袁冬寅
龍 軍2
龔志華1
林 玲1
周 陽(yáng)1
彭影琦1
肖文軍1,3
(1. 湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)茶學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖南 長(zhǎng)沙 410128;2. 常德市柳葉湖旅游度假區(qū)七里橋街道辦事處,湖南 常德 415000;3. 湖南省植物功能成分利用協(xié)同創(chuàng)新中心,湖南 長(zhǎng)沙 410128)
L-茶氨酸對(duì)α-淀粉酶和胰蛋白酶的抑制作用
袁冬寅1
龍 軍2
龔志華1
林 玲1
周 陽(yáng)1
彭影琦1
肖文軍1,3
(1. 湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)茶學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖南 長(zhǎng)沙 410128;2. 常德市柳葉湖旅游度假區(qū)七里橋街道辦事處,湖南 常德 415000;3. 湖南省植物功能成分利用協(xié)同創(chuàng)新中心,湖南 長(zhǎng)沙 410128)
以L-茶氨酸為原料,通過(guò)建立最佳酶促反應(yīng)體系,采用非連續(xù)測(cè)定和作圖法研究了L-茶氨酸對(duì)α-淀粉酶、胰蛋白酶的抑制作用及其動(dòng)力學(xué)特征,為L(zhǎng)-茶氨酸的深層開(kāi)發(fā)利用提供參考。結(jié)果表明,L-茶氨酸對(duì)α-淀粉酶和胰蛋白酶的抑制效果均與其質(zhì)量濃度呈正比,在底物質(zhì)量濃度1%、體系添加順序?yàn)槊概c抑制劑在37 ℃預(yù)熱5 min后加入底物的條件下,L-茶氨酸抑制α-淀粉酶的最優(yōu)條件為α-淀粉酶質(zhì)量濃度0.018 mg/mL、反應(yīng)時(shí)間3 min,IC50為26.078 mg/mL,當(dāng)酶量為18 518.52 U時(shí),α-淀粉酶的Km為2.247 mg/mL;在底物質(zhì)量濃度1%、體系添加順序?yàn)橐鹊鞍酌概c抑制劑在40 ℃預(yù)熱5 min后加入底物的條件下,L-茶氨酸抑制胰蛋白酶的最優(yōu)條件為胰蛋白酶質(zhì)量濃度0.252 mg/mL、反應(yīng)時(shí)間15 min,IC50為196.299 mg/mL,當(dāng)酶量為1 055 931 U時(shí),胰蛋白酶的Km為5.189 mg/mL。說(shuō)明L-茶氨酸對(duì)α-淀粉酶和胰蛋白酶均有一定的抑制作用,且抑制α-淀粉酶的效果較好。
L-茶氨酸;α-淀粉酶;胰蛋白酶;抑制作用;糖脂代謝
L-茶氨酸(N-乙基-γ-L-谷氨酰胺)是茶葉中特有的一種非蛋白質(zhì)氨基酸,屬酰胺類(lèi)化合物[1],具有降血壓[2]、提高記憶力[3-4]、安神鎮(zhèn)靜[5]、保護(hù)腦神經(jīng)細(xì)胞[6]、調(diào)節(jié)免疫[7]、輔助抗腫瘤[8]、減肥降脂[9]等多種生物活性,廣泛應(yīng)用于醫(yī)療、保健、食品等領(lǐng)域[10]。α-淀粉酶、胰蛋白酶是與機(jī)體糖脂代謝密切相關(guān)的兩種酶[11-12],其中,α-淀粉酶是水解淀粉和糖原的酶類(lèi)總稱(chēng),是一種淀粉內(nèi)切酶,其作用方式是在淀粉分子內(nèi)部隨機(jī)切開(kāi)α-1,4糖苷鍵,并生成糊精和還原糖[13-14];胰蛋白酶是動(dòng)物胰臟的主要蛋白質(zhì)水解酶[15],能將蛋白質(zhì)分解成氨基酸,供人體吸收利用[16]。然而,目前尚未見(jiàn)L-茶氨酸抑制α-淀粉酶、胰蛋白酶生物活性研究的相關(guān)報(bào)道。為探索L-茶氨酸體外調(diào)節(jié)糖脂代謝的生物活性,本研究以L-茶氨酸為原料,通過(guò)建立最佳酶促反應(yīng)體系,采用非連續(xù)測(cè)定和作圖法研究L-茶氨酸對(duì)α-淀粉酶、胰蛋白酶的抑制作用及其動(dòng)力學(xué)特征,以期為L(zhǎng)-茶氨酸的深層開(kāi)發(fā)利用提供參考。
1.1 材料與試劑
L-茶氨酸:純度≥98%,德國(guó)Sigma試劑公司;
α-淀粉酶(Lot.RM3018Y359):4 U/mg,上海瑞永生物科技有限公司;
胰蛋白酶(批號(hào)20160216):50 U/mg,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;
可溶性淀粉、干酪素、碳酸鈉、四水酒石酸鉀鈉、三氯乙酸、福林酚:國(guó)產(chǎn)分析純。
1.2 儀器與設(shè)備
精密電子天平:Mettler AE240型,梅特勒-托利多儀器上海有限公司;
pH計(jì):PHS22C型,上海雷磁儀器廠;
數(shù)顯恒溫水浴鍋:HH型,上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;
紫外分光光度計(jì):UV-2550型,日本島津公司。
1.3 方法
1.3.1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線制作 配制2 mg/mL的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)液,分別吸取0.00,0.05,0.10,0.15,0.20,0.25,0.30 mL置于10 mL容量瓶中,在37 ℃水浴鍋中預(yù)熱5 min后,各加入0.5 mL DNS溶液混合,沸水浴5 min,冷卻,加水定容至10 mL,用分光光度計(jì)于540 nm測(cè)吸光值。以不加葡萄糖溶液為空白對(duì)照組。求得葡萄糖的標(biāo)準(zhǔn)曲線為y=12.046x+0.022 7 (R2=0.999) 。
1.3.2α-淀粉酶最適酶促反應(yīng)條件篩選
(1) 酶質(zhì)量濃度確定:配制質(zhì)量濃度分別為0.006,0.010,0.014,0.018,0.022,0.026,0.030 mg/mL的α-淀粉酶溶液,分別置于7支試管中,在37 ℃條件下與底物溶液混勻進(jìn)行反應(yīng),于540 nm處測(cè)吸光值,選擇最佳酶質(zhì)量濃度。
(2) 反應(yīng)時(shí)間及酶量確定:采用最佳酶質(zhì)量濃度,按表1順序添加試劑,測(cè)定反應(yīng)初始速率。由于建立動(dòng)力學(xué)方程最重要的是確定酶量與反應(yīng)時(shí)間,以確保酶初始速率達(dá)到最大,即當(dāng)?shù)孜餄舛茸銐虼髸r(shí),反應(yīng)速率趨于極限值,幾乎不再隨底物濃度的增加而改變,符合零級(jí)反應(yīng)特征;酶量過(guò)高或過(guò)低都不適宜建立酶反應(yīng)動(dòng)力學(xué)方程。因此,選擇的酶量須保證每分鐘反應(yīng)體系在540 nm處的吸光值變化為0.03~0.25[17]。酶反應(yīng)開(kāi)始時(shí),立即計(jì)時(shí),每隔1 min,加入DNS溶液終止反應(yīng),于540 nm處測(cè)吸光值,篩選最佳反應(yīng)時(shí)間和最佳酶量。
表1 酶量確定
(3) 酶促反應(yīng)動(dòng)力學(xué)方程的建立:采用最佳反應(yīng)時(shí)間和最佳酶量,保持酶質(zhì)量濃度不變,分別在0.6%,0.8%,1.0%,1.2%,1.4%,1.6%的底物濃度下,于540 nm處測(cè)吸光值,并計(jì)算出酶促反應(yīng)的初始速率,按雙倒數(shù)法作圖(Vmax=1/縱截距,Km=斜率×Vmax)與米氏方程(1/V=Km/Vmax×1/[S]+1/Vmax),求出Km和Vmax。
(4) 底物、酶、抑制劑添加順序確定:采用最佳反應(yīng)時(shí)間,將可溶性淀粉、α-淀粉酶、L-茶氨酸按如下3種順序添加:① 3種物質(zhì)先各自在37 ℃水浴鍋中預(yù)熱5 min,再同時(shí)加入試管中反應(yīng);② 先將可溶性淀粉與L-茶氨酸置于試管中,在37 ℃水浴鍋中預(yù)熱5 min,再加入α-淀粉酶反應(yīng);③ 先將α-淀粉酶與L-茶氨酸置于試管中,在37 ℃水浴鍋中預(yù)熱5 min,再加入可溶性淀粉反應(yīng)。比較3種方式的抑制率,選擇最佳添加順序。
1.3.3 最優(yōu)酶促反應(yīng)條件下L-茶氨酸對(duì)α-淀粉酶的抑制效果 采用最佳添加順序,在9支試管中分別加入α-淀粉酶與質(zhì)量濃度為2,10,15,20,25,30,35,40,45 mg/mL的L-氨基酸,搖勻,在37 ℃水浴鍋中預(yù)熱5 min,加底物反應(yīng)3 min后,立即加入DNS溶液,沸水浴5 min,冷卻,稀釋。背景對(duì)照為底物溶液與抑制劑,空白對(duì)照為煮沸的酶液,在540 nm處測(cè)吸光值。抑制活性按式(1)計(jì)算,其中A值均為540 nm處的吸光值。
1.3.4 酪氨酸標(biāo)準(zhǔn)曲線制作 配制質(zhì)量濃度為1 mg/mL的酪氨酸,用時(shí)再稀釋10倍得0.1 mg/mL的酪氨酸標(biāo)準(zhǔn)溶液。按表2順序添加試劑,混合,放入40 ℃水浴保溫20 min后,冷卻至室溫,于660 nm比色。1號(hào)試管為空白對(duì)照組。求得酪氨酸的標(biāo)準(zhǔn)曲線為y=0.063 8x+0.020 7 (R2=0.998 1)。
表2 酪氨酸標(biāo)準(zhǔn)曲線試劑加入順序
1.3.5 胰蛋白酶最適酶促反應(yīng)條件篩選
(1) 酶質(zhì)量濃度確定:配制質(zhì)量濃度分別為0.042,0.084,0.126,0.168,0.210,0.252,0.294 mg/mL的胰蛋白酶溶液置于7支試管中,在40 ℃條件下與底物混勻進(jìn)行反應(yīng),于660 nm處測(cè)定吸光值,選擇合適的酶質(zhì)量濃度。
(2) 反應(yīng)時(shí)間確定:在40 ℃的水浴條件下,于6支試管中分別加入最佳質(zhì)量濃度的胰蛋白酶溶液與底物反應(yīng),于660 nm處測(cè)不同反應(yīng)時(shí)間(5,10,15,20,25,30 min)下的吸光值,并計(jì)算出酪氨酸的生成量,選擇最適酶促反應(yīng)時(shí)間。
(3) 酶促反應(yīng)動(dòng)力學(xué)方程的建立:經(jīng)預(yù)試驗(yàn),確定進(jìn)行酶促反應(yīng)動(dòng)力學(xué)常數(shù)測(cè)定的酶量為1 055 931 U,反應(yīng)時(shí)間為3 min,保持酶質(zhì)量濃度不變,在不同的底物濃度(0.4%,0.6%,0.8%,1%,1.2%,1.4%)下,于660 nm處測(cè)吸光值,并計(jì)算出酶促反應(yīng)的初始速率,按雙倒數(shù)法作圖(Vmax=1/縱截距,Km=斜率×Vmax)與米氏方程(1/V=Km/Vmax×1/[S]+1/Vmax),求出Km和Vmax。
(4) 底物、酶、抑制劑添加順序確定:采用最佳反應(yīng)時(shí)間,將干酪素、胰蛋白酶、L-茶氨酸按如下3種順序添加:① 3種物質(zhì)先各自在40 ℃的水浴中預(yù)熱5 min,再同時(shí)加入試管中反應(yīng);② 先將干酪素與L-茶氨酸置于試管中,在40 ℃的水浴中預(yù)熱5 min,再加入胰蛋白酶反應(yīng);③ 先將胰蛋白酶與L-茶氨酸置于試管中,在40 ℃的水浴中預(yù)熱5 min,再加入干酪素反應(yīng)。比較3種方式的抑制率,選擇最佳添加順序。
1.3.6 最優(yōu)酶促反應(yīng)條件下L-茶氨酸對(duì)胰蛋白酶的抑制效果 采用最佳添加順序,在5支試管中分別加入胰蛋白酶與質(zhì)量濃度分別為2,50,100,150,200 mg/mL的L-氨基酸,混勻,在40 ℃水浴中預(yù)熱5 min,再加入底物反應(yīng)15 min后,立即加入TCA溶液終止反應(yīng),3 500 r/min離心10 min,取上清液,加碳酸鈉和福林酚,40 ℃水浴保溫20 min,冷卻,于660 nm處測(cè)定吸光值。背景對(duì)照為底物溶液與抑制劑,空白組為失活的酶液。抑制率按式(1)計(jì)算,其中A值均為660 nm處的吸光值。
1.3.7 色度測(cè)定
(1) 不同濃度的葡萄糖色度:采用紫外分光光度計(jì)測(cè)定,用吸光值A(chǔ)540來(lái)表示。
(2) 不同濃度的酪氨酸色度:采用紫外分光光度計(jì)測(cè)定,用吸光值A(chǔ)660來(lái)表示。
1.3.8 檢測(cè)及統(tǒng)計(jì)方法
(1) 抑制率:按式(1)計(jì)算抑制率。
(1)
式中:
I——抑制率,%;
A1、A2、A3、A4——分別為無(wú)抑制組、空白組、加抑制組和背景對(duì)照組的吸光值。
(2)α-淀粉酶活力測(cè)定:采用Berndeld法[18]。
(3) 胰蛋白酶活力測(cè)定:采用Lowry蛋白質(zhì)測(cè)定法[19]。
(4) 統(tǒng)計(jì)方法:數(shù)據(jù)利用Excel 2013處理,IC50利用SPSS軟件中的Profit分析方法計(jì)算得出。
2.1α-淀粉酶最適酶促反應(yīng)條件篩選
2.1.1 酶質(zhì)量濃度確定 由圖1可知,在一定范圍內(nèi),隨著酶質(zhì)量濃度的增加,吸光值增大。α-淀粉酶質(zhì)量濃度在0.01~0.018 mg/mL時(shí),有較好的線性關(guān)系,吸光值與酶質(zhì)量濃度呈正比。α-淀粉酶質(zhì)量濃度在0.01~0.022 mg/mL時(shí),反應(yīng)速率隨酶質(zhì)量濃度的增加而逐漸減慢,最終將達(dá)到平衡。為使酶促反應(yīng)速率保持最大,α-淀粉酶質(zhì)量濃度宜選擇0.018 mg/mL。
圖1 α-淀粉酶質(zhì)量濃度對(duì)酶活性的影響
2.1.2 反應(yīng)時(shí)間與酶量確定 由圖2可知,反應(yīng)時(shí)間在3 min內(nèi),線性反應(yīng)速度隨著酶量的增加而增大。比較不同酶量的反應(yīng)時(shí)間,發(fā)現(xiàn)所有的酶反應(yīng)進(jìn)程曲線在3 min內(nèi),均有較好的線性關(guān)系,因此選擇3 min內(nèi)測(cè)得的速度為反應(yīng)初始速率。參照劉睿等[17]的研究方法,比較反應(yīng)初速率,確定以酶量18 518.52 U、反應(yīng)時(shí)間3 min進(jìn)行酶反應(yīng)動(dòng)力學(xué)研究。
圖2 α-淀粉酶不同酶量的反應(yīng)進(jìn)程曲線
2.1.3 酶促反應(yīng)動(dòng)力學(xué)方程的建立 由圖3可知,擬合曲線方程為y=12.304x+5.474 8,R2=0.993 4,求得Vmax=0.183 mg/(mL·min),Km=2.247 mg/mL。
2.1.4 底物、酶、L-茶氨酸添加順序確定 由圖4可知,添加順序?yàn)棰?、②、③的抑制率分別為18.6%,16.8%,20.6%,但3種添加順序的差異不顯著(P>0.05),其中順序③的抑制率相對(duì)最高,比順序②的抑制率高出3.8%,因此選順序③作為酶促反應(yīng)體系的添加順序,與劉雯等[20]建立的抑制劑添加順序一致。
2.2 最優(yōu)酶促反應(yīng)條件下L-茶氨酸對(duì)α-淀粉酶的抑制效果
由圖5可知,L-茶氨酸對(duì)α-淀粉酶的抑制效果隨L-茶氨酸質(zhì)量濃度的增大而增加;當(dāng)L-茶氨酸質(zhì)量濃度高于25 mg/mL時(shí),抑制率的增長(zhǎng)速度加快。當(dāng)L-茶氨酸質(zhì)量濃度到達(dá)45 mg/mL時(shí),抑制率為97.9%。經(jīng)計(jì)算,L-茶氨酸對(duì)α-淀粉酶的IC50為26.078 mg/mL。
圖3 α-淀粉酶的米氏方程曲線
圖4 不同添加順序?qū)Ζ?淀粉酶抑制作用的影響
圖5 不同質(zhì)量濃度L-茶氨酸對(duì)α-淀粉酶的抑制效果
2.3 胰蛋白酶最適酶促反應(yīng)條件篩選
2.3.1 酶質(zhì)量濃度確定 由圖6可知,吸光值隨胰蛋白酶質(zhì)量濃度的增加而增大且最終趨于平穩(wěn),當(dāng)酶質(zhì)量濃度達(dá)到0.252 mg/mL時(shí),吸光值已達(dá)最大值,說(shuō)明胰蛋白酶與底物基本反應(yīng)完全。因此選擇酶質(zhì)量濃度0.252 mg/mL較為合適。
2.3.2 酶促反應(yīng)時(shí)間確定 由圖7可知,酶促反應(yīng)時(shí)間在0~15 min時(shí),產(chǎn)物的含量隨時(shí)間的延長(zhǎng)而增多。在反應(yīng)15 min后,吸光值趨于穩(wěn)定,產(chǎn)物含量的增長(zhǎng)速率變慢,說(shuō)明胰蛋白酶與底物基本完全反應(yīng)。因此,反應(yīng)時(shí)間選擇15 min較為合適。
圖6 胰蛋白酶質(zhì)量濃度對(duì)酶活性的影響
圖7 最佳反應(yīng)時(shí)間的篩選
2.3.3 酶反應(yīng)動(dòng)力學(xué)方程的建立 由圖8可知,擬合曲線方程為y=49.783x+9.593 1,R2=0.994 0,求得Vmax=0.104 mg/(mL·min),Km=5.189 mg/mL。
圖8 胰蛋白酶的米氏方程曲線
2.3.4 底物、酶、L-茶氨酸添加順序確定 由圖9可知,添加順序?yàn)棰佟ⅱ?、③的抑制率分別為14.24%,13.57%,13.90%,抑制率結(jié)果與秦昱等[12]抑制劑添加順序結(jié)果一致,且3種添加順序的差異不顯著(P>0.05),為了避免底物的干擾并降低試驗(yàn)操作的難度,故選擇順序③作為酶促反應(yīng)體系的添加順序。
2.4 最優(yōu)酶促反應(yīng)條件下L-茶氨酸對(duì)胰蛋白酶的抑制效果
由圖10可知,在試驗(yàn)設(shè)定的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),L-茶氨酸對(duì)胰蛋白酶活性的抑制呈量效關(guān)系,抑制效果隨質(zhì)量濃度的增大而增加。經(jīng)計(jì)算,L-茶氨酸對(duì)胰蛋白酶的IC50為196.299 mg/mL。
圖9 反應(yīng)體系添加順序?qū)σ鹊鞍酌敢种菩Ч挠绊?/p>
圖10 不同質(zhì)量濃度L-茶氨酸對(duì)胰蛋白酶抑制作用
Figure 10 Inhibitory effect ofL-theanine at various concentrations on the activity of trypsin
研究表明,L-茶氨酸對(duì)α-淀粉酶、胰蛋白酶均有一定的抑制作用,其半抑制濃度分別為26.078,196.299 mg/mL。α-淀粉酶在酶量為18 518.52 U、反應(yīng)時(shí)間為3 min時(shí)得Km為2.247 mg/mL。胰蛋白酶在酶量為1 055 931 U,反應(yīng)時(shí)間為3 min時(shí)得Km為5.189 mg/mL。本試驗(yàn)對(duì)L-茶氨酸體外抑制這兩種酶的作用進(jìn)行了初步研究,為進(jìn)一步探討L-茶氨酸對(duì)α-淀粉酶、胰蛋白酶的抑制類(lèi)型及其調(diào)節(jié)糖脂代謝的作用機(jī)制提供依據(jù),為其功能產(chǎn)品的開(kāi)發(fā)利用提供了參考。
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Inhibitory effects of L-theanine on α-amylase and trypsin
YUANDong-yin1
LONGJun2
GONGZhi-hua1
LINLing1
ZHOUYang1
PENGYing-qi1
XIAOWen-jun1,3
(1.KeyLaboratoryofTeaScienceofEducationalMinistration,HunanAgriculturalUniversity,Changsha,Hunan410128,China; 2.QiliBridgeSubdistrictOffice,WillowLakeResort,ChangdeCity,Changde,Hunan415000,China; 3.HunanCollaborativeInnovationCenterforUtilizationofFunctionalIngredientsfromBotanicals,Changsha,Hunan410128,China)
The inhibitory effects ofL-theanine on the activities ofα-amylase and trypsin were studied by establishing the best reaction system and adopting research method on graph in order to provide reference for the deep development ofL-theanine. The results showed that the inhibitory effects ofL-theanine on both enzyme activities were positively associated with its concentration.IC50(26.078 mg/mL) ofL-theanine on the activities ofα-amylase was achieved by prewarming enzyme at a concentration of 0.018 mg/mL in the presence ofL-theanine at 37 ℃ for 5 min before addition of 1% starch and allowing reaction to proceed for 3 min.Kmofα-amylase was 2.247 mg/mL on the premise that the enzyme amount was 18 518.52 U.L-theanine exhibited the half inhibition on trypsin (196.299 mg/mL) by prewarming their mixture at 40 ℃ for 5 min followed by addition of 1% casein as the substrate and permitting the reaction for 15 min. When the amount of enzyme was 1 055 931 U,Kmof trypsin was 5.189 mg/mL. Statistics results showed that the inhibitory effect ofL-theanine on the activity ofα-amylase was superior than that of trypsin.
L-theanine;α-amylase; trypsin; inhibitory effect; glucose and lipid metabolism
湖南省科技廳重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃(編號(hào):2016NK2102)
袁冬寅,女,湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)在讀碩士研究生。
肖文軍(1969—),男,湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)教授,博導(dǎo)。 E-mail:xiaowenjun88@sina.com
2017—05—04
10.13652/j.issn.1003-5788.2017.07.001