徐健 李小莉 李一祿 陳濟明
誘導(dǎo)HO-1表達對慢性間歇性缺氧下INS-1細胞凋亡的影響
徐健 李小莉 李一祿 陳濟明
目的 了解誘導(dǎo)HO-1表達對慢性間歇性缺氧下INS-1細胞凋亡的影響。方法 通過不同濃度CoPP作用于慢性間歇性缺氧下INS-1細胞,觀察胰島素水平、HO-1及Caspase-3水平,采用RT-PCR檢測HO-1、Caspase-3mRNA表達。結(jié)果 隨著CoPP濃度增高,胰島素、HO-1表達逐漸增高,而Caspase-3逐漸降低,而CoPP濃度達到40umol/L時作用最強(P<0.05)。結(jié)論 慢性間歇性缺氧下誘導(dǎo)INS-1細胞HO-1表達,抑制凋亡相關(guān)蛋白Caspase-3,在一定程度上對細胞起保護作用。
慢性間歇性缺氧;INS-1;HO-1;凋亡;Caspase-3
阻塞性睡眠呼吸暫停低通氣綜合征(OSAHS)以睡眠中反復(fù)發(fā)作的呼吸暫?;蛏蠚獾拦W铻樘卣?,常常與打鼾、睡眠中斷、白天嗜睡和血氧飽和度降低相關(guān)[1]。研究證實,OSAHS引起的睡眠結(jié)構(gòu)紊亂和間歇性低氧,能誘發(fā)氧化應(yīng)激、炎癥反應(yīng),激活交感神經(jīng)系統(tǒng),損傷血管內(nèi)皮功能[2-7]。研究還發(fā)現(xiàn),OSAHS是獨立于肥胖的代謝綜合征的危險因素[8]。OSAHS與糖尿病之間關(guān)系越來越受到重視,但具體機制尚不完全清楚。已有研究發(fā)現(xiàn),胰島細胞凋亡在糖尿病發(fā)生發(fā)展是重要機制之一。HO-1系統(tǒng)是機體重要的內(nèi)源性保護系統(tǒng),主要通過抗炎,抗氧化、抗凋亡等機制起作用[9-11]。我們探討在間歇性缺氧條件下通過CoPP誘導(dǎo)INS-1胰島細胞HO-1表達,對INS-1胰島細胞凋亡的影響。
一、實驗材料
胰島β細胞株INS-1(上海拜力生物科技有限公司);牛血清白蛋白(Sigma);細胞培養(yǎng)試劑、胎牛血清、RPMI 1640培養(yǎng)基(均為Gibco)。CoPP(Sigma)。
二、方法
1 細胞培養(yǎng):胰島INS-1 細胞株購買后,用含10%新生牛血清,2mmol/LL-谷氨酰胺,1mmol/L 丙酮酸鈉,50mmoL/L -巰基乙醇,1×105IU/L 青霉素和100mg/L 鏈霉素的RPMI1640培養(yǎng)基,在37℃,5% CO2及飽和濕度的恒溫箱中培養(yǎng),每2-3d 傳代一次。
2 研究對象共分為六組: 將密度為1×105/mL的INS-1 細胞懸液接種至96 孔培養(yǎng)板,每組6個復(fù)孔,培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24h 后,置于自制密閉倉中,暴露時以缺氧(1.5% O2)氣流洗脫細胞培養(yǎng)中氣體,繼而維持缺氧狀態(tài)時間(即IH 時段),再以正常氧(21% O2)氣體洗脫缺氧氣體,而后再維持正常氧時間,周而復(fù)始形成循環(huán)。IH 暴露時間為12h,次數(shù)均為15次/h。細胞暴露的同時,分別加入不同濃度的CoPP(0、10、20、40、60、80)umol/L,12h后收集細胞及上清液進行相應(yīng)檢測。
3 細胞胰島素分泌檢測: 將細胞按5*104個/孔培養(yǎng)于24孔板, 暴露結(jié)束后,收集細胞上清液, 采用放射免疫分析法(試劑盒購于北京科美生物技術(shù)有限公司)測定胰島素水平。
4 RT-PCR檢測HO-1和Caspase-3 mRNA表達:采用TRIzol抽提細胞總RNA,按照標準抽提步驟進行RNA抽提;取樣品1ug,逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,采用PCR設(shè)計和評估軟件Primer 3.0設(shè)計實時PCR引物。引物序列:HO-1上游引物:ACAGAAGAGGCTAAGACCG;下游引物:CAGGCATCTCCTTCCATT。Caspase-3上游引物:CATGGAAGCGAATCAATGGACT;下游引物:CTGTACCAGACCGAGATGTCA。取樣本總cDNA2μl、上下游引物各1mL,按照試劑盒說明書配制相應(yīng)反應(yīng)參數(shù)的反應(yīng)體系。PCR擴增條件:94℃預(yù)變性2min;95℃變性1min,60℃退火20s,72℃延伸30s,共45個循環(huán)。運用數(shù)據(jù)分析軟件進行分析,采用2-△△Ct法計算,得到相對值。
三、統(tǒng)計分析
一、誘導(dǎo)HO-1表達對INS-1胰島素分泌影響
研究發(fā)現(xiàn)隨著CoPP濃度增加,胰島素水平逐漸升高,當(dāng)CoPP達到40umol/L時,INS-1細胞胰島素水平最高(P<0.05),以后隨著濃度增加胰島素水平逐漸下降。(見圖1)。
圖1 不同濃度CoPP對INS-1胰島素分泌影響
二、誘導(dǎo)HO-1表達對INS-1細胞HO-1mRNA的影響
研究發(fā)現(xiàn)隨著CoPP濃度增加,HO-1表達明顯升高,呈劑量依耐性,CoPP達到40umol/L時,HO-1表達達到頂峰(P<0.05)。而后隨著HO-1濃度增加,HO-1 mRNA表達未見繼續(xù)增高。(見圖2)。
圖2 不同濃度CoPP對INS-1細胞HO-1mRNA表達的影響
三、誘導(dǎo)HO-1表達對INS-1細胞Caspase-3 mRNA的影響
研究發(fā)現(xiàn)隨著CoPP濃度增加,Caspase-3 mRNA表達明顯降低。當(dāng)CoPP達到40umol/L時,能最大程度抑制Caspase-3 mRNA表達(P<0.05)。(見圖3)。
圖3 不同濃度CoPP對INS-1細胞Caspase-3 mRNA表達的影響
近年來,隨著研究深入發(fā)現(xiàn)OSAHS作為一種常見病,影響全身多個系統(tǒng),目前認為是一種源頭性疾病,導(dǎo)致嚴重后果。研究發(fā)現(xiàn),OSAHS與糖尿病、冠心病、高血壓、心律失常以及缺血性腦血管疾病存在內(nèi)在聯(lián)系[12-14]。多項研究表明,OSAHS與糖尿病存在明顯相關(guān)性。同時,隨著中國版OSAHS與糖尿病專家共識的發(fā)布,大家越來越關(guān)注此兩種疾病。
慢性間歇性缺氧是OSAHS主要的致病機制之一,而胰島素分泌不足和胰島細胞凋亡增加也是糖尿病重要的發(fā)病機制。研究發(fā)現(xiàn),慢性間歇性缺氧可引起胰島素抵抗,加重大鼠胰島細胞凋亡[15],因此,凋亡可能是OSAHS與糖尿病內(nèi)在關(guān)聯(lián)紐帶。同時,我們前期研究已證實,慢性間歇性缺氧能明顯抑制INS-1胰島素水平和誘導(dǎo)凋亡。
HO-1是血紅素降解途徑限速酶,具有抗炎、抗凋亡、抗增殖等多種生物學(xué)效應(yīng)。現(xiàn)有的證據(jù)顯示,誘導(dǎo)胰島HO-1表達,能對抗細胞因子介導(dǎo)的有害影響。鈷原卟啉(CoPP),作為HO-1的底物,能增加HO-1的表達和活性。而有關(guān)HO-1與凋亡的研究中發(fā)現(xiàn),HO-1可通過抑制Caspase-3表達起到抗凋亡作用[16]。Caspase-3是含半胱氨酸的天冬氨酸特異水解酶,在細胞凋亡早期及凋亡過程中起重要作用,是細胞凋亡的關(guān)鍵酶。在正常情況下以無活性的酶原形式存在于多種細胞胞質(zhì)中,多種刺激因素可激活Caspase-3,活化的Caspase-3又進一步切割不同的底物,引起蛋白級聯(lián)切割放大,最終使細胞凋亡[17]。
以往的研究表明,CoPP具有細胞保護作用,主要通過上調(diào)HO-1抑制凋亡相關(guān)蛋白capase-3表達[18]。Lundvig等人研究也發(fā)現(xiàn),誘導(dǎo)HO-1表達能抑制高劑量姜黃素誘導(dǎo)的角質(zhì)細胞凋亡[19]。本研究從體外細胞培養(yǎng)發(fā)現(xiàn),CoPP能促進間歇性缺氧情況下INS-1細胞胰島素分泌,抑制凋亡相關(guān)蛋白caspase-3表達,對細胞起到保護作用,且隨濃度增加,在一定范圍內(nèi)作用越明顯,當(dāng)CoPP達到40umol/L時,其作用最明顯。過度誘導(dǎo)HO-1表達則會因誘導(dǎo)劑的過量而產(chǎn)生毒性作用,使HO-1的表達減少,損害臟器功能[20]。因此,誘導(dǎo)HO-1表達通過抑制Caspase-1減輕INS-1凋亡。
綜上所述,CoPP對間歇性缺氧影響下INS-1保護作用可能與誘導(dǎo)HO-1表達,抑制凋亡有關(guān)。
[1] Thorpy MJ.Classification of sleep disorders[J].Neurotherapeutics,2012,9(4):687-701.
[2] Zhang SX,Wang Y,Gozal D.Pathological consequences of intermittent hypoxia in the central nervous system[J]. Compr Physiol,2012,2(3):1767-1777.
[3] Almendros I,Wang Y,Gozal D.The polymorphic and contradictory aspects of intermittent hypoxia[J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2014,307(2):L129-L140.
[4] Gileles-Hillel A,Almendros I,Khalyfa A,et al.Early intermittent hypoxia induces proatherogenic changes in aortic wall macrophages in a murine model of obstructive sleep apnea[J].Am J Respir Crit Care Med,2014,190(8):958-961.
[5] Nair D,Zhang SX,Ramesh V,et al.Sleep fragmentation induces cognitive deficits via nicotinamide adenine dinucleotide phosphate oxidase-dependent pathways in mouse[J].Am J Respir Crit Care Med,2011,184(11):1305-1312.
[6] Carreras A,Zhang SX,Peris E,et al.Chronic sleep fragmentation induces endothelial dysfunction and structural vascular changes in mice[J].Sleep,2014,37(11):1817-1824.
[7] Zhang SX,Khalyfa A,Wang Y,et al.Sleep fragmentation promotes NADPH oxidase 2-mediated adipose tissue inflammation leading to insulin resistance in mice[J].Int J Obes(Lond),2014,38(4):619-624.
[8] Qian Y,Xu H,Wang Y,et al.Obstructive sleep apnea predicts risk of metabolic syndrome independently of obesity: a meta-analysis[J].Arch Med Sci,2016,12(5):1077-1087.
[9] Wang P,Qiao Q,Li J,et al.Inhibitory effects of geraniin on LPS-induced inflammation via regulating NF-kappaB and Nrf2 pathways in RAW 264.7 cells[J].Chem Biol Interact,2016,253:134-142.
[10] Dai C,Li B,Zhou Y,et al.Curcumin attenuates quinocetone induced apoptosis and inflammation via the opposite modulation of Nrf2/HO-1 and NF-kB pathway in human hepatocyte L02 cells[J].Food Chem Toxicol,2016,95:52-63.
[11] Xie L,Gu Y,Wen M,et al.Hydrogen Sulfide Induces Keap1 S-sulfhydration and Suppresses Diabetes-Accelerated Atherosclerosis via Nrf2 Activation[J].Diabetes,2016,65(10):3171-3184.
[12] Westlake K,Plihalova A,Pretl M,et al.Screening for obstructive sleep apnea syndrome in patients with type 2 diabetes mellitus: a prospective study on sensitivity of Berlin and STOP-Bang questionnaires[J].Sleep Med,2016,26:71-76.
[13] Otero L,Hidalgo P,González R,et al.Association of Cardiovascular Disease and Sleep Apnea at Different Altitudes[J].High Alt Med Biol,2016,17(4):336-341.
[14] Wang L,Cai A,Zhang J,et al.Association of obstructive sleep apnea plus hypertension and prevalent cardiovascular diseases: A cross-sectional study[J].Medicine (Baltimore),2016,95(39):e4691.
[15] Fang Y,Zhang Q,Tan J,et al.Intermittent hypoxia-induced rat pancreatic beta-cell apoptosis and protective effects of antioxidant intervention[J].Nutr Diabetes,2014,4:e131.
[16] Li C,Zhang C,Wang T,et al.Heme oxygenase 1 induction protects myocardiac cells against hypoxia/reoxygenation-induced apoptosis : The role of JNK/c-Jun/Caspase-3 inhibition and Akt signaling enhancement[J]. Herz,2016,41(8):715-724.
[17] Sun J,Xie C,Liu W,et al.The effects of simvastatin on hippocampal caspase-3 and Bcl-2 expression following kainate-induced seizures in rats[J].Int J Mol Med,2012,30(4):739-746.
[18] Ma T,Chen T,Li P,et al. Heme oxygenase-1 (HO-1) protects human lens epithelial cells (SRA01/04) against hydrogen peroxide (H2O2)-induced oxidative stress and apoptosis[J].Exp Eye Res,2016,146:318-329.
[19] Lundvig DM,Pennings SW,Brouwer K M,et al.Cytoprotective responses in HaCaT keratinocytes exposed to high doses of curcumin[J].Exp Cell Res,2015,336(2):298-307.
[20] 劉明,趙曉宇,王波,等.鈷-原卟啉誘導(dǎo)大鼠血紅素加氧酶-1適度過表達的研究[J].醫(yī)學(xué)分子生物學(xué)雜志,2005,2(2):79-82.
Effect of induced HO-1 expression on INS-1 cells in chronic intermittent hypoxia
XUJian,LIXiao-li,LIYi-lu,CHENJi-ming
DepartmentofRespiratoryMedicine,ShenzhenNanshanDistrictPeople’sHospital,Shenzhen518052,China
Objective To understand the effect of HO-1 expression on the apoptosis of INS-1 cells induced by chronic intermittent hypoxia. Methods INS-1 cells were observed under different concentrations of CoPP in chronic intermittent hypoxia, and the levels of insulin were observed. It used RT-PCR to detect the expression of HO-1 and Caspase-3 mRNA. Results With the increase of CoPP concentration, the expression of insulin and HO-1 mRNA gradually increased, while Caspase-3 mRNA decreased. When the concentration of CoPP reached 40umol/L, the strongest effect was observed. Conclusion The induced expression of HO-1 in INS-1 cells can inhibit protein Caspase-3, and protected the cells at certain extent.
chronic intermittent hypoxia; INS-1; HO-1; apoptosis; Caspase-3
10.3969/j.issn.1009-6663.2017.07.023
廣東省科技計劃項目(No 2013B021800048)
518000 廣東 深圳,深圳市南山區(qū)人民醫(yī)院呼吸內(nèi)科
2016-11-10]