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      脂肪源性間充質(zhì)干細(xì)胞移植治療糖尿病大鼠勃起功能障礙的研究

      2017-12-11 07:03:54李煜罡王俞潘恩山陳錫鈞朱曉光
      臨床醫(yī)學(xué)工程 2017年11期
      關(guān)鍵詞:海綿體充質(zhì)源性

      李煜罡,王俞,潘恩山,陳錫鈞,朱曉光

      (南方醫(yī)科大學(xué)中西醫(yī)結(jié)合醫(yī)院,廣東 廣州510315)

      脂肪源性間充質(zhì)干細(xì)胞移植治療糖尿病大鼠勃起功能障礙的研究

      李煜罡,王俞,潘恩山,陳錫鈞,朱曉光

      (南方醫(yī)科大學(xué)中西醫(yī)結(jié)合醫(yī)院,廣東 廣州510315)

      目的探討脂肪源性間充質(zhì)干細(xì)胞 (AD-MSCs)移植到糖尿病 (DM)勃起功能障礙 (ED)大鼠后,改善相關(guān)勃起功能的可能機(jī)制。方法制備、分離、培養(yǎng)AD-MSCs,研究其體內(nèi)、外特性。新生雄性大鼠腹腔注射5-乙炔基-2-脫氧尿苷以跟蹤內(nèi)源性MSCs,8周后隨機(jī)選擇8只大鼠作為正常對照組 (N組),其余大鼠以劑量60 mg/kg鏈脲佐菌素 (STZ)行腹腔注射誘導(dǎo)DM,DM大鼠模型中隨機(jī)選擇8只作為糖尿病組 (DM組),另8只DM大鼠經(jīng)AD-MSC治療 (DM+MSCs組)。所有大鼠通過檢測陰莖海綿體內(nèi)壓 (ICP/MAP)等評估大鼠勃起功能,隨后,取陰莖組織行組織學(xué)檢查。結(jié)果AD-MSCs在體內(nèi)、外可分化為肌細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞。AD-MSCs移植后,DM大鼠陰莖海綿體內(nèi)壓 (ICP/MAP)值顯著改善 (P<0.05),陰莖組織中nNOS表達(dá)明顯提高。結(jié)論AD-MSCs可治療糖尿病ED,其可能機(jī)制是通過提高陰莖海綿體nNOS陽性神經(jīng)、內(nèi)皮細(xì)胞的表達(dá),這可能也與介導(dǎo)內(nèi)源性MSCs聚集有關(guān)。

      脂肪源性間充質(zhì)干細(xì)胞 (AD-MSCs);糖尿病 (DM);勃起功能障礙 (ED);一氧化氮合酶 (nNOS)

      糖尿病 (DM)是勃起功能障礙 (ED)發(fā)生的主要危險(xiǎn)因素[1],其中部分糖尿病ED患者對磷酸二酯酶-5抑制劑反應(yīng)不佳[2],目前干細(xì)胞治療ED是研究的策略之一[3],脂肪源性間充質(zhì)干細(xì)胞 (AD-MSCs)因取材方便,具有自我更新能力[4],同時(shí)保持其多向分化潛能,被認(rèn)為是治療糖尿病ED的有效方法。本實(shí)驗(yàn)從脂肪組織中分離間充質(zhì)干細(xì)胞檢測其生物學(xué)特性,并研究其對糖尿病ED模型大鼠的治療作用。

      1 材料與方法

      1.1 實(shí)驗(yàn)動物

      本研究中的所有動物實(shí)驗(yàn)均獲動物保護(hù)及使用委員會批準(zhǔn)。懷孕的Sprague-Dawley大鼠購自查爾斯河實(shí)驗(yàn)室 (Wilmington,MA),新生雄性大鼠用于本研究。為跟蹤內(nèi)源性MSCs,每只大鼠出生后立即腹腔注射5-乙炔基-2-脫氧尿苷(50 mg/kg, Invitrogen, Carlsbad, CA)[5], 在 8 周齡時(shí), 隨機(jī)選擇8只大鼠作為正常對照組 (N組)。其余大鼠均腹腔注射 60 mg/kg STZ (Sigma-Aldrich, St.Louis, MO), 每周取鼠尾靜脈血進(jìn)行血糖監(jiān)測 (Roche Diagnostics,Indianapolis,IN),血糖≥200 mg/dL,大鼠被認(rèn)定為糖尿病并進(jìn)一步實(shí)驗(yàn),選取16只DM大鼠隨機(jī)分為糖尿病組 (DM組)和陰莖海綿體內(nèi)注射間充質(zhì)干細(xì)胞治療組 (DM+MSCs),每組8只。

      1.2 脂肪源性間充質(zhì)干細(xì)胞的制備

      初始脂肪是通過負(fù)壓抽脂術(shù)從獲得知情并同意捐助者處采集,并經(jīng)過首都醫(yī)科大學(xué)北京世紀(jì)壇醫(yī)院倫理委員會批準(zhǔn)后執(zhí)行。初始抽吸脂肪用D-Hanks液洗滌去除廣泛污染的血細(xì)胞和局部麻醉藥。洗滌細(xì)胞2次再置入密度為2×106/mL的T-75組織培養(yǎng)瓶中, 在含有 57%DMEM/F-12、 40%MCDB-201、2%胎牛血清、10 ng/mL表皮生長因子、10 ng/mL血小板衍生生長因子BB,100 U/mL青霉素、100 lg/mL鏈霉素?cái)U(kuò)張。當(dāng)貼壁細(xì)胞70%以上匯合,用0.125%胰蛋白酶和0.01%EDTA分離,并種植在1∶3稀釋的相同培養(yǎng)條件下。

      1.3 熒光激活細(xì)胞分選 (FACS)

      為進(jìn)行免疫表型分析,擴(kuò)增脂源性干細(xì)胞,以抗Flk1、CD29、CD31、CD34、CD44、CD45、CD106抗體染色。細(xì)胞內(nèi)抗原的檢測,4℃下細(xì)胞被固定在2%多聚甲醛15 min,然后室溫下在0.1%皂苷滲透1 h。細(xì)胞洗滌以異硫氰酸熒光素(FITC)標(biāo)記的羊抗鼠二抗,山羊抗兔、羊antigoat抗體 (Sigma),然后洗凈,用FACSCalibur流式細(xì)胞儀分析。

      1.4 免疫印跡分析

      SDS-PAGE可鑒定修飾酶譜,凝膠在缺乏明膠的情況下聚合在PAG(Serva,Heidelberg,Germany)網(wǎng)格裝置,使用MMP-9通過 microsep超濾設(shè)備 (Pall Filtron,Dreireich,Germany)檢測3次。樣品 (40 mL)與加樣緩沖液混合,然后在還原條件DL-DTT沸騰下分離或在非還原條件不沸騰情況下分離。電泳后,用半干印跡裝置 (Pharmacia)把蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移到聚氟乙烯膜(Pall Filtron),用鼠單克隆抗體探針加入s-ICAM-1(0.4 mg/mL) 或 MMP-9 (0.2 mg/mL), 并用過氧化物酶標(biāo)記的二抗(Amersham,Braunschweig,Germany)孵育。按制造商的說明采用化學(xué)發(fā)光系統(tǒng) (Amersham)檢測。

      1.5 RT-PCR

      核糖核酸的分離和反向轉(zhuǎn)錄與先前研究一致。寡核苷酸引物序列如下:β肌動蛋白 (264 bp), 正向:5-GAGAC CTTCAACAC CCCAGCC -3; 反 向 : 5 -AATGTCACGCAC GATTTCCC-3; s-ICAM-1 (264 bp), 正向: 5-CTGGCGGAG CACAACGAACT -3, 反 向 : 5 -AGGATATCTCCATTGGGCT GAAAG-3; MMP-9 (201 bp), 正向: 5-TCCCCATCGCCATCC CC-3, 反向: 5-CACCATGGCCTCGGCTGG-3。 所有上述基因,在相同的循環(huán)條件(94℃、1 min,57℃、50 s,72℃、1 min)下進(jìn)行擴(kuò)增,特定基因 (s-ICAM-1、MMP-9)除外。

      1.6 流式細(xì)胞儀檢測

      離心收集細(xì)胞,PBS洗滌,棄含雜物上清液,在-20℃以70%酒精固定保存過夜,再用磷酸洗 3次。用 0.5 mg/mL RNase A 溶解 30 min, 再以 65 μg/mL PI染色 1 h。 用 FACS流式細(xì)胞分析儀 (BD Biosciences)分析。以給定的陽性細(xì)胞百分比值和熒光相對強(qiáng)度作為表達(dá)水平的標(biāo)準(zhǔn)。

      1.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

      采用SPSS 13.3統(tǒng)計(jì)軟件處理,按多樣本均數(shù)比較的方差分析處理數(shù)據(jù),運(yùn)用LSD法進(jìn)行多重比較。由于mRNA相對表達(dá)量各組間方差不齊 (P=0.025),采用Welch近似方差分析,運(yùn)用Tambane's T2法進(jìn)行多重比較。

      2 結(jié)果

      2.1 AD-MSCs細(xì)胞形態(tài)和表面標(biāo)志物

      來源于脂肪組織的MSCs是梭形纖維狀的。CD11a、CD31、CD34、 CD45、 CD184、 Flk-1和 HLA-DR 均為陰性, 而 CD29、CD44、CD73、CD105、CD166和表面標(biāo)志 HLA-ABC均為陽性。見圖1。

      圖1 hAD-MSCs的生物學(xué)特性

      2.2 AD-MSCs移植提高糖尿病大鼠的勃起功能

      與N組比較,DM組大鼠勃起功能嚴(yán)重受損,陰莖海綿體內(nèi)壓 (ICP/MAP)值顯著降低,AD-MSC治療后,以三種不同電流峰值 (0.5 mA、 1.0 mA、 1.5 mA) 刺激陰莖神經(jīng), DM +MSCs 組的 ICP/MAP 值顯著改善(P <0.05), 在 1.0 mA 和 1.5 mA時(shí)接近正常對照組,見圖2。

      2.3 AD-MSCs可促進(jìn)神經(jīng)再生

      免疫組化檢測大鼠陰莖組織中有nNOS表達(dá),組織學(xué)圖像顯示染成紅色、綠色、藍(lán)色分別代表nNOS陽性神經(jīng)纖維,平滑肌和細(xì)胞核,見圖3。為清晰起見,組織學(xué)圖像分為背神經(jīng)(圖A~C)、背動脈 (圖D~F)和海綿體血竇 (圖G~I)。 箭頭指向代表nNOS陽性點(diǎn),DM+MSCs組在這三個(gè)部位nNOS表達(dá)的定量數(shù)據(jù)與DM組比較均有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異 (P<0.05)。

      圖2 N組、DM組、DM+MSCs組的ICP/MAP值

      圖3 N組、DM組、DM+MSCs組nNOS的表達(dá)

      3 討論

      近十年ED的研究有巨大進(jìn)步[6],但DM合并ED治療仍較困難?,F(xiàn)提出一種干細(xì)胞療法治療策略,且在某些領(lǐng)域已進(jìn)行了一些臨床和臨床前試驗(yàn)[7]。AD-MSCs移植治療糖尿病ED尚未在臨床前研究。因此,本研究以STZ誘導(dǎo)建立糖尿病ED大鼠模型,并用AD-MSCs移植治療,探索其作用機(jī)理。

      STZ誘導(dǎo)的DM大鼠伴有勃起功能差[8],引起大鼠陰莖nNOS陽性神經(jīng)受損[9]且明顯減少[10]。本研究發(fā)現(xiàn)AD-MSCs移植能顯著改善STZ誘導(dǎo)的DM大鼠勃起功能且能顯著提高nNOS陽性神經(jīng)纖維表達(dá),包括背神經(jīng)、背動脈和海綿體血竇。這種nNOS陽性神經(jīng)纖維高表達(dá)是AD-MSCs移植治療糖尿病ED的潛在機(jī)制。糖尿病ED患者和DM動物模型陰莖海綿體組織中均出現(xiàn)血管內(nèi)皮損傷和內(nèi)皮功能障礙[11],這已得到一致確認(rèn)。本研究發(fā)現(xiàn)AD-MSCs移植能顯著恢復(fù)上述兩種組織內(nèi)皮細(xì)胞的數(shù)量。因此,內(nèi)皮的保護(hù)或再生是AD-MSCs移植治療糖尿病ED的另一種可能機(jī)制。

      綜上所述,STZ誘導(dǎo)的糖尿病ED與陰莖勃起相關(guān)組織細(xì)胞減少有關(guān) (神經(jīng)、血管內(nèi)皮細(xì)胞、平滑肌),AD-MSCs移植能夠顯著恢復(fù)這些組織細(xì)胞功能。此外,AD-MSCs有益的作用是否與介導(dǎo)內(nèi)源性MSCs聚集有關(guān)尚待進(jìn)一步研究。

      [1]Alwaal A,Zaid UB,Lin CS,et al.Stem cell treatment of erectile dysfunction[J].Adv Drug Deliv Rev,2015,(82-83):137-144.

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      [3]Li Y,Pan E,Wang Y,et al.Flk-1+Sca-1-mesenchymal stem cells:functional characteristics in vitro and regenerative capacity in vivo[J].Int J Clin Exp Pathol,2015,8(9):9875-9888.

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      Study on Adpose-Derived Mesenchymal Stem Cells Transplantation in the Treatment of Erectile Dysfunction in Diabetic Rats

      LI Yugang,WANG Yu,PAN Enshan,CHEN Xijun,ZHU Xiaoguang
      (TCM-Integrated Hospital of Southern Medical University,Guangzhou 510315,China)

      ObjectiveTo explore the possible mechanism of adipose-derived mesenchymal stem cells(AD-MSCs)transplantation to improve the relative erectile function of rats with diabetes mellitus(DM)associated erectile dysfunction(ED).MethodsAD-MSCs were prepared,separated and developed to study their characteristics in vivo and in vitro.Newborn male rats were intraperitoneally injected with 5-ethynyl-2-deoxyuridine for tracking endogenous MSCs.8 weeks later,eight of these rats were randomly selected as the normal control group(N group).The remaining rats were injected intraperitoneally with 60 mg/kg of streptozotocin(STZ)to induce DM.Eight of these DM rats were randomly selected as the DM group,while another eight rats were treated with AD-MSC(DM+MSCs group).All rats'erectile function were evaluated by intracavernous pressure(ICP/MAP)detection.Afterward,their penile tissues were collected for histological examination.ResultsAD-MSCs could differentiate into muscle cells and endothelial cells in vivo and in vitro.After AD-MSCs transplantation,the ICP/MAP of DM rats significantly improved(P<0.05).The nNOS expression in penile tissues significantly increased.ConclusionsAD-MSC can be used in the treatment of erectile function in rats with DM associated ED.The possible mechanism is to improve the expression of nNOS-positive nerves and endothelium in cavernosa,and may be related to mediate the recruitment of endogenous MSCs.

      Adipose-derived mesenchymal stem cells(AD-MSCs);Diabetes mellitus(DM);Erectile dysfunction(ED);nNOS

      R587.2;R698

      A

      10.3969/j.issn.1674-4659.2017.11.1528

      2017-06-19

      2017-08-17

      廣東省科技計(jì)劃項(xiàng)目 (項(xiàng)目編號:20140211);南方醫(yī)科大學(xué)中西醫(yī)結(jié)合醫(yī)院院長基金 (項(xiàng)目編號:1201401001)

      李煜罡 (1973-),男,陜西西安人,副主任醫(yī)師,從事泌尿外科及男科學(xué)的臨床、教學(xué)及科研工作。

      (責(zé)任編輯:常海慶)

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