王艷華,王東武
?
嗅鞘細胞移植與α晶體蛋白聯(lián)合對大鼠視神經(jīng)損傷后視功能恢復的促進作用
王艷華1,王東武2
目的 研究嗅鞘細胞(olfactory ensheathing cells, OECs )移植與α晶體蛋白聯(lián)合對大鼠視神經(jīng)損傷后視功能恢復的促進作用。方法 玻璃體腔α晶體蛋白注射,聯(lián)合視神經(jīng)損傷近端移植OECs,分為4個實驗組,包括α晶體蛋白注射組、OECs移植組、α晶體蛋白注射+OECs移植組、PBS對照組。于視神經(jīng)損傷并移植OECs+玻璃體腔注射藥物后即刻、1周、2周、1個月、2個月、3個月,用全自動眼電生理儀進行閃爍視覺誘發(fā)電位(flash-elicited visual-evoked potential,F(xiàn)VEP)檢測,分析比較各時間點各組P1波的振幅及潛時。結(jié)果 OECs移植組及α晶體蛋白注射+OECs移植組FVEP的P1波振幅于視神經(jīng)損傷后1周[(8.49±1.19)μv, (9.33±2.54)μv]、2周[(8.85±1.92)μv,(9.43±2.41)μv]、1個月[(8.46±1.09)μv,(8.72±1.91)μv]、2個月[(8.12±1.41)μv,(8.48±1.67)μv]、3個月[(7.68±2.56)μv,(8.08±1.47)μv],均顯著高于對照組(P<0.01),二者聯(lián)合組P1波振幅恢復更為明顯。3個實驗組FVEP的P1波潛時與對照組比較,均無統(tǒng)計學差異。結(jié)論 OECs移植與α晶體蛋白均明顯促進視神經(jīng)損傷后FVEP電生理的恢復,其中,二者聯(lián)合的作用最為明顯。
α晶體蛋白;嗅鞘細胞;視神經(jīng)損傷修復
嗅鞘細胞(olfactory ensheathing cells,OECs)及其伴隨的嗅神經(jīng)纖維細胞(olfactory nerve fibroblasts,ONFs)移植,可明顯促進脊髓及視神經(jīng)損傷后神經(jīng)的再生[1, 2],但是視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細胞(Retinal ganglion cells, RGCs)的神經(jīng)纖維離開移植的OECs/ONFs形成的“髓鞘樣”通道后,難以繼續(xù)再生,更不能實現(xiàn)長距離再生到達視中樞[2]。玻璃體腔注射α晶體蛋白,也能促進視神經(jīng)損傷后RGCs存活和軸突再生[3-5],但是在視神經(jīng)損傷后1個月促進再生作用基本消失[3]。筆者前期的研究發(fā)現(xiàn),OECs移植聯(lián)合α晶體蛋白能更有效地促進視神經(jīng)再生[6],但對視功能的修復尚缺乏研究。本實驗通過大鼠視神經(jīng)損傷后FVEP檢測,研究OECs移植聯(lián)合α晶體蛋白對視神經(jīng)損傷后視功能的修復作用,進而為神經(jīng)損傷和再生的基礎研究提供理論依據(jù)。
1.1 材料 成年(250~300 g)Long Evans大鼠,雌雄不限。由第三軍醫(yī)大學實驗動物中心提供,符合國家醫(yī)用動物使用標準,標準號為清潔級,檢證字SCXK(渝)20020003。
1.2 細胞培養(yǎng)及鑒定 參照文獻[7]進行OECs/ONFs培養(yǎng)。取成年Long Evans大鼠(體重250~300 g)斷頸處死,取出嗅球,取嗅神經(jīng)層和外顆粒層用0.125%胰酶消化15 min,37 ℃。用含10%胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)液終止消化,加入0.5%DNAse,吸管吹打10次后,1000 r/min,離心5 min。棄上清,加入含10%胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)液,輕輕吹打成單細胞懸液,接種至L-多聚賴氨酸包被的6孔培養(yǎng)板中,37 ℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)。第5天首次換液,余每3 d換液。培養(yǎng)第14天,細胞密度達1.5×106。參照文獻[6,8]分別用兔抗大鼠S-100單抗 (1∶200, Sigma, 美國)鑒定OECs,小鼠抗大鼠纖維連接蛋白鑒定ONFs(1∶200, Santa Cruz Biotechnology, 美國)。二抗為山羊抗小鼠IgG-FITC和山羊抗兔IgG-cy3 (Boster, 中國)。
1.3 大鼠視神經(jīng)鉗夾傷模型制作及實驗分組 參照文獻[4]進行視神經(jīng)夾傷及注射。每組6只,共24只實驗大鼠用10%水合氯醛(0.4 ml/100 g)腹腔注射麻醉,固定于手術臺,手術顯微鏡下剪開大鼠手術眼上穹隆結(jié)膜約120°,避開渦靜脈,鈍性分離暴露視神經(jīng),在眼球后1 mm處,用11號尖刀沿視神經(jīng)縱軸方向縱行挑開視神經(jīng)鞘膜長4~5 mm,避免損傷視神經(jīng),用中號無創(chuàng)血管夾在球后2 mm處鉗夾視神經(jīng)10 s,鉗夾傷后即刻,在夾傷近端,用35 G的NF35BV-2針頭垂直視神經(jīng)注射OECs(濃度1×106/ml)單細胞懸液或0.01 M的PBS,注射量3 μl,注射速度要緩慢,約40 s注完,注射結(jié)束后,留針2 min再拔針。術后載玻片輕壓角膜,鏡下觀察眼底,無缺血者納入實驗。α晶體蛋白(10-4g/L,5 μl)或PBS(0.01 M,5 μl)用10μl的微量進樣器于距離視乳頭約2 mm的鞏膜壁上,垂直于視神經(jīng)縱軸刺入玻璃體腔。術畢分層縫合。術后大鼠術眼涂托百士眼膏,送西南醫(yī)院動物所飼養(yǎng)。實驗分為4組:(1)OECs移植+α晶體蛋白注射組;(2)OECs移植組;(3)α晶體蛋白注射組;(4)PBS對照組。
1.4 FVEP電生理檢測視神經(jīng)功能 于視神經(jīng)損傷前、視神經(jīng)損傷并移植OECs+玻璃體腔注射藥物后即刻、1周、2周、1個月、2個月、3個月進行FVEP檢測。電生理檢查參照臨床視覺電生理標準[9],大鼠用10%水合氯醛(0.4 ml/100 g)腹腔注射麻醉,安放電極(記錄電極置于枕后隆凸皮下,參考電極置于雙眼連線中點皮下,接地電極置于鼠尾皮下),暗適應5 min,采用全視野刺激球白色閃光刺激,記錄FVEP。應用RETI-port 軟件測量潛伏期和幅值。每組6只大鼠,共24只大鼠。
2.1 OECs培養(yǎng) 培養(yǎng)的細胞主要由S100陽性的細胞和fibronectin陽性的細胞構(gòu)成。S100陽性的細胞呈梭形,或三角形,稱其為雪旺樣細胞;而fibronectin陽性細胞為扁平,不規(guī)則形,稱其為星形樣細胞,兩者相互交錯混合生長,無明顯分界。培養(yǎng)2周時,兩者之間的數(shù)目比例約為1∶1(圖1)。
圖1 大鼠嗅鞘細胞培養(yǎng)2周形態(tài)
A.相差×200;B. S100, fibronectin染色,S100為紅色,fibronectin為綠色。標尺50 μm
2.2 OECs與α晶體蛋白聯(lián)合對視功能修復的影響 手術前,大鼠FVEP可見明顯穩(wěn)定的P1波(圖2A)。視神經(jīng)損傷同時進行OECs損傷局部移植及α晶體蛋白注射后,P1波變得低平,潛時延遲(圖2B,表1)。術后7 d、14 d,OECs、α晶體蛋白及二者聯(lián)合組P1波振幅明顯恢復(P<0.01),而對照組無明顯恢復(圖2C、D,表1)。術后1個月,3個實驗組P1波振幅較損傷14 d有所下降,但與對照組相比仍有統(tǒng)計學差異(P<0.05) (圖2E,表1)。術后3個月,3個實驗組P1波振幅進一步降低,特別是α晶體蛋白組P1波振幅下降更為明顯,與對照組比較,差異無統(tǒng)計學意義,但OECs組及二者聯(lián)合組與對照組相比仍有統(tǒng)計學差異(P<0.01) (圖2F,表1)。術后各時間點,3個實驗組P1波潛時較術前均明顯延遲,且與對照組比較,差異均無統(tǒng)計學意義(P>0.05,表1)。
指標例數(shù)0h7d14d1個月2個月3個月P1波振幅(μv) OECs組64.6±1.38.5±1.2②8.8±1.9②8.5±1.1②8.1±1.4②④7.7±2.4②③ OECs+晶體蛋白組64.5±1.79.3±2.5②9.4±2.5②8.7±1.9②③8.5±1.7②④8.1±1.5②④ 晶體蛋白組64.3±2.08.3±2.6②8.3±2.6①6.6±1.2①5.2±1.44.9±1.8 PBS組64.4±1.34.8±1.75.1±1.94.2±2.24.4±1.34.4±1.3P1潛伏期(ms)OECs組6100.4±13.097.5±10.196.3±15.795.0±19.5121.8±10.8101.6±9.5 OECs+晶體蛋白組6102.9±10.998.4±11.6101.7±7.697.3±12.3114.6±15.5103.2±14.6 晶體蛋白組6104.9±11.199.5±11.991.3±13.989.8±11.9104.3±17.1105.8±16.9 PBS組6102.4±10.3102.7±12.195.0±16.098.6±20.9121.8±15.2113.5±15.9
注:與PBS組比較,①P<0.05,②P<0.01;與晶體蛋白組比較,③P<0.05,④P<0.01
圖2 視神經(jīng)損傷同時行OECs移植、α晶體蛋白注射術前、術后各組FVEP波形
A.術前;B.術后當天;C.術后7 d;D.術后14 d;E.術后1個月;F.術后3個月
OECs是嗅覺系統(tǒng)中特殊的膠質(zhì)細胞,可分泌神經(jīng)生長因子、腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子、膠質(zhì)細胞源性生長因子、睫狀神經(jīng)營養(yǎng)因子等多種營養(yǎng)因子[10],對眾多中樞神經(jīng)元及RGCs具有保護和促進神經(jīng)再生的作用,為治療脊髓和視神經(jīng)的損傷提供了新的希望[2, 10-12]。雖然與脊髓損傷一樣,視神經(jīng)損傷局部OECs/ONFs移植同樣使膠質(zhì)發(fā)生重朔,并形成“髓鞘樣”通道,保護神經(jīng)再生到損傷遠端,但是與脊髓損傷所不同的是,再生的RGCs軸突在離開OECs形成的“髓鞘樣”通道進入損傷遠端后,末端形成囊樣膨大而不能到達靶中樞[2],說明單純OECs/ONFs移植存在局限性。具有熱休克蛋白功能的α晶體蛋白,不僅能保護視網(wǎng)膜色素上皮細胞、光感受器細胞及晶體上皮細胞的存活[13, 14];而且對視神經(jīng)損傷后RGCs的存活也具有顯著的保護作用,RGCs存活率在視神經(jīng)損傷后14 d可達95%[5]。此外,α晶體蛋白還具有明顯的促進視神經(jīng)再生的作用,玻璃體腔注射α晶體蛋白后,再生的軸突數(shù)比注射牛血清白蛋白組顯著增多,且這一作用持續(xù)到視神經(jīng)損傷后4周[3]。其機制是通過抑制軸突再生抑制物信號傳導的共同作用點——RhoA的激活,干擾RhoA/Rock信號通路、防止生長錐的萎縮而促進軸突再生[4]。雖然α晶體蛋白能保護RGCs存活,并促進軸突再生,但在視神經(jīng)損傷后4周其作用明顯減弱,并且再生軸突只達到損傷區(qū)遠端5 mm,沒有實現(xiàn)長距離再生[3],說明單純應用α晶體蛋白也存在局限性。筆者最近的研究已證明,OECs移植聯(lián)合α晶體蛋白能更有效的促進視神經(jīng)再生[6],但對視功能的修復尚缺乏研究。本實驗通過大鼠視神經(jīng)損傷后FVEP檢測,研究OECs移植聯(lián)合α晶體蛋白對視神經(jīng)損傷后視功能的修復作用。
FVEP 是視網(wǎng)膜受到閃光刺激后產(chǎn)生的視覺電生理活動,反映RGCs至視皮層的信息傳遞及視皮層的電生理活動。主要以P1波的潛伏期及振幅為分析依據(jù),潛伏期反映視神經(jīng)髓鞘功能,視神經(jīng)損傷時,發(fā)生脫髓鞘改變,傳導速度明顯減慢,表現(xiàn)為潛伏期延遲。振幅主要反映視神經(jīng)視網(wǎng)膜接受光刺激的功能,并與靶中樞形成突觸的數(shù)目有關,視神經(jīng)損傷時,神經(jīng)束內(nèi)壓力增高,神經(jīng)纖維水腫,軸索傳遞視覺信息及運輸營養(yǎng)因子的功能降低,表現(xiàn)為振幅降低[15, 16]。通過FVEP檢測視功能情況,具有客觀、無損傷、靈敏性好的特點。Sabel[17]研究結(jié)果說明,有10%的RGCs存活,就具備使視功能恢復的能力。Chow[18]和Galambos等[19]也證明,2%~3%的視神經(jīng)纖維與外膝體存在突觸聯(lián)系,就能夠具有較好的視功能。Hubel和Wiesel[20]發(fā)現(xiàn),有1%的細胞存在反應,就能夠產(chǎn)生一定的功能恢復。本實驗結(jié)果發(fā)現(xiàn),OECs移植、α晶體蛋白玻璃體腔注射,以及兩者聯(lián)合組,P1振幅于視神經(jīng)損傷后7 d即有明顯的恢復,OECs移植組及OECs與α晶體蛋白聯(lián)合組,P1振幅恢復情況于視神經(jīng)損傷后3個月仍非常顯著,但α晶體蛋白組于視神經(jīng)損傷后2個月P1振幅較損傷1周、2周及1個月下降明顯,這可能與α晶體蛋白單次注射,保護RGCs存活及促進視神經(jīng)再生作用持續(xù)短暫有關。與OECs移植組及α晶體蛋白組比較,各時間點OECs與α晶體蛋白聯(lián)合組P1振幅恢復情況均最為顯著,提示,OECs與α晶體蛋白聯(lián)合能更有效地促進損傷視神經(jīng)的功能修復。本實驗各實驗組的P1潛伏期均無明顯的恢復,提示OECs與α晶體蛋白不能促進視神經(jīng)纖維髓鞘化,與Li等[2]的研究結(jié)果相似,視神經(jīng)橫斷局部移植的OECs能伴隨視神經(jīng)纖維生長,但未形成髓鞘。
本實驗通過大鼠視神經(jīng)損傷后FVEP檢測,證明OECs移植與α晶體蛋白均明顯促進視神經(jīng)損傷后視功能的恢復,但二者聯(lián)合的作用更為明顯。為神經(jīng)損傷和再生的基礎研究提供理論依據(jù),為神經(jīng)損傷后再生及功能修復提供新思路。
[1] Raisman G, Li Y. Repair of neural pathways by olfactory ensheathing cells[J]. Nat Rev Neurosci, 2007, 8(4): 312-319.
[2] Li Y, Sauve Y, Li D,etal. Transplanted olfactory ensheathing cells promote regeneration of cut adult rat optic nerve axons[J]. J Neurosci, 2003,23(21):7783-7788.
[3] Ying X, Zhang J, Wang Y,etal. Alpha-crystallin protected axons from optic nerve degeneration after crushing in rats[J]. J Mol Neurosci, 2008, 35(3): 253-258.
[4] Wang Y H, Wang D W, Wu N,etal. Alpha-crystallin promotes rat axonal regeneration through regulation of RhoA/rock/cofilin/MLC signaling pathways[J]. J Mol Neurosci, 2012, 46(1): 138-144.
[5] Munemasa Y, Kwong J M, Caprioli J,etal. The role of alphaA- and alphaB-crystallins in the survival of retinal ganglion cells after optic nerve axotomy[J]. Invest Ophthalmol Vis Sci, 2009, 50(8): 3869-3875.
[6] Wang Y H, Yin Z Q, Wang Y. Synergistic effect of olfactory ensheathing cells and Alpha-crystallin on restoration of adult rat optic nerve injury[J]. Neurosci Lett, 2016, 638(12): 167-174.
[7] Cao L, Su Z, Zhou Q,etal. Glial cell line-derived neurotrophic factor promotes olfactory ensheathing cells migration[J]. Glia, 2006, 54(6): 536-544.
[8] Li Y, Field P M, Raisman G. Regeneration of adult rat corticospinal axons induced by transplanted olfactory ensheathing cells[J]. J Neurosci, 1998, 18(24): 10514-10524.
[9] 李海生,潘家普. 視覺電生理的原理與實踐[M].北京: 科學出版社, 1999: 190-223.
[10] Kocsis J D, Lankford K L, Sasaki M,etal. Unique in vivo properties of olfactory ensheathing cells that may contribute to neural repair and protection following spinal cord injury[J]. Neurosci Lett, 2009, 456(3): 137-142.
[11] Su Z, He C. Olfactory ensheathing cells: biology in neural development and regeneration[J]. Prog Neurobiol, 2010, 92(4): 517-532.
[12] Keyvan-Fouladi N, Raisman G, Li Y. Functional repair of the corticospinal tract by delayed transplantation of olfactory ensheathing cells in adult rats[J]. J Neurosci, 2003, 23(28): 9428-9434.
[13] Andley U P. Crystallins in the eye: function and pathology[J]. Prog Retin Eye Res, 2007, 26(1): 78-98.
[14] Mao Y W, Liu J P, Xiang H,etal. Human alphaA- and alphaB-crystallins bind to Bax and Bcl-X(S) to sequester their translocation during staurosporine-induced apoptosis[J]. Cell Death Differ,2004,11(5):512-526.
[15] Maier J, Dagnelie G, Spekreijse H,etal. Principal components analysis for source localization of VEPs in man[J]. Vision Res, 1987, 27(2): 165-177.
[16] Wolin M J, Lavin P J. Spontaneous visual recovery from traumatic optic neuropathy after blunt head injury[J]. Am J Ophthalmol, 1990, 109(4): 430-435.
[17] Sabel B A. Restoration of vision I: neurobiological mechanisms of restoration and plasticity after brain damage - a review[J]. Restorat Neurol Neurosci, 1999,15(2-3):177-200.
[18] Chow K L. Visual discriminations after extensive ablation of optic tract and visual cortex in cats[J]. Brain Res, 1968, 9(2): 363-366.
[19] Galambos R, Norton T T, Frommer G P. Optic tract lesions sparing pattern vision in cats[J]. Exp Neurol, 1967, 18(1): 8-25.
[20] Hubel D H, Wiesel T N. The period of susceptibility to the physiological effects of unilateral eye closure in kittens[J]. J Physiol, 1970, 206(2): 419-436.
(2017-01-20收稿 2017-03-15修回)
(責任編輯 武建虎)
Synergistic effect of olfactory ensheathing cells and alpha-crystallin on visual function recovery of adult rats after optic nerve injury
WANG Yanhua1and WANG Dongwu2.
1.Taiyuan Aier Eye Hospital, Taiyuan 030000, China; 2.Department of Orthopaedics, Hospital 8650, the Chinese People’s Armed Police Force, Jinzhong 030600, China
Objective To investigate the synergistic effect of olfactory ensheating cells (OECs) and α-crystallin on visual function recovery of nerve injury in adult rats.Methods α-crystallin was injected into the vitreous cavity, and OECs were transplanted to the area of optic nerve injury. The function of optic nerves was assessed by flash-elicited visual-evoked potential(FVEP) at 1 and 2 weeks, 1 and 3 months, and immediately after OECs transplantation and α-crystallin injection.Results Compared to PBS, OECs, the combination of OECs and α-crystallin promoted the recovery of the amplitude of P1 wave at 1 week [(8.49±1.19)μv, (9.33±2.54)μv], 2 weeks [(8.85±1.92)μv,(9.43±2.41)μv],1 month [(8.46±1.09)μv,(8.72±1.91)μv], 2 months [(8.12±1.41)μv,(8.48±1.67)μv] and 3 months [(7.68±2.56)μv,(8.08±1.47)μv] after optic nerve injury (P<0.01). The recovery of the amplitude of P1 wave was much more significantin the combination of OECs and α-crystallin group than in other groups. In α-crystallin group, the amplitude of P1 wave partly recovered after 1 and 2 weeks, but decreased after 1 month, and was not significantly different from that of the PBS group after 3 months. The latency of P1 wave did not recover in OECs group, α-crystallin group, or in the combination group.Conclusions Compared to OECs and α-crystallin alone, the effect of the combination of OECs and α-crystallin on functional recovery is significant.
α-crystallin;olfactory ensheathing cells;visual functional recovery
國家自然基金青年基金(31100706);中國博士后科學基金資助(2012M521872)
王艷華,博士后,副主任醫(yī)師。
1.030000,愛爾眼科醫(yī)院集團,太原愛爾眼科醫(yī)院;
2.030600 晉中,武警8650部隊醫(yī)院骨科
R774