴蝶蘭快速繁殖試驗

曾武清1，陳柳嬋2，曾瑞珍2，易懋升1，宿慶連1，郭和蓉2，黎揚輝1，謝 利2

（1.廣州花卉研究中心，廣東 廣州 510360；2.華南農(nóng)業(yè)大學林學與風景園林學院，廣東 廣州 510642）

以花梗腋芽為材料，研究了蝴蝶蘭新品種麗影和紅韻的快速繁殖技術(shù)。結(jié)果表明，消毒時間對營養(yǎng)芽誘導(dǎo)率有顯著影響，0.1%HgCl2消毒8 min的紅韻蝴蝶蘭營養(yǎng)芽誘導(dǎo)率最高，激素對營養(yǎng)芽誘導(dǎo)率影響不顯著。6-BA濃度、有機附加物和芽數(shù)對叢生芽增殖影響顯著，當6-BA濃度為8.0 mg/L時，麗影和紅韻芽增殖系數(shù)最高，分別為2.31和2.22；添加椰汁更有利于減輕褐變，提高增殖系數(shù)；單芽接入的增殖系數(shù)最高。激素對生根率無顯著影響，但對平均根數(shù)和苗高有顯著影響，在含6-BA 0.1 mg/L＋NAA 1.0 mg/L的培養(yǎng)基上試管苗株高最高，平均根數(shù)最多。以松樹皮為基質(zhì)，麗影和紅韻蝴蝶蘭試管苗移栽成活率分別為91.58%和87.27%。

蝴蝶蘭；新品種；組織培養(yǎng)；快速繁殖；叢生芽

蝴蝶蘭是蘭科蝴蝶蘭屬（Phalaenopsis Blume）植物，市場前景廣闊，其產(chǎn)業(yè)被稱為“農(nóng)業(yè)中的IT產(chǎn)業(yè)”［1］。在我國，蝴蝶蘭已列入植物新品種保護名錄，但目前商業(yè)化生產(chǎn)的蝴蝶蘭品種主要是臺灣或國外選育的品種，因此加快蝴蝶蘭新品種選育和推廣對我國蝴蝶蘭產(chǎn)業(yè)高效可持續(xù)發(fā)展具有十分重要的現(xiàn)實意義。

種苗生產(chǎn)是新品種推廣的基礎(chǔ)，蝴蝶蘭種苗生產(chǎn)主要采用組織培養(yǎng)快速繁殖方法［2-3］。對蝴蝶蘭種苗工廠化生產(chǎn)技術(shù)研究的結(jié)果表明，不同蝴蝶蘭品種工廠化繁殖效率、適宜的快繁途徑、培養(yǎng)基和培養(yǎng)條件不完全相同［4-19］。因此，研究蝴蝶蘭新品種組培快繁技術(shù)，建立新品種種苗工廠化生產(chǎn)技術(shù)體系對加快新品種推廣至關(guān)重要。

麗影蝴蝶蘭是采用幸福鷹蝴蝶蘭和臺大夢幻蝴蝶蘭雜交選育的大紅花條紋盆栽蝴蝶蘭新品種，紅韻蝴蝶蘭是采用五唇蘭和臺大夢幻蝴蝶蘭雜交選育的中小型紫紅花盆栽蝴蝶蘭新品種，分別于2013年和2015年通過廣東省農(nóng)作物品種審定，市場前景廣闊。通過對麗影和紅韻蝴蝶蘭組培快繁技術(shù)進行研究，旨在建立這兩個品種種苗工廠化生產(chǎn)技術(shù)體系，為新品種推廣奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

供試材料為廣州花卉研究中心和華南農(nóng)業(yè)大學合作選育的麗影與紅韻蝴蝶蘭新品種，種植于廣州花卉研究中心從化基地，常規(guī)方法管理。

1.2 試驗方法

1.2.1 外植體消毒 剪取麗影與紅韻蝴蝶蘭帶有休眠芽的花梗，流水清洗表面后把休眠芽的苞片輕輕剝?nèi)?，將花梗剪?～3 cm帶1個休眠芽的小段，洗潔精溶液浸泡5 min，流水沖洗干凈后用0.1%HgCl2溶液消毒8～15 min，再用無菌水沖洗5次。接種時用無菌解剖刀將花梗兩端分別切去0.3～0.5 cm，用無菌鑷子將花梗基部向下插入誘導(dǎo)培養(yǎng)基進行培養(yǎng)。

1.2.2 營養(yǎng)芽誘導(dǎo) （1）HgCl2消毒時間對營養(yǎng)芽誘導(dǎo)的影響：設(shè)8、10、15 min 3個處理，每個處理3次重復(fù)，每個重復(fù)接30個外植體。按1.2.1方法對紅韻蝴蝶蘭花梗進行消毒后，接種到1/2MS+6-BA5.0 mg/L+NAA0.5 mg/L +蔗糖30 g/L+卡拉粉8.0 g/L培養(yǎng)基中，每瓶接1個。

（2）激素對營養(yǎng)芽誘導(dǎo)的影響：將消毒10 min的紅韻蝴蝶蘭花梗腋芽接種到含不同濃度6-BA和NAA的1/2MS+蔗糖30 g/L+卡拉粉8.0 g/L+椰子汁150 mL/L培養(yǎng)基中，每瓶接1個。激素設(shè)3個處理，每個處理3次重復(fù)，每個重復(fù)接30個外植體。

培養(yǎng)50 d后記錄外植體污染數(shù)、褐化死亡數(shù)和形成營養(yǎng)芽數(shù)，計算誘導(dǎo)率、污染率和褐化死亡率：

1.2.3 叢生芽誘導(dǎo) 將誘導(dǎo)出來的營養(yǎng)芽切下并接種到1/2MS+6-BA5.0 mg/L+NAA0.5 mg/L+蔗糖30 g/L+卡拉粉8.0 g/L培養(yǎng)基中繼續(xù)培養(yǎng)，50 d后將長出的叢芽切去小葉，再次接種到新的培養(yǎng)基上培養(yǎng)以獲得較多的叢生芽。

1.2.4 叢生芽增殖 （1）6-BA濃度對叢生芽增殖的影響：選取大小一致的營養(yǎng)芽切去葉片后以單芽接入含不同濃度6-BA的1/2MS+NAA0.5 mg/L+蔗糖30 g/L+卡拉粉8.0 g/L+椰子汁150 mL/L培養(yǎng)基中，每瓶接6芽。6-BA濃度設(shè)6.0、8.0、10.0 mg/L 3個處理，每個處理3次重復(fù)，每個重復(fù)30個芽。

（2）附加物對叢生芽增殖的影響：選取大小一致的營養(yǎng)芽切去葉片后以單芽接入含不同附加物的1/2MS+6-BA5.0 mg/L+NAA0.5 mg/L+蔗糖30 g/L+卡拉粉8.0 g/L培養(yǎng)基中，每瓶接6芽。附加物為土豆（30 g/L）、椰汁（150 mL/L）和香蕉（80 g/L），以不加附加物為對照，每個處理3次重復(fù)，每個重復(fù)30個芽。

（3）芽數(shù)對叢生芽增殖的影響：以1/2MS+6-BA5.0 mg/L+NAA0.5 mg/L+蔗糖30 g/L+卡拉粉8.0 g/L+椰汁150 mL/L為基本培養(yǎng)基，設(shè)單芽、雙芽、三芽、四芽4個處理，每個處理3次重復(fù)，每個重復(fù)30個（叢）芽。培養(yǎng)40 d后記錄芽數(shù)（芽長≥0.5 cm）和褐化死亡的芽數(shù)，計算褐化死亡率和增殖系數(shù)：

1.2.5 生根培養(yǎng) 將生長健康的無根苗（約2 cm高）接種于添加不同濃度6-BA和NAA的1/2MS+蔗糖30 g/L+卡拉粉7.5 g/L+椰汁150 mL/L培養(yǎng)基中，每瓶接6苗。激素設(shè)3個處理，每個處理3次重復(fù)，每個重復(fù)30苗。培養(yǎng)40 d后記錄生根的苗數(shù)、根數(shù)（根長≥0.5cm），測量苗高，計算生根率：

試驗中所用培養(yǎng)基的pH值為5.8，接種后均置于溫度26（±1）℃、光照時間12 h/d、光強1 500～1 800 lx的培養(yǎng)室培養(yǎng)。

1.2.6 移栽 將再生植株帶瓶置于室溫下煉苗1周，然后洗去根部培養(yǎng)基，用0.1%高錳酸鉀溶液浸泡10 min，晾干后植入6號松樹皮（0.6～0.9 cm）基質(zhì)中，常規(guī)管理，2個月后統(tǒng)計成活數(shù)，計算成活率。

試驗數(shù)據(jù)采用Excel 2007和SPSS 17.0進行統(tǒng)計分析，多重比較采用鄧肯氏新復(fù)極差檢驗法。

2 結(jié)果與分析

2.1 紅韻蝴蝶蘭營養(yǎng)芽的誘導(dǎo)

2.1.1 消毒時間對紅韻蝴蝶蘭營養(yǎng)芽誘導(dǎo)的影響 消毒時間對紅韻蝴蝶蘭外植體污染率、褐化死亡率和營養(yǎng)芽誘導(dǎo)率有顯著影響（表1）。在8～15 min內(nèi)，消毒時間越長，污染率越低，褐化死亡率越高，營養(yǎng)芽誘導(dǎo)率越低。消毒8、10 min的褐化死亡率和營養(yǎng)芽誘導(dǎo)率沒有顯著差異，但誘導(dǎo)率顯著高于消毒15 min的處理。因此紅韻蝴蝶蘭外植體適宜的消毒時間為8～10 min。

表1 消毒時間對紅韻蝴蝶蘭營養(yǎng)芽誘導(dǎo)的影響

2.1.2 激素對紅韻蝴蝶蘭營養(yǎng)芽誘導(dǎo)的影響 激素對紅韻蝴蝶蘭營養(yǎng)芽誘導(dǎo)沒有顯著影響（表2）。當6-BA濃度為2.0 mg/L、NAA為0.2 mg/L時，營養(yǎng)芽誘導(dǎo)率最高，褐化死亡率最低；當NAA濃度為0.5 mg/L時，營養(yǎng)芽誘導(dǎo)率隨6-BA濃度的增加而略有增加，但污染率和褐化死亡率隨6-BA濃度的增加而略有下降。因此，適合紅韻蝴蝶蘭營養(yǎng)芽誘導(dǎo)的激素濃度為6-BA2.0 mg/L和NAA0.2 mg/L。

表2 激素濃度對紅韻蝴蝶蘭營養(yǎng)芽誘導(dǎo)的影響

2.2 麗影和紅韻蝴蝶蘭叢生芽的增殖

2.2.1 6-BA濃度對蝴蝶蘭叢生芽增殖的影響 6-BA濃度對紅韻蝴蝶蘭和麗影蝴蝶蘭叢生芽的增殖和褐化死亡影響顯著（表3），6-BA濃度過高或過低均不利于紅韻和麗影蝴蝶蘭的芽增殖。當6-BA濃度為8.0 mg/L，紅韻和麗影蝴蝶蘭的增殖系數(shù)最高，分別為2.31和2.22；6-BA濃度越高，叢生芽的褐化死亡率越高。適合紅韻和麗影蝴蝶蘭叢生芽增殖的6-BA濃度為8.0 mg/L。

表3 6-BA濃度對麗影和紅韻蝴蝶蘭叢生芽增殖的影響

2.2.2 附加物對蝴蝶蘭叢生芽增殖的影響 有機附加物對蝴蝶蘭叢生芽增殖影響顯著（表4）。添加30 g/L土豆汁、150 mL/L椰汁和80 g/L香蕉汁均有利于蝴蝶蘭增殖，并有一定的防褐化效果。添加150 mL/L椰汁時芽增殖系數(shù)最高，紅韻和麗影蝴蝶蘭的芽增殖系數(shù)分別是2.40和2.15，其次是添加土豆汁，添加香蕉汁的效果最差。因此，適合紅韻和麗影蝴蝶蘭芽增殖的有機附加物為150 mL/L椰汁。

表4 附加物對紅韻和麗影蝴蝶蘭叢生芽增殖的影響

2.2.3 芽數(shù)對蝴蝶蘭叢生芽增殖的影響 接種芽數(shù)對蝴蝶蘭叢生芽增殖和褐化死亡影響顯著（表5）。以單芽接入時，紅韻和麗影蝴蝶蘭的芽增殖系數(shù)最高，分別為2.21和2.29；同時褐化死亡率最低。隨著接種芽數(shù)的增加，芽增殖系數(shù)明顯降低，褐化死亡率顯著升高。因此以單芽接入培養(yǎng)基更有利于紅韻和麗影蝴蝶蘭叢生芽的增殖。

表5 芽數(shù)對蝴蝶蘭叢生芽增殖的影響

表6 激素對蝴蝶蘭叢生芽生根的影響

2.3 紅韻和麗影蝴蝶蘭的生根培養(yǎng)

將生長良好、大小一致的無根苗接種于添加不同濃度6-BA和NAA的生根培養(yǎng)基中培養(yǎng)40 d，結(jié)果表明，激素對紅韻和麗影蝴蝶蘭生根率沒有影響，但對生根數(shù)和株高有顯著影響（表6）。當培養(yǎng)基中NAA濃度為1.0 mg/L、6-BA濃度為0.1 mg/L時，紅韻和麗影蝴蝶蘭試管苗的平均根數(shù)最多，分別為3.28和3.23條；平均株高最高，分別為5.96 cm和4.15 cm。

2.4 移栽

以6號松樹皮為基質(zhì)，分別移栽432株麗影和285株紅韻蝴蝶蘭試管苗，2個月后移栽成活率分別為91.58%和87.27%。

3 結(jié)論與討論

組織培養(yǎng)快速繁殖是蝴蝶蘭種苗生產(chǎn)的主要方法。本試驗結(jié)果表明，紅韻蝴蝶蘭花梗采用0.1%HgCl2消毒8 min，營養(yǎng)芽誘導(dǎo)率最高，麗影和紅韻蝴蝶蘭叢生芽增殖適宜的培養(yǎng)基為1/2MS+6-BA 5.0 mg/L+NAA0.5 mg/L+椰汁150 mL/L+蔗糖30 g/L+卡拉粉8.0 g/L，生根壯苗適宜的培養(yǎng)基為1/2MS+6-BA 0.1 mg/L+NAA1.0 mg/L+椰汁150 mL/L+蔗糖30 g/L+卡拉粉8.0 g/L，采用松樹皮移栽試管苗，成活率分別為91.58%和87.27%。上述結(jié)果為麗影和紅韻蝴蝶蘭新品種的種苗工廠化生產(chǎn)和推廣奠定了技術(shù)基礎(chǔ)。

無菌外植體獲得是種苗工廠化生產(chǎn)的首要環(huán)節(jié)。曾德華等［10］的研究表明，蝴蝶蘭花梗用0.1%升汞消毒15 min效果最好，許忠秋［8］認為用0.1%升汞消毒12 min效果最好，沈周高等［9］對V31花梗采用0.1%升汞消毒15 min的方案。本試驗結(jié)果表明，紅韻蝴蝶蘭花梗適宜消毒方案為0.1% HgCl2消毒8 min，這可能與材料及其預(yù)處理不同有關(guān)。激素對紅韻蝴蝶蘭花梗營養(yǎng)芽誘導(dǎo)無顯著影響，這與曾德華等［10］的研究結(jié)果一致。

叢生芽增殖是影響蝴蝶蘭工廠化繁殖效率的關(guān)鍵。潘學峰等［5］研究表明，滿天紅蝴蝶蘭叢生芽發(fā)生有群體效應(yīng)，采用雙芽接比單芽接的增殖效果好。本試驗發(fā)現(xiàn)以單芽接入更有利于紅韻和麗影蝴蝶蘭叢生芽增殖，顯著提高增殖系數(shù)。激素是影響蝴蝶蘭叢生芽增殖效率的關(guān)鍵因素。潘學峰等［5］研究表明，采用6-BA12.5 mg/L+NAA0.05 mg/L，滿天紅蝴蝶蘭叢生芽增殖最好。沈周高等［9］研究表明，V31蝴蝶蘭最佳叢生芽增殖培養(yǎng)基為MS+KT10 mg/L+NAA0.6 mg/L+2，4-D0.2 mg/L，增殖系數(shù)為7.94。武愛龍等［11］發(fā)現(xiàn)大辣椒蝴蝶蘭不定芽增殖和分化的最佳培養(yǎng)基為花寶1號+6-BA6 mg/L+NAA0.2 mg/L，增殖系數(shù)最高達到5.53。許忠秋［8］研究表明，蝴蝶蘭叢生芽增殖的激素配方為MS+BA5 mg/L+NAA 0.1 mg/L，增殖率為2.07%。本試驗發(fā)現(xiàn)，當激素濃度為6-BA8 mg/L+NAA0.5 mg/L時，麗影和紅韻蝴蝶蘭叢生芽增殖最快，說明不同蝴蝶蘭品種增殖培養(yǎng)適宜的激素種類和濃度不完全相同。

褐化是蝴蝶蘭種苗生產(chǎn)中常見的問題［19］。培養(yǎng)基中添加活性炭［20-22］、PVP［20-22］、檸檬酸［20，23］、半胱氨酸［20］、谷胱甘肽［20］、維生素C［20，23］、硫代硫酸鈉［20］以及熱擊處理［24］、暗培養(yǎng)［21-22］等均能有效減輕褐變。本試驗結(jié)果表明培養(yǎng)基中加入150 mL/L椰子汁可防止褐變并促進增殖，這與汪金萍等［19］報道的結(jié)果一致。

［1］ 杜君，王利民，孟月娥，等. 我國蝴蝶蘭產(chǎn)業(yè)發(fā)展現(xiàn)狀及對策研究［J］. 北方園藝，2015（9）：172-175.

［2］ 張偉，喬保建，李冰冰，等. 蝴蝶蘭高效組培快繁及溫室移栽技術(shù)［J］. 江蘇農(nóng)業(yè)科學，2015，43（9）：83-86.

［3］ Chen C C. Application of growth models to evaluate the microenvironmental conditions using tissue culture plantlets of Phalaenopsis SogoYukidian‘V3’［J］. Scientia Horticulturae，2015，191：25-30.

［4］ 魯雪華，郭文杰，徐立暉，等. 蝴蝶蘭花梗節(jié)間段培養(yǎng)繁殖的初步研究［J］．園藝學報，2002，29（5）：491-492.

［5］ 潘學峰，王安石，李海珠. 利用從芽途徑快速繁殖蝴蝶蘭的研究［J］. 海南大學學報（自然科學版），2005，23（1）：47-60.

［6］ 李金雨，洪麗萍. 蝴蝶蘭叢生芽途徑的組織培養(yǎng)技術(shù)［J］. 熱帶作物學報，2010，31（4）：610-613.

［7］ 譚鵬鵬，彭方仁，江榮翠，等. 蝴蝶蘭叢生芽快繁體系的建立［J］. 林業(yè)科技開發(fā)，2013，27（4）：80-84.

［8］ 許忠秋. 蝴蝶蘭組培快繁技術(shù)研究［J］. 安徽農(nóng)學通報，2013，19（12）：23-24.

［9］ 沈周高，任潔，項艷. 蝴蝶蘭‘V31’品種花梗腋芽快繁體系的建立［J］. 安徽農(nóng)業(yè)大學學報，2014，41（3）：435-439.

［10］ 曾德華，郁培義，陳偉玉，等. “滿天紅”蝴蝶蘭花梗組培快繁技術(shù)研究［J］. 熱帶林業(yè)，2014，42（1）：46-49，32.

［11］ 武愛龍，吳建陽，卓海容. 蝴蝶蘭“大辣椒”組織培養(yǎng)與快速繁殖［J］. 福建農(nóng)業(yè)學報，2015，30（31）：1075-1081.

［12］ 楊錄軍，王俊，楊書才，等. 蝴蝶蘭新品種“鄭農(nóng)火鳳凰”的組培快繁技術(shù)研究［J］. 陜西農(nóng)業(yè)科學，2015，61（11）：52-54.

［13］ 徐麗娟，董梅，王永香，等. 激素濃度和配比對蝴蝶蘭離體培養(yǎng)的影響［J］. 青島農(nóng)業(yè)大學學報（自然科學版），2016，33（1）：20-23.

［14］ Ernst R. Effects of thidiazuron on in vitro propagation of Phalaenopsis and Doritaenopsis（Orchidaceae）［J］. Plant Cell，Tissue and Organ Culture，1994，39（3）：273-275.

［15］ Park SY，Murthy HN，Pack KY. Rapid propagation of Phalaenopsis from floral stalk-derived leaves［J］. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant，2002，38（2）：168-172.

［16］ Chugh S，Guha S，Rao IU. Micropropagation of orchids：A review on the potential of different explants［J］. Scientia Horticulturae，2008，122（4）：507-520.

［17］ Van PT，da Silva JAT，Ham LH，et al. Effects of permanent magnetic fields on the proliferation of Phalaenopsis protocorm-like bodies using liquid medium［J］. Scientia Horticulturae，2011，128（4）：479-484.

［18］ Enoki S，Takahara Y. Development of a highly efficient and simple micropropagation system for Phalaenopsis ssing elongated protocorm-like bodies Induced by skotomorphogenesis under dark conditions［J］. Journal of the Japanese Society for Horticultural Science，2014，83（2）：149-155.

［19］ 汪金萍，楊端，楊海軍. 控制蝴蝶蘭組培褐變的研究［J］. 農(nóng)業(yè)科學，2015，35（4）：16-18.

［20］ 劉真華，葛紅，郭紹霞. 蝴蝶蘭組織培養(yǎng)中的褐化控制研究［J］. 園藝學報，2005，32（4）：732-734.

［21］ 王立婭，方正，李英麗，等. 蝴蝶蘭組織培養(yǎng)中防褐化技術(shù)研究. 河北農(nóng)業(yè)大學學報，2008，31（5）：42-45.

［22］ 余慧琳，王愛武，趙輝. 蝴蝶蘭花梗腋芽離體快繁控制褐變的研究［J］. 中國農(nóng)學通報，2009，25（9）：192-195.

［23］ 賴艷艷，許傳俊，陳冬茵，等. 檸檬酸和抗壞血酸對蝴蝶蘭葉外植體褐變發(fā)生的影響［J］. 生物技術(shù)，2010，20（2）：70-72.

［24］ 趙瀅，楊樹華，李秋香，等. 熱激處理對蝴蝶蘭組培褐變的抑制及其生理機制［J］. 北京林業(yè)大學學報，2013，35（1）：103-107.

Micropropagation of Phalaenopsis ‘Liying’and ‘Hongyun’

ZENG Wu-qing1，CHEN Liu-chan2，ZENG Rui-zhen2，YI Mao-sheng1，SU Qing-lian1，GUO He-rong2，LI Yang-hui1，XIE Li2
（1.Guangzhou Flower Research Center，Guangzhou 510360，China；2.College of Forestry and Landscape Architecture，South China Agricultural University，Guangzhou 510642，China）

Micropropagation of new cultivars of Phalaenopsis ‘Liying’ and Phalaenopsis ‘Hongyun’ was investigated by using of peduncle as explant. The results indicated that disinfection time had significant effect on the induction rate of vegetative shoot，after disinfected with 0.1% HgCl2for 8 minutes，the induction rate of vegetative bud was the highest，while exogenous hormones had no significant effect on the induction rate of Phalaenopsis‘Hongyun’. The concentration of 6-BA，organic additives and the number of bud in an inoculums had significant influence on bud proliferation. At the concentration of 6-BA being 8 mg/L，the proliferation coefficients of Phalaenopsis ‘Liying’ and Phalaenopsis ‘Hongyun’ were the highest，accounting for 2.31 and 2.22，respectively.Supplying coconut milk in proliferation medium was more beneficial for alleviating the browning and enhancing the proliferation coefficient compared with adding potato or banana. Single bud as an inoculum favored bud proliferation and enhanced the multiplication coefficient. Exogenous hormone had little effect on the root induction rate，but had significant effect on the mean number of root and height of plantlet. Seedling height of Phalaenopsis ‘Hongyun’ and Phalaenopsis ‘Liying’ was the highest and the mean number of root was the most on modified 1/2MS medium with 6-BA 0.1 mg/L + NAA 1 mg/L. By using pine bark as culture substrate，the survival rates of Phalaenopsis ‘Liying’and Phalaenopsis ‘Hongyun’ were 91.58% and 87.27%，respectively.

Phalaenopsis；new cultivar；tissue cutire；micropropagation ；clump shoot

S682.31

A

1004-874X（2017）08-0055-06

曾武清，陳柳嬋，曾瑞珍，等. 麗影和紅韻蝴蝶蘭快速繁殖試驗［J］.廣東農(nóng)業(yè)科學，2017，44（8）：55-60.

2017-05-19

廣州市科技計劃項目（2014Y2-00125）；廣州市農(nóng)業(yè)財政專項資金項目（1510170，穗財農(nóng)[2016]26號）

曾武清（1968-），男，碩士，高級農(nóng)藝師，E-mail：zwq0308@126.com

謝利（1974-），女，博士，副教授，E-mail：xieli@scau.edu.cn

（責任編輯 楊賢智）