• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

      甘油原料轉(zhuǎn)化生產(chǎn)手性環(huán)氧氯丙烷關(guān)鍵酶的開發(fā)

      2017-11-30 07:43:35張曉健鄭裕國
      合成生物學(xué) 2017年6期
      關(guān)鍵詞:鹵化環(huán)氧氯丙烷水解酶

      張曉健 ,鄭裕國

      1.浙江工業(yè)大學(xué)生物工程學(xué)院,杭州 310014 2.浙江省生物有機合成技術(shù)研究重點實驗室,杭州 310014

      甘油原料轉(zhuǎn)化生產(chǎn)手性環(huán)氧氯丙烷關(guān)鍵酶的開發(fā)

      張曉健1,2,鄭裕國1,2

      1.浙江工業(yè)大學(xué)生物工程學(xué)院,杭州 310014 2.浙江省生物有機合成技術(shù)研究重點實驗室,杭州 310014

      手性環(huán)氧氯丙烷是一種重要的三碳手性合成子,在醫(yī)藥、農(nóng)藥、化工、材料等領(lǐng)域有著廣泛的應(yīng)用。開發(fā)以甘油替代石油基原料合成手性環(huán)氧氯丙烷的綠色合成工藝具有重要的開發(fā)價值。生物催化技術(shù)可有效提高過程安全性與原子經(jīng)濟(jì)性,降低“三廢”排放,提升產(chǎn)品質(zhì)量。闡述了生物催化合成手性環(huán)氧氯丙烷關(guān)鍵酶技術(shù)的研究進(jìn)展,進(jìn)行了生物合成路線設(shè)計、鹵化酶酶庫構(gòu)建、鹵醇脫鹵酶與環(huán)氧化物水解酶的篩選與改造、鹵醇脫鹵酶/環(huán)氧化物水解酶雙酶串聯(lián)合成手性環(huán)氧氯丙烷工藝構(gòu)建等技術(shù)開發(fā),為手性環(huán)氧氯丙烷綠色生物合成技術(shù)的研究與應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)與技術(shù)支持。

      甘油;手性環(huán)氧氯丙烷;1,3-二氯-2-丙醇;生物催化;鹵醇脫鹵酶;環(huán)氧化物水解酶

      新世紀(jì)以來,作為化石燃料的重要替代產(chǎn)品,生物柴油備受青睞,產(chǎn)量與市場迅速擴張。在生物柴油生產(chǎn)過程中,會產(chǎn)生大量的副產(chǎn)物甘油[1-2]。隨著生物柴油產(chǎn)業(yè)的飛速發(fā)展,甘油在全球范圍內(nèi)過剩,市場價格一路下跌。相較于石油基原料,從甘油出發(fā),合成具有高附加值的甘油衍生產(chǎn)品不但具有原料可再生、綠色環(huán)保等優(yōu)點,而且在生產(chǎn)成本上逐漸顯現(xiàn)優(yōu)勢,成為綠色化工的重要新興領(lǐng)域[3-5]。

      手性環(huán)氧氯丙烷(epichlorohydrin,ECH)是一種重要的三碳手性合成子,廣泛應(yīng)用于手性制藥與精細(xì)化工產(chǎn)業(yè),是包括新型他汀類降血脂藥物、芳氧丙胺醇類β-腎上腺素拮抗劑、抗生素海藻唑啉、左旋肉堿、維生素等多種重要手性藥物的合成前體(圖1)[6-7]。隨著 手性制藥與精細(xì)化工產(chǎn)業(yè)的不斷擴張,對手性環(huán)氧氯丙烷的需求也隨之不斷擴大。

      傳統(tǒng)的手性環(huán)氧氯丙烷合成方法是以石油基原料丙烯出發(fā)合成手性環(huán)氧氯丙烷,存在著原料價格高、副產(chǎn)物多、原子經(jīng)濟(jì)性差、“三廢”排放大等嚴(yán)重問題。近年來,甘油出發(fā)的合成路線得到發(fā)展,主要是通過甘油氯化合成1,3-二氯-2-丙醇,再經(jīng)皂化反應(yīng)生產(chǎn)環(huán)氧氯丙烷,最后采用salen催化劑拆分獲得(R)-或者(S)-環(huán)氧氯丙烷。該技術(shù)雖已在工業(yè)生產(chǎn)中得到應(yīng)用推廣,但仍存在一些嚴(yán)重缺陷:生產(chǎn)過程中需加溫加壓,屬于高耗能過程;存在大量強酸強堿的使用,環(huán)保問題突出;手性拆分制備手性環(huán)氧氯丙烷,理論產(chǎn)率不超過50%,催化劑價格昂貴。當(dāng)前的手性環(huán)氧氯丙烷生產(chǎn)工藝不能滿足現(xiàn)代綠色化學(xué)的發(fā)展要求[6-8]。

      生物催化具有高活性、高立體選擇性、反應(yīng)條件溫和等優(yōu)勢,成為可持續(xù)發(fā)展過程中替代和拓展傳統(tǒng)有機化學(xué)合成的重要方法。探索開發(fā)手性環(huán)氧氯丙烷的生物催化合成途徑是近年來科學(xué)家研究的熱點[6]。本文結(jié)合國內(nèi)外研究進(jìn)展,基于筆者團(tuán)隊研究成果,探索開發(fā)甘油出發(fā)的手性環(huán)氧氯丙烷生物合成技術(shù),開展了酶法合成路線設(shè)計、關(guān)鍵酶的開發(fā)及生物催化體系的構(gòu)建優(yōu)化等工作,為手性環(huán)氧氯丙烷的綠色合成技術(shù)開發(fā)提供理論指導(dǎo)與技術(shù)支持。

      圖1 手性環(huán)氧氯丙烷的用途

      1 三酶催化合成手性環(huán)氧氯丙烷路線分析

      針對當(dāng)前手性環(huán)氧氯丙烷合成工藝反應(yīng)條件苛刻、“三廢”排放嚴(yán)重、催化劑價格昂貴等問題,筆者團(tuán)隊以甘油為出發(fā)原料,深入分析合成路徑、生物催化劑介入可行性與原子經(jīng)濟(jì)性等,引入三步生物催化步驟,構(gòu)建手性環(huán)氧氯丙烷的生物合成過程(圖2)。首先設(shè)計采用鹵化酶催化甘油氯化合成1,3-二氯-2-丙醇,之后利用鹵醇脫鹵酶脫鹵環(huán)化制備環(huán)氧氯丙烷,最后在立體選擇性環(huán)氧化物水解酶的作用下,水解拆分獲得光學(xué)純的R或S型環(huán)氧氯丙烷。該三酶組合催化合成工藝徹底革除了原有化學(xué)合成工藝中強酸高溫氯化、皂化、貴金屬催化劑拆分等過程,產(chǎn)物光學(xué)純度高,催化劑成本明顯降低,酸堿用量大幅壓縮,副產(chǎn)物、溶劑用量、“三廢”排放量和能耗大幅度降低,具有顯著的優(yōu)越性。

      圖2 以甘油為原料合成手性環(huán)氧氯丙烷的生物合成工藝線路

      2 鹵化酶催化甘油氯化的探索

      生物催化鹵化在21世紀(jì)逐漸成為新的研究熱點,不斷有新的含鹵生物物質(zhì)被發(fā)現(xiàn),相關(guān)的生物鹵化過程被探討,新型的鹵化酶被發(fā)掘研究。目前已經(jīng)報道的鹵化酶主要有四類:過氧化物鹵化酶(haloperoxidase)、黃素依賴鹵化酶( fl avin-dependent halogenase)、無血紅素鐵依賴鹵化酶(non-haem irondependent halogenase)以及SA M為底物鹵化酶(halogenases using S- adenosylmethionine)等[9-12]。Wu等[13]利用氯過氧化物酶催化3-氯丙烯氧化反應(yīng)合成(R)-環(huán)氧氯丙烷,產(chǎn)物e.e.值為97.5%,產(chǎn)率達(dá)67.3%。然而,對生物鹵化反應(yīng)的研究尚處于起步階段,已經(jīng)報道具有鹵化能力的微生物仍較少,鹵化酶數(shù)量和種類更是屈指可數(shù),生物鹵化機制的研究尚處于起步階段,大大制約了生物催化鹵化技術(shù)的開發(fā)與應(yīng)用。目前國內(nèi)外尚無甘油的生物催化氯化的報道,相關(guān)催化機制也不明確。

      筆者團(tuán)隊通過基因挖掘等生物信息學(xué)手段,在GenBank、EMBL、DDBJ等公共DNA數(shù)據(jù)庫快速篩選、挖掘潛在的鹵化酶基因序列,并加以功能驗證。共獲得42條過氧化物鹵化酶序列、32條黃素依賴鹵化酶序列、26條無血紅素鐵依賴鹵化酶序列以及潛在的3條SAM為底物鹵化酶序列。合成以上基因并構(gòu)建重組載體,在工程菌中進(jìn)行鹵化酶的高效可溶表達(dá),建立了大容量、多樣性的鹵化酶酶庫。以此為基礎(chǔ),并跟蹤生物鹵化領(lǐng)域的國內(nèi)外最新進(jìn)展,綜合利用結(jié)構(gòu)模擬、定向進(jìn)化、基因編輯等多種手段進(jìn)行潛在甘油氯化酶的篩選、改造及生物催化甘油氯化機制的研究。

      3 鹵醇脫鹵酶催化1,3-二氯丙醇合成環(huán)氧氯丙烷

      鹵醇脫鹵酶(halohydrin dehalogenase,Hhe,EC 4.5.1.X)屬于短鏈脫氫酶/還原酶家族,可通過分子內(nèi)親核取代機制催化鄰鹵醇轉(zhuǎn)化為環(huán)氧化物和鹵化氫。近年來的研究發(fā)現(xiàn),鹵醇脫鹵酶在生物催化與轉(zhuǎn)化領(lǐng)域發(fā)揮著重要的作用,利用其合成光學(xué)純的手性環(huán)氧化物中間體具有巨大的應(yīng)用價值。國內(nèi)外已經(jīng)開展鹵醇脫鹵酶催化合成手性環(huán)氧氯丙烷的研究,并取得了一定的成果[14-15]。

      3.1 鹵醇脫鹵酶的篩選與酶庫構(gòu)建

      長期以來,有報道的鹵醇脫鹵酶的數(shù)量非常有限。2013年,科學(xué)家通過宏基因組篩選、數(shù)據(jù)發(fā)掘等方法,篩選獲得多株鹵醇脫鹵酶,并根據(jù)同源性把這些新發(fā)現(xiàn)的酶分為四個亞類,拓展了鹵醇脫鹵酶的種類和多樣性[16]。在現(xiàn)有的鹵醇脫鹵酶中,對手性環(huán)氧氯丙烷合成具有立體選擇性催化能力的酶株十分有限,且立體選擇性往往不理想[6,17]。來源于Arthrobacter erithii H10a的鹵醇脫鹵酶DehA可催化1,3-二氯-2-丙醇合成(R)-環(huán)氧氯丙烷,e.e.值達(dá)89.3%。 來 源 于Corynebacterium sp. N-1074的HheB,選擇性催化合成(R)-環(huán)氧氯丙烷的e.e.值達(dá)90%[18]。

      筆者團(tuán)隊基于不同pH下酚酞溶液的吸光度變化,建立了產(chǎn)鹵醇脫鹵酶微生物高通量篩選模型,從環(huán)境樣品中篩選對1,3-二氯-2-丙醇具有較強脫鹵環(huán)氧化能力的菌株,并通過基因挖掘等生物信息學(xué)手段,在公共DNA數(shù)據(jù)庫快速篩選、挖掘潛在的鹵醇脫鹵酶并進(jìn)行功能驗證。目前已獲得32條鹵醇脫鹵酶序列,并在大腸桿菌中進(jìn)行重組表達(dá),構(gòu)建了多株高活性、高立體選擇性的鹵醇脫鹵酶重組工程菌。以此為基礎(chǔ),建立用于環(huán)氧氯丙烷合成的鹵醇脫鹵酶酶庫。其中,來源于Tistrella mobilis ZJB1405的鹵醇脫鹵酶HHDHTm催化合成(S)-環(huán)氧氯丙烷的e.e.值>60%,反應(yīng)2 min,底物轉(zhuǎn)化率達(dá)95.2%[19]。

      3.2 鹵醇脫鹵酶的立體選擇性催化機制與分子改造

      研究顯示鹵醇脫鹵酶的立體選擇性受到酶的底物口袋尺寸、底物口袋和鹵素結(jié)合域相關(guān)氨基酸殘基等因素的影響。Tang等[20]對來源于Arthrobacter sp. AD2的鹵醇脫鹵酶HheAAD2的定點突變研究顯示,改變酶的鹵素離子結(jié)合域關(guān)鍵氨基酸殘基可顯著影響酶對底物2-氯-1-苯乙醇的立體選擇性。對來源于Arthrobacter sp. AD1的HheC進(jìn)行迭代飽和突變,改變底物口袋相關(guān)的氨基酸殘基并進(jìn)而改變底物p-硝基-2-溴-1-苯乙醇在活性中心的定位與構(gòu)象,產(chǎn)生的突變酶具有極高的S型底物選擇性[21-22]。環(huán)氧氯丙烷分子小,在酶活中心空間位阻小,手性識別困難,目前關(guān)于鹵醇脫鹵酶立體選擇性催化手性環(huán)氧氯丙烷的分子機制尚未得到深入揭示。

      筆者團(tuán)隊對HheC的三維蛋白結(jié)構(gòu)分析發(fā)現(xiàn),175~188位氨基酸殘基形成的環(huán)參與鹵素離子的結(jié)合,推測以上位點在催化過程中的構(gòu)象變化參與了酶的立體選擇性調(diào)節(jié)。Phe12和Trp249位氨基酸殘基也參與鹵素離子的穩(wěn)定與釋放,對酶的立體選擇性與活性發(fā)揮著重要作用(圖3)。選擇以上位點進(jìn)行定點突變和聯(lián)合突變,經(jīng)高通量篩選獲得高活性HheC突變體P175S/W249P,催化1,3-二氯-2-丙醇合成(S)-環(huán)氧氯丙烷的e.e.值由野生型HheC的5.7%提高至95.3%。

      圖3 鹵醇脫鹵酶HheC的三維結(jié)構(gòu)

      3.3 鹵醇脫鹵酶催化手性環(huán)氧氯丙烷反應(yīng)體系優(yōu)化

      將HheC突變體P175S/W249P在大腸桿菌工程菌中重組表達(dá),以重組工程菌為全細(xì)胞催化劑,催化1,3-二氯-2-丙醇合成手性環(huán)氧氯丙烷。通過反應(yīng)體系優(yōu)化與反應(yīng)過程控制,構(gòu)建并優(yōu)化鹵醇脫鹵酶催化手性環(huán)氧氯丙烷反應(yīng)體系。底物濃度為20mmol/L、pH10.0時,反應(yīng)5min,(S)-環(huán)氧氯丙烷的收率達(dá)93.7%,e.e.值達(dá)95.3%。當(dāng)?shù)孜餄舛忍嵘?0mmol/L時,(S)-環(huán)氧氯丙烷的產(chǎn)率與e.e.值分別為90.2%和92.1%(圖4)。產(chǎn)物e.e.值與產(chǎn)率等主要指標(biāo)優(yōu)于國內(nèi)外文獻(xiàn)報道水平[18-19,23]。

      圖4 HheC突變體P175S/W249P不對稱催化(S)-環(huán)氧氯丙烷合成反應(yīng)過程

      4 環(huán)氧水解酶拆分制備手性環(huán)氧氯丙烷

      4.1 環(huán) 氧水解酶的篩選

      環(huán)氧化物水解酶(epoxide hydrolase,EH,EC 3.3.2.3)能夠催化外消旋環(huán)氧化物選擇性水解,制備高光學(xué)純度的環(huán)氧化物和相應(yīng)的鄰位二醇。微生物來源的環(huán)氧化物水解酶來源廣,獲得方便,且具有很高的立體選擇性,在手性環(huán)氧化物生物合成中的應(yīng)用已成為研究熱點[24-25]。利用環(huán)氧化物水解酶可對外消旋的環(huán)氧氯丙烷進(jìn)行高效拆分,獲得光學(xué)純的手性環(huán)氧氯丙烷。

      筆者團(tuán)隊以環(huán)氧氯丙烷為目標(biāo)底物,從環(huán)境樣品中篩選或在公共DNA數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行基因挖掘,獲得37條環(huán)氧化物水解酶序列,以此為基礎(chǔ),建立了環(huán)氧化物水解酶酶庫。其中來源于Parvibaculum lavamentivorans ZJB14001的PlEH2催化拆分制備(S)-環(huán)氧氯丙烷的e.e.值>99%,產(chǎn)率為12.8%。來源于Agromyces mediolanus的AmEH水解拆分消旋環(huán)氧氯丙烷制備(S)-環(huán)氧氯丙烷的e.e.值>99%,產(chǎn)率為21.5%[26]。

      4.2 環(huán)氧化物水解酶的立體選擇性催化機制與分子改造

      近年來,環(huán)氧化物水解酶的分子機制逐漸得到揭示,通過理性、半理性設(shè)計,定向進(jìn)化等手段進(jìn)行分子改造獲得高活性、高立體選擇性環(huán)氧化物水解酶逐漸引起科學(xué)家們的興趣。Spelberg等[27]對來源于Agrobacterium radiobacter AD1 的ArEH進(jìn)行定點突變,將參與底物結(jié)合和環(huán)氧開環(huán)的Tyr突變?yōu)镻he后,突變酶對R型芳香類環(huán)氧化物的對映選擇性提高了2~5倍。Thomaeus等[28]基于土豆環(huán)氧化物水解酶StEH的晶體結(jié)構(gòu)與穩(wěn)態(tài)動力學(xué)分析,對Tyr149位點氨基酸殘基進(jìn)行突變,破壞了質(zhì)子傳遞鏈氨基酸殘基與水的氫鍵,顯著提高了酶對反式二苯乙烯氧化物的對映選擇性。

      筆者團(tuán)隊選擇對環(huán)氧化物水解酶AmEH進(jìn)行定點飽和突變與聯(lián)合突變,構(gòu)建大容量突變文庫?;?-對硝基芐基嘧啶與環(huán)氧化物反應(yīng)在600nm處吸光值發(fā)生變化的原理,建立環(huán)氧化物水解酶高通量篩選模型。篩選獲得AmEH突變體W182F/S207V/N240D。突變體改變了關(guān)鍵親核氨基酸殘基Asp181的氧原子與被進(jìn)攻的(R)-環(huán)氧氯丙烷或(S)-環(huán)氧氯丙烷的環(huán)氧碳原子之間的距離與夾角(圖5),催化(R)-環(huán)氧氯丙烷水解的酶活及對映體選擇率分別是原始酶的約1.7倍和7.0倍。

      4.3 環(huán)氧化物水解酶促手性拆分反應(yīng)條件優(yōu)化

      20世紀(jì)90年代,科學(xué)家即開始了對環(huán)氧水解酶拆分環(huán)氧氯丙烷的研究。Woo等[29]利用來自Novosphingobium aromaticivorans的環(huán)氧化物水解酶催化拆分環(huán)氧氯丙烷,底物濃度500mmol/L,獲得(S)-環(huán)氧氯丙烷的e.e.值>99%,產(chǎn)率為10.7%。Yildirim等[30]利用來自Aspergillus niger的環(huán)氧化物水解酶拆分外消旋環(huán)氧氯丙烷,產(chǎn)物(S)-環(huán)氧氯丙烷的e.e.值為99%,產(chǎn)率為26%。

      圖5 AmEH(a)或突變體(b)分別與(R)-或(S)-環(huán)氧氯丙烷的分子對接模擬

      筆者團(tuán)隊在前期分子改造研究的基礎(chǔ)上,以表達(dá)AmEH突變體W182F/S207V/N240D重組大腸桿菌為全細(xì)胞催化劑,通過反應(yīng)體系優(yōu)化,構(gòu)建了環(huán)氧化物水解酶手性拆分環(huán)氧氯丙烷技術(shù)。底物濃度75mmol/L,反應(yīng)35min,拆分獲得(S)-環(huán)氧氯丙烷的e.e.值>99.9%,產(chǎn)率達(dá)45.8%;底物濃度進(jìn)一步提高至450mmol/L,反應(yīng)90min,(S)-環(huán)氧氯丙烷的e.e.值>99.9%,產(chǎn)率為40.5% (圖6)[31]。與目前已報道的環(huán)氧化物水解酶相比,AmEH突變體的對映選擇性高,并且具有較高的底物耐受性與產(chǎn)物產(chǎn)率,工業(yè)應(yīng)用開發(fā)潛力巨大。

      圖6 環(huán)氧化物水解酶AmEH突變體催化不對稱拆分外消旋環(huán)氧氯丙烷的反應(yīng)進(jìn)程

      5 雙酶偶聯(lián)催化制備手性環(huán)氧氯丙烷

      鹵醇脫鹵酶催化1,3-二氯-2-丙醇不對稱合成手性環(huán)氧氯丙烷,理論產(chǎn)率可達(dá)100%,但由于目前已有鹵醇脫鹵酶的立體選擇性尚不理想,產(chǎn)物的光學(xué)純度還不能達(dá)到工業(yè)生產(chǎn)要求。環(huán)氧化物水解酶拆分制備手性環(huán)氧氯丙烷具有高度立體選擇性,但理論產(chǎn)率不超過50%。筆者團(tuán)隊構(gòu)建了鹵醇脫鹵酶/環(huán)氧化物水解酶雙酶串聯(lián)催化合成(S)-環(huán)氧氯丙烷技術(shù),利用立體選擇性鹵醇脫鹵酶催化1,3-二氯-2-丙醇高效合成(S)-環(huán)氧氯丙烷,利用環(huán)氧化物水解酶選擇性水解體系中少量的(R)-環(huán)氧氯丙烷,實現(xiàn)手性環(huán)氧氯丙烷的高產(chǎn)率、高光學(xué)純制備。

      利用含鹵醇脫鹵酶HheC突變體P175S/W249P重組工程菌與含環(huán)氧化物水解酶AmEH突變體W182F/S207V/N240D重組工程菌為催化劑,通過反應(yīng)體系優(yōu)化與過程控制,構(gòu)建雙酶串聯(lián)催化合成(S)- 環(huán)氧 氯丙烷技術(shù)。底物濃度20mmol/L,經(jīng)雙酶串聯(lián)催化,反應(yīng)10~15min,產(chǎn)物(S)-環(huán)氧氯丙烷的e.e.值>99.9%,產(chǎn)率達(dá)91.2%。底物濃度提高至100mmol/L,產(chǎn)物e.e.值>99%,產(chǎn)率為54.2%[18]。該技術(shù)克服了手性環(huán)氧氯丙烷合成中,使用單一生物催化劑的不足,在原子經(jīng)濟(jì)性、產(chǎn)品光學(xué)純度與產(chǎn)率方面優(yōu)勢明顯,開發(fā)潛力巨大。

      6 總結(jié)與展望

      采用生物催化技術(shù),由甘油出發(fā)合成手性環(huán)氧氯丙烷,具有成本低廉、條件溫和、環(huán)境友好等突出特點,符合當(dāng)代綠色經(jīng)濟(jì)的發(fā)展趨勢。筆者團(tuán)隊通過生物催化路線設(shè)計、關(guān)鍵酶的篩選與改造、雙酶串聯(lián)催化工藝構(gòu)建等技術(shù)開發(fā),探索建立手性環(huán)氧氯丙烷的生物合成技術(shù)。筆者課題的研究對于開發(fā)甘油出發(fā)生產(chǎn)手性環(huán)氧氯丙烷的綠色合成技術(shù)具有重要參考意義。

      甘油的生物催化氯化與高光學(xué)純度、高產(chǎn)率的手性環(huán)氧氯丙烷的生物制備是該領(lǐng)域研究的難點所在,相關(guān)研究方興未艾。相信在不久的未來,隨著生物信息學(xué)、基因組與蛋白質(zhì)組學(xué)、基因編輯技術(shù)的快速發(fā)展,生物資源開發(fā)與生物催化劑改造技術(shù)進(jìn)入更高層次,高活性甘油氯化酶與高立體選擇性鹵醇脫鹵酶、環(huán)氧化物水解酶等關(guān)鍵酶將得到進(jìn)一步深入研發(fā),進(jìn)而推動手性環(huán)氧氯丙烷生物合成技術(shù)的發(fā)展與應(yīng)用,助力我國傳統(tǒng)化工產(chǎn)業(yè)的改造升級。

      [1] OKOYE P U,HAMEED B H. Review on recent progress in catalytic carboxylation and acetylation of glycerol as a byproduct of biodiesel production[J]. Renewable amp; Sustainable Energy Reviews,2016,53:558-574.

      [2] SINGH D,GANESH A,MAHAJANI S. Heterogeneous catalysis for biodiesel synthesis and valorization of glycerol[J]. Clean Technologiesamp; Environmental Policy,2015,17(4):1103-1110.

      [3] SUN S,HE M,DAI Y,et al. Catalytic acetalization:an efficient strategy for high-value utilization of biodiesel-derived glycerol[J].Catalysts,2017,7(6):184-195.

      [4] GONZALEZGARAY A,GONZALEZMIQUEL M,GOSALBEZ G G. High-value propylene glycol from low-value biodiesel glycerol:a techno-economic and environmental assessment under uncertainty[J]. ACS Sustainable Chemistry amp; Engineering,2017,5(7):5723-5732.

      [5] PRADIMA J,KULKARNI M R,ARCHNA. Review on enzymatic synthesis of value added products of glycerol,a by-product derived from biodiesel production[J/OL]. Resource-Efficient Technologies,2017[2017-11-21]. https://doi.org/10.1016/j.reffit.2017.02.009. DOI:10.1016/j.ref fi t.2017.02.009.

      [6] JIN H X,OUYANG X K. Enzymatic approaches to the preparation of chiral epichlorohydrin[J]. RSC Advances,2015,5(113):92988-92994.

      [7] GILBEAU P,KRAFFT P. Process for manufacturing epichlorohydrin:EP20080709018[P]. 2008-02-15.

      [8] ALMENA A,MARTíN M. Techno-economic analysis of the production of epichlorohydrin from glycerol[J]. Computer Aided Chemical Engineering,2016,38(12):49-54.

      [9] STEPHENS J T,PETE M J. Bioactive heme-haloperoxidase compositions and methods of their use:US2015/011435[P]. 2015-01-09.

      [10] SHEPHERD S A,KARTHIKEYAN C,LATHAM J,et al.Extend ing the biocatalytic scope of regiocomplementary flavindependent halogenase enzymes[J]. Chemical Science,2015,6(6):3454-3460.

      [11] SMITH J L,KHARE D. Recent advances in the structural and mechanistic biology of non-haem Fe(ii),2-oxoglutarate and O2-dependent halogenases[M]//BOLLINGER M J,MYLLYHARJU J,TRIEVEL R,et al. 2-Oxoglutarate-Dependent Oxygenases.Cambridge UK:Royal Society of Chemistry,2015:401-413.

      [12] EUSTáQUIO A S,H?RLE J,NOEL J P,et al. S-Adenosyl-L-methionine hydrolase(adenosine-forming),a conserved bacterial and archaeal protein related to SAM-dependent halogenases[J].ChemBioChem,2008,9(14):2215-2219.

      [13] WU J,LIU C,JIANG Y,et al. Synthesis of chiral epichlorohydrin by chloroperoxidase-catalyzed epoxidation of 3-chloropropene in the presence of an ionic liquid as co-solvent[J]. Catalysis Communications,2010,11(8):727-731.

      [14] SCHALLMEY A,SCHALLMEY M. Recent advances on halohydrin dehalogenases-from enzyme identification to novel biocatalytic applications[J]. Applied Microbiology and Biotechnology,2016,57(18):351-360.

      [15] YOU Z Y,LIU Z Q,ZHENG Y G. Properties and biotechnological applications of halohydrin dehalogenases:current state and future perspectives[J]. Applied Microbiology and Biotechnology,2013,97(1):9-21.

      [16] SCHALLMEY M,KOOPMEINERS J,WELLS E,et al. Expand ing the halohydrin dehalogenase enzyme family:Identification of novel enzymes by database mining[J]. Applied and Environmental Microbiology,2014,80(23):7303-7315.

      [17] KOOPMEINERS J,HALMSCHLAG B,SCHALLMEY M,et al.Biochemical and biocatalytic characterization of 17 novel halohydrin dehalogenases[J]. Applied Microbiology and Biotechnology,2016,100(17):1-11.

      [18] XUE F,LIU Z Q,WANG Y J,et al. Efficient synthesis of (S)-epichlorohydrin in high yield by cascade biocatalysis with halohydrin dehalogenase and epoxide hydrolase mutants[J]. Catalysis Communications,2015,72(5):147-149.

      [19] XUE F,LIU Z Q,WANG Y J,et al. Biochemical characterization and biosynthetic application of a halohydrin dehalogenase from Tistre lla mobilis,ZJB1405[J]. Journal of Molecular Catalysis B:Enzymatic,2015,115:105-112.

      [20] TANG L,ZHU X,ZHENG H,et al. Key residues for controlling enantioselectivity of halohydrin dehalogenase from Arthrobacter sp. Strain AD2,revealed by structure-guided directed evolution[J].Applied and Environmental Microbiology,2012,78(8):2631-2637.

      [21] TANG L,VAN MERODE A E J,LUTJE SPELBERG J H,et al.Steady -state kinetics and tryptophan fluorescence properties of halohydrin dehalogenase from Agrobacterium radiobacter. Roles of W139 and W249 in the active site and halide-induced conformational change[J]. Bioche mistry,2003,42(47):14057-14065.

      [22] CHAO G,CHENY,ZHENG Y,et al. Explor ing the enantioselective mechanism of halohydrin dehalogenase from Agrobacterium radiobacter AD1 by iterative saturation mutagenesis[J]. Applied and Environmental Microbiology,2015,81(8):2919-2926.

      [23] XUE F,LIU Z Q,WAN N W,et al. Purification,gene cloning,and characterization of a novel halohydrin dehalogenase from Agromyces mediolanus ZJB120203[J]. Applied Biochemistry and Biotechnology,2014,174(1):352-364.

      [24] NELLAIAH H,MORISSEAU C,ARCHELAS A,et al.Enantioselective hydrolysis of p-nitrostyrene oxide by an epoxide hydrolase preparation from Aspergillus niger[J]. Biotechnology amp;Bioengineering,2015,49(1):70-77.

      [25] KONG X D,MA Q,ZHOU J,et al. A smar t library of epoxide hydrolase variants and the top hits for synthesis of (S)-β-blocker precursors[J]. Angewandte Chemie,2014,53(26):6641-6644.

      [26] XUE F,LIU Z Q,ZOU S P,et al. A novel enantioselective epoxide hydrolase from Agromyces mediolanus ZJB120203:cloning,characterization and application[J]. Process Biochemistry,2014,49(3):409-417.

      [27] SPELBERG J H L,RINK R,ARCHELAS A,et al. Biocatalytic potential of the epoxide hydrolase from Agrobacterium radiobacter AD1 and a mutant with enhanced enantioselectivity [J]. Advanced Synthesis amp; Catalysis,2002,344(9):980-985.

      [28] THOMAEUS A,NAWORYTA A,MOWBRAY S L,et al. Remova l of distal protein-water hydrogen bonds in a plant epoxide hydrolase increases catalytic turnover but decreases thermostability[J]. Protein Science,2010,17(7):1275-1284.

      [29] WOO J H,HWANG Y O,KANG J H,et al. Enantioselective hydrolysis of racemic epichlorohydrin using an epoxide hydrolase from Novosphingobium aromaticivorans[J]. Journal of Bioscience And Bioengineering,2010,110(3):295-297.

      [30] YILDIRIM D,TUKEL S S,ALPTEKIN O,et al. Immobi lized Aspergillus niger epoxide hydrolases:cost-effective biocatalysts for the prepation of enantiopure styrene oxide,propylene oxide and epichlorohydrin [J]. Journal of Molecular Catalysis B:Enzymatic,2013,88(2):84-90.

      [31] XUE F,LIU Z Q,WAN N W,et al. Engineering the epoxide hydrolase from Agromyces mediolanus for enhanced enantioselectivity and activity in the kinetic resolution of racemic epichlorohydrin[J]. RSC Advances,2015,5(40):31525-31532.

      Research and development on key enzymes for biosynthesis of chiral epichlorohydrin using glycerol

      ZHANG Xiaojian1,2,ZHENG Yuguo1,2
      1. College of Biotechnology and Bioengineering, Zhejiang University of Technology, Hangzhou 310014, China 2. Key Laboratory of Bioorganic Synthesis of Zhejiang Province, Hangzhou 310014, China

      Chiral epichlorohydrin is an important three-carbon chiral building block for applications in pharmacy, pesticide,chemical, material and many other industries. It is of great value to develop green process for chiral epichlorohydrin synthesis from glycerol. Technologies of biocatalytic synthesis were applied to improve process safety, to reduce waste discharge,and to upgrade product quality. The biosynthesis chiral epichlorohydrin was developed, and the related technologies were described including design of synthetic route, construction of halogenase library, screening and modi fi cation of halohydrin dehalogenase and epoxide hydrolase, as well as production of chiral epichlorohydrin using halohydrin dehalogenase/epoxide hydrolase cascade biocatalysis. Our studies contribute to the exploration and development of chiral epichlorohydrin synthesis.

      glycerol; chiral epichlorohydrin; 1,3-dichloro-2-propanol; biocatalysis; halohydrin dehalogenase; epoxide hydrolase

      10.3969/j.issn.1674-0319.2017.06.009

      鄭裕國,教授,博士生導(dǎo)師。浙江工業(yè)大學(xué)生物工程學(xué)院院長、生物轉(zhuǎn)化與生物凈化教育部工程研究中心主任、浙江省生物有機合成技術(shù)研究重點實驗室主任、浙江省生物催化與微生物發(fā)酵重點科技創(chuàng)新團(tuán)隊負(fù)責(zé)人等。長期從事生物化工研究和產(chǎn)業(yè)化技術(shù)開發(fā),以第一完成人獲國家技術(shù)發(fā)明二等獎2項、國家科技進(jìn)步二等獎1項、省部級科學(xué)技術(shù)一等獎6項、中國專利優(yōu)秀獎1項。發(fā)表SCI論文200余篇,授權(quán)發(fā)明專利90多件。主持開發(fā)的產(chǎn)業(yè)化技術(shù)建成工業(yè)化生產(chǎn)裝置10余套,近3年新增銷售50多億元。先后獲得全國優(yōu)秀教師、全國優(yōu)秀科技工作者、浙江省功勛教師等稱號。E-mail:zhengyg@zjut.edu.cn

      猜你喜歡
      鹵化環(huán)氧氯丙烷水解酶
      無底物情況下來白Rhoclococcus zopfii的腈水解酶中親核進(jìn)攻試劑CYS165的活性狀態(tài)的探究(英文)
      腈水解酶反應(yīng)機制與催化性能調(diào)控研究進(jìn)展
      S-環(huán)氧氯丙烷異構(gòu)體的分析方法
      氨基甲酸乙酯水解酶的家族生物信息學(xué)分析
      色氨酸鹵化酶研究進(jìn)展
      開元化工環(huán)氧氯丙烷一期工程竣工
      化工大數(shù)據(jù) 圖說環(huán)氧氯丙烷
      廣州化工(2020年7期)2020-04-28 10:13:52
      能變色的眼鏡
      石油化工應(yīng)用(2018年3期)2018-03-24 14:54:36
      石墨烯-鹵化丁基橡膠復(fù)合材料的制備方法及應(yīng)用
      铁力市| 江阴市| 齐河县| 东城区| 岳普湖县| 巴塘县| 龙口市| 沛县| 安溪县| 陈巴尔虎旗| 富顺县| 蚌埠市| 杭州市| 涞水县| 博爱县| 迭部县| 乌鲁木齐县| 四川省| 和林格尔县| 喀什市| 石泉县| 哈尔滨市| 三门县| 成安县| 金乡县| 吐鲁番市| 龙岩市| 华安县| 兴和县| 读书| 沙湾县| 金塔县| 湘乡市| 光泽县| 屯门区| 巴林左旗| 临颍县| 庐江县| 荥经县| 唐海县| 中山市|