餌料與底質(zhì)對(duì)三角帆蚌稚蚌早期生長(zhǎng)的影響

張佳康,馬學(xué)艷,聞海波1、,鄒軍,徐跑1、,華丹,顧若波1、

(1.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)無錫漁業(yè)學(xué)院,江蘇無錫214081;2.中國(guó)水產(chǎn)科學(xué)研究院淡水漁業(yè)研究中心,中美淡水貝類種質(zhì)資源保護(hù)及利用國(guó)際聯(lián)合實(shí)驗(yàn)室,江蘇無錫214081;3.中國(guó)水產(chǎn)科學(xué)研究院淡水漁業(yè)研究中心,農(nóng)業(yè)部淡水魚類遺傳育種與養(yǎng)殖生物學(xué)重點(diǎn)開放實(shí)驗(yàn)室,江蘇無錫214081)

餌料與底質(zhì)對(duì)三角帆蚌稚蚌早期生長(zhǎng)的影響

張佳康1,2,馬學(xué)艷2、3,聞海波1、2、3,鄒軍1、2,徐跑1、2、3,華丹2,顧若波1、2、3

(1.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)無錫漁業(yè)學(xué)院,江蘇無錫214081;2.中國(guó)水產(chǎn)科學(xué)研究院淡水漁業(yè)研究中心,中美淡水貝類種質(zhì)資源保護(hù)及利用國(guó)際聯(lián)合實(shí)驗(yàn)室,江蘇無錫214081;3.中國(guó)水產(chǎn)科學(xué)研究院淡水漁業(yè)研究中心,農(nóng)業(yè)部淡水魚類遺傳育種與養(yǎng)殖生物學(xué)重點(diǎn)開放實(shí)驗(yàn)室,江蘇無錫214081)

為尋找三角帆蚌Hyriopsis cumingii合適的餌料和底質(zhì),提高三角帆蚌稚蚌成活率,在水溫(24±1)℃下分兩個(gè)階段測(cè)試了不同餌料和底質(zhì)對(duì)三角帆蚌稚蚌的生長(zhǎng)影響,第一階段測(cè)試了兩種底質(zhì)(黃泥、黃泥加鈣粉)和兩種餌料(Nanno 3600藻、Shellfish diet 1800藻)對(duì)1～30 d稚蚌成活和生長(zhǎng)的影響,第二階段測(cè)試了5種餌料(Nanno 3600藻、Shellfish diet 1800藻、普通小球藻、四尾柵藻、卵囊藻)對(duì)31～60 d稚蚌成活及生長(zhǎng)的影響。結(jié)果表明:第一階段中,投喂Nanno 3600藻且以黃泥為底質(zhì)的組(A3)與投喂兩種混合藻且以黃泥為底質(zhì)的組(A1)稚蚌成活率無顯著性差異(P＞0.05),但二者均顯著高于投喂兩種混合藻且以黃泥+鈣粉為底質(zhì)的組(A2)(P＜0.05),A1、A2、A3組均與投喂Shellfish diet 1800藻且以黃泥為底質(zhì)的組(A4)和池塘水養(yǎng)殖且不投喂的組(A5)呈極顯著性差異(P＜0.01),A2組稚蚌生長(zhǎng)最快,殼長(zhǎng)顯著高于A1、A3組(P＜0.05),A1、A2、A3組極顯著高于A4、A5組(P＜0.01);第二階段中,池塘水養(yǎng)殖組(B5)成活率顯著高于卵囊藻組(B1)、小球藻組(B2)、Nanno 3600藻組(B4)(P＜0.05),極顯著高于四尾柵藻組(B3)(P＜0.01),B5組與B4組稚蚌殼長(zhǎng)無顯著性差異(P＞0.05),均顯著高于B1、B2組(P＜0.05),極顯著高于B3組(P＜0.01)。研究表明:稚蚌在1～30 d時(shí)添加藻類可提高稚蚌存活率,且以微擬球藻效果最好,底質(zhì)中添加鈣粉有利于稚蚌生長(zhǎng);稚蚌在31～60 d階段,投喂微擬球藻更有利于稚蚌的生長(zhǎng)。

三角帆蚌稚蚌;餌料;底質(zhì);成活率

三角帆蚌Hyriopsis cumingii是中國(guó)特有的淡水經(jīng)濟(jì)貝類[1-2],是最重要的淡水優(yōu)質(zhì)育珠蚌,目前,超過70%的世界淡水珍珠由三角帆蚌培育而成,其培育的珍珠質(zhì)地細(xì)膩、光滑,色澤鮮艷,質(zhì)量佳。由于三角帆蚌特殊的濾水特性,其在生態(tài)養(yǎng)殖、水質(zhì)凈化上也有著廣泛的應(yīng)用[3-7],如用于池塘控制藍(lán)藻等[8]。

絕大多數(shù)蚌類的生活史均有一個(gè)寄生過程[9-10],它們需要寄生在魚體上才能完成從鉤介幼蟲到稚蚌的變態(tài),寄主魚在蚌類的生活史中扮演著重要角色。體外培養(yǎng)是指在沒有寄主魚的情況下完成鉤介幼蟲非寄生變態(tài)發(fā)育成為稚蚌的過程,因此,鉤介幼蟲體外培養(yǎng)逐漸成為貝類種質(zhì)資源恢復(fù)較為先進(jìn)的手段之一。近年來,研究者已對(duì)42個(gè)物種培養(yǎng)成功且獲得較高的變態(tài)率[11]。在國(guó)內(nèi),聞海波等[12]對(duì)三角帆蚌鉤介幼蟲進(jìn)行了體外培養(yǎng)試驗(yàn),并已取得了一定的進(jìn)展。三角帆蚌現(xiàn)在主要靠人工培育種苗供應(yīng)生產(chǎn)所需,其生命力非常脆弱,特別是殼長(zhǎng)小于1 cm的幼蚌死亡率很高,稚蚌期是直接影響到人工繁育成敗的關(guān)鍵階段[13]。稚蚌的高死亡率很可能是由于缺乏足夠適口的餌料生物和相適應(yīng)的環(huán)境造成的[14-15],因此,餌料和底質(zhì)是貝類人工繁育成功的兩個(gè)關(guān)鍵因素[16-17]。

目前,國(guó)內(nèi)外有許多對(duì)蚌科類物種食性分析的研究報(bào)道[18-19],但對(duì)三角帆蚌稚蚌的食性及底質(zhì)環(huán)境的實(shí)驗(yàn)研究較少。本試驗(yàn)中,選取體外培養(yǎng)的三角帆蚌稚蚌,測(cè)試了不同底質(zhì)及餌料條件對(duì)1～30 d、31～60 d兩個(gè)階段稚蚌的影響。通過對(duì)比稚蚌的成活率及生長(zhǎng)情況,評(píng)估了不同餌料及底質(zhì)對(duì)三角帆蚌稚蚌的影響,旨在尋找三角帆蚌合適的餌料和底質(zhì),提高稚蚌成活率,為三角帆蚌的人工繁殖提供基礎(chǔ)依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料

試驗(yàn)用三角帆蚌采自中國(guó)水產(chǎn)科學(xué)研究院淡水漁業(yè)研究中心南泉養(yǎng)殖基地,均為4齡成熟母蚌。試驗(yàn)用黃顙魚也取自該基地,體質(zhì)量為(90±25) g,采血前在循環(huán)養(yǎng)殖系統(tǒng)中暫養(yǎng)2周,每日早、中、晚各投喂黃顙魚配合飼料1次。

1.2 方法

1.2.1 試驗(yàn)方法 從4月中旬開始,檢查雌蚌外鰓絲是否有成熟鉤介幼蟲,判斷鉤介幼蟲成熟與否的標(biāo)準(zhǔn)可依據(jù)聞海波等[12]采用的方法。

試驗(yàn)中將有成熟鉤介幼蟲的雌蚌外殼洗凈,使用開殼器于雌蚌后端輕輕打開,用5 mL注射器吸入滅菌純水,穿刺雌蚌外鰓,將純水注入,此時(shí)成熟的鉤介幼蟲會(huì)隨水流出至事先準(zhǔn)備好的滅菌燒杯中;向燒杯中加入無菌純水200 mL,洗去殘留的組織、黏液和鉤介幼蟲的碎殼,重復(fù)3～4次;然后向燒杯中加入配制好的抗生素混合液100 mL,清洗鉤介幼蟲,重復(fù)3～4次。鉤介幼蟲清洗完成后,應(yīng)盡快移入培養(yǎng)基中,避免因放置過久對(duì)其活性產(chǎn)生影響。

1.2.2 血清樣品的制備 選取體格健壯、外表無傷的黃顙魚作為血清采集試驗(yàn)魚,采血前,將試驗(yàn)魚用50～100 mg/L的MS-222[生工生物工程(上海)股份有限公司]麻醉,從尾靜脈采血[20],注射器用肝素鈉潤(rùn)洗;采集的血液以3000 r/min離心10 min,取上清液;用0.22 μm無菌過濾器過濾,于超低溫冰箱(-80℃)中保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2.3 試驗(yàn)餌料及底質(zhì) Nanno 3600藻(微擬球藻Nannochloropsis oculata)和Shellfish diet 1800藻(包含4種藻:Isochrysis sp.,Pavlova sp.,Thalossiosira weissflogii,Tetraselmis sp.)購自Reed Mariculture Inc.,兩種藻均為濃縮藻液。普通小球藻Chlorella vulgaris、四尾柵藻Scenedesmus quadricauda、卵囊藻Oocystis sp.藻種購自中國(guó)科學(xué)院野生生物種質(zhì)庫(淡水藻種庫),藻種在試驗(yàn)前兩周開始培養(yǎng),培養(yǎng)基為BG-11。藻類使用前先使用曝氣除氯自來水清洗,在離心機(jī)上離心10 min,倒出上清液,重復(fù)5次,以降低藻液中的氨氮。

鈣粉的獲得是將三角帆蚌貝殼曬干后打碎,過 200目篩網(wǎng),水洗后高溫滅菌并烘干。底泥為未施肥的花園土,加入水后過200目篩網(wǎng),并靜置于水桶中,待沉淀后倒出上清液,泥漿經(jīng)微波爐高溫處理10 min,冷卻后再使用。

1.2.4 鉤介幼蟲的體外培養(yǎng) 培養(yǎng)配方及鉤介幼蟲變態(tài)標(biāo)準(zhǔn)參照Uthaiwan等[21]的方法,培養(yǎng)液體積為3.5 mL,其中選用黃顙魚的血清作為幼蟲體外培養(yǎng)配方的重要營(yíng)養(yǎng)源,以L-15培養(yǎng)液[購自生工生物工程(上海)股份有限公司]為基礎(chǔ)培養(yǎng)液,每個(gè)培養(yǎng)皿(60 mm×15 mm)幼蟲數(shù)量為(300±10)只,每3 d換液1次,設(shè)置5個(gè)重復(fù)。將培養(yǎng)皿置于生化培養(yǎng)箱(上海博迅實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠SPX-100B-Z)中,溫度控制在(24±0.5)℃。

1.2.5 底質(zhì)和藻類對(duì)1～30 d稚蚌成活及生長(zhǎng)的影響試驗(yàn) 取剛變態(tài)成功的稚蚌,試驗(yàn)方案見表1,每組設(shè)置3個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù)放100只稚蚌,分別放在塑料箱子(32 cm×21 cm×10 cm)中培育,養(yǎng)殖水體為5 L。將自來水和池塘水分別放于300 L與140 L的塑料水箱中充分曝氣,試驗(yàn)水溫控調(diào)在(24±1)℃,氣泵分管懸吊于每個(gè)箱子上方進(jìn)行增氧。利用虹吸法每天換水1/2,換水時(shí)用200目篩網(wǎng)過濾,確保稚蚌不丟失。換水后再投喂藻類并添加少量底質(zhì)(添加量根據(jù)稚蚌大小控制,其中黃泥和鈣粉的添加比例為1∶1)。藻類投喂密度為1×106cells/mL,A1、A2組中兩種藻類投喂比例為1∶1,投喂時(shí)用手掌翻動(dòng)水體,使藻類與水體充分混勻。養(yǎng)殖30 d后,使用氣壓式噴壺沖洗底泥,將稚蚌洗脫于培養(yǎng)皿中,在光學(xué)顯微鏡(Olympus CX41)下拍照、測(cè)量稚蚌殼長(zhǎng)(精確至0.01 mm),并使用藻類計(jì)數(shù)器統(tǒng)計(jì)成活率。

表1 第1～30天各組底質(zhì)與餌料試驗(yàn)方案Tab.1 Testing plan of substrate and diet on group from 1 d to 30 d

從養(yǎng)殖三角帆蚌稚蚌的池塘水取樣固定,并分析浮游植物組成及數(shù)量,結(jié)果見表2。

表2 池塘水中浮游植物組成及數(shù)量Tab.2 Species composition and quantity of phytoplankton in water of the ponds

1.2.6 藻類對(duì)31～60 d稚蚌成活及生長(zhǎng)的影響試驗(yàn) 取池塘水養(yǎng)殖30 d的稚蚌,測(cè)量得稚蚌殼長(zhǎng)為(2.57±0.28)mm,用曝氣后的自來水暫養(yǎng)1 d,設(shè)定為B1、B2、B3、B4、B5組,以黃泥為底質(zhì),試驗(yàn)方案見表3,每組同樣設(shè)置3個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù)放150只。養(yǎng)殖方式同第一階段,其中每種藻類投喂密度為5×105cells/mL。養(yǎng)殖30 d后,將稚蚌洗脫于玻璃培養(yǎng)皿中,在光學(xué)顯微鏡(Olympus CX41)下拍照、測(cè)量幼蚌殼長(zhǎng)(精確至0.01 mm),并統(tǒng)計(jì)成活率。

1.2.7 水質(zhì)檢測(cè) 對(duì)試驗(yàn)養(yǎng)殖用水進(jìn)行檢測(cè)和分析,使用Palintest水質(zhì)檢測(cè)儀及配套試劑檢測(cè)溶解氧、pH、氨氮、亞硝酸鹽,其中溶氧＞8.68 mg/L, pH為7.6～8.4,氨氮＜0.05 mg/L,亞硝酸鹽氮＜0.01 mg/L。

1.3 數(shù)據(jù)處理

試驗(yàn)結(jié)果采用SPSS 20軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,采用One-Way ANOVA進(jìn)行單因素方差分析,用最小顯著性差異法進(jìn)行組間多重比較。

2 結(jié)果與分析

2.1 兩種藻類及兩種底質(zhì)對(duì)變態(tài)稚蚌生長(zhǎng)的影響

從表4可見,投喂Nanno 3600單一藻且以黃泥為底質(zhì)的組(A3)稚蚌成活率最高,為42.33%±2.08%,投喂Shellfish diet 1800藻且以黃泥為底質(zhì)的組(A4)成活率最低,僅為29.33%± 2.08%。多重比較結(jié)果表明:A3組與投喂兩種混合藻且以黃泥為底質(zhì)的組(A1)的成活率無顯著性差異(P＞0.05),但與投喂兩種混合藻且以黃泥+鈣粉為底質(zhì)的組(A2)有顯著性差異(P＜0.05),A1、A2、A3組均極顯著高于A4組和A5組(P＜0.01);A2組稚蚌生長(zhǎng)最快,殼長(zhǎng)顯著高于A1、A3組(P＜0.05),A1、A2、A3組殼長(zhǎng)均極顯著高于A4、A5組(P＜0.01),A5組殼長(zhǎng)顯著高于A4組(P＜0.05)。

表4 藻類與底質(zhì)對(duì)稚蚌存活和生長(zhǎng)的影響Tab.4 Effects of alga and substrate on growth and survival of juvenile freshwater mussel

2.2 4種藻類在相同底質(zhì)下對(duì)變態(tài)稚蚌成活和生長(zhǎng)的影響

從表5可見,池塘水養(yǎng)殖組(B5)成活率最高,為57.33%±2.37%,投喂四尾柵藻組(B3)成活率最低,僅為26.67%±3.33%。多重比較結(jié)果表明:B5組成活率顯著高于卵囊藻組B1、小球藻組B2、Nanno 3600藻組(B4)(P＜0.05),極顯著高于B3組(P＜0.01);B5組與B4組稚蚌殼長(zhǎng)無顯著性差異(P＞0.05),但均極顯著高于B1、B2、B3組(P＜0.01),B1組與B2組殼長(zhǎng)無顯著性差異(P＞0.05),B3組與其他組間有極顯著性差異(P＜0.01)。

表5 藻類對(duì)稚蚌存活和生長(zhǎng)的影響Tab.5 Effects of alga on growth and survival of juvenile freshwater mussel

3 討論

3.1 非寄生變態(tài)發(fā)育稚蚌的生長(zhǎng)發(fā)育

Uthaiwan等[21]用4種魚血清和馬血清對(duì)一種帆蚌鉤介幼蟲進(jìn)行體外培養(yǎng)試驗(yàn),結(jié)果表明,用鯉血清培養(yǎng)的鉤介幼蟲成活率及變態(tài)率顯著高于用其他4種血清,并證實(shí)只有鯉血清培養(yǎng)的稚蚌可以存活2個(gè)月以上,而用尼羅羅非魚Oreochromis niloticus和雜交鯰Clarias macrocephalus×C.garienus血清培養(yǎng)的鉤介幼蟲只存活1個(gè)月,用馬血清培養(yǎng)的鉤介幼蟲只存活2～3周,用條紋鯰Pangasius pangasius血清培養(yǎng)的稚蚌只存活了1周。Reece[22]比較了魚體寄生和利用馬血清體外培養(yǎng)兩種方法獲得的Lampsilis fasciola稚蚌的變態(tài)率、后期生長(zhǎng)和存活差異,結(jié)果顯示,添加馬血清體外培養(yǎng)的幼蟲變態(tài)率為92%,顯著高于魚體寄生(69%),但魚體寄生變態(tài)稚蚌生長(zhǎng)比體外培養(yǎng)快,一周后魚體寄生稚蚌的成活率為82%,而體外培養(yǎng)成活率僅為45%。從已開展的42種鉤介幼蟲的體外培養(yǎng)配方可知,不同蚌科鉤介幼蟲變態(tài)發(fā)育時(shí)對(duì)營(yíng)養(yǎng)的需求不盡相同[13]。理論上,無論是體外培養(yǎng)還是魚體寄生方式,只有滿足了鉤介幼蟲的營(yíng)養(yǎng)需求才能正常變態(tài)發(fā)育。因此,稚蚌的后期生長(zhǎng)發(fā)育評(píng)估將有利于篩選出更加科學(xué)的鉤介幼蟲體外培養(yǎng)方法及配方。

3.2 底質(zhì)對(duì)稚蚌生長(zhǎng)的影響

適合的底質(zhì)對(duì)稚蚌存活及生長(zhǎng)具有重要作用[23-28]。Gatenby等[28-29]研究表明,Villosa iris稚蚌在底泥中的生長(zhǎng)速度明顯快于無底質(zhì)條件下的。Isom等[30]研究發(fā)現(xiàn),在Anodonta imbecilis稚蚌養(yǎng)殖時(shí)添加底泥可提高稚蚌成活率。Hua等[31]比較了在底泥(于河中采集,過200 μm篩網(wǎng)并高溫滅菌)、細(xì)沙、石灰石和無底質(zhì)條件下V.iris稚蚌的存活及生長(zhǎng),結(jié)果表明,底泥組的稚蚌成活率顯著高于其他3組,而無底泥組稚蚌則全部死亡。本試驗(yàn)中測(cè)試了黃泥+鈣粉對(duì)稚蚌存活和生長(zhǎng)的影響,黃泥+鈣粉組稚蚌的殼長(zhǎng)顯著大于同等飼養(yǎng)條件下的黃泥組,表明底質(zhì)中的鈣粉對(duì)稚蚌的生長(zhǎng)起到了一定的作用,這與Hua等[31]的研究結(jié)果不同,推測(cè)鈣粉補(bǔ)充了稚蚌生長(zhǎng)所需的鈣元素,單純石灰石作為底質(zhì)不能為稚蚌生長(zhǎng)提供最適環(huán)境,稚蚌生長(zhǎng)中必須添加底泥。底泥與鈣粉添加的最佳比例需后續(xù)試驗(yàn)進(jìn)行研究。

3.3 藻類對(duì)稚蚌生長(zhǎng)的影響

淡水蚌類的餌料一般有藻類、浮游動(dòng)物、細(xì)菌和底泥等[32],藻類被認(rèn)為是稚蚌的最重要食物,其所占比例高達(dá)90%[16]。Gatenby等[28]用(3.0～5.0)×105cells/mL密度的藻類對(duì)V.iris進(jìn)行投喂, 45 d時(shí)稚蚌成活率為66.5%。Hua等[31]測(cè)試了3.5×104、8.75×104、1.75×105cells/mL藻類密度對(duì)稚蚌成活率及生長(zhǎng)的影響,結(jié)果表明,在3種藻類密度下稚蚌成活率及生長(zhǎng)無顯著性差異,且稚蚌30 d后成活率為40%。Kovitvadhi等[33]用4種藻混合物(小球藻Chlorella sp.、扭曲蹄形藻Kirchneriella incurvata、舟形藻Navicula sp.、膠球藻Coccomyxa sp.)對(duì)體外培養(yǎng)成功的0～60 d稚蚌Hyriopsis myersiana進(jìn)行養(yǎng)殖試驗(yàn),投喂密度為1.00×103cells/mL,60 d后稚蚌成活率為8.00%,用4種藻類單獨(dú)和混合對(duì)60～120 d稚蚌投喂,結(jié)果表明,投喂K.incurvata組稚蚌成活率最高,為65.00%± 8.32%,只投喂Navicula sp.和Coccomyxa sp.組稚蚌全部死亡,混合組成活率僅為27.00%± 17.63%。Kovitvadhi等[34]用兩種藻(小球藻、扭曲蹄形藻)對(duì)體外培養(yǎng)成功的0～60 d Hyriopsis myersiana稚蚌進(jìn)行養(yǎng)殖試驗(yàn),120 d后成活率為82.74%,推測(cè)成活率差異較大的原因是養(yǎng)殖系統(tǒng)的不同,也可能是投喂藻類不同的原因。本試驗(yàn)中投喂密度為2.0×106cells/mL,投喂組1～30 d成活率最高為40.33%,31～60 d成活率最高為43.33%,有研究顯示,蚌類對(duì)藻類的吸收是被動(dòng)吸收[18-19],對(duì)食物大小的選擇上限為20～25 μm的藻類等懸浮顆粒[35],試驗(yàn)中通過顯微鏡觀察稚蚌的腸道,顯示稚蚌對(duì)所有試驗(yàn)藻類均有攝食。綜合本研究與Kovitvadhi等[32-33]試驗(yàn)結(jié)果,筆者推斷,投喂不適合的藻類會(huì)占據(jù)稚蚌腸道空間,但不會(huì)被其吸收,從而導(dǎo)致稚蚌營(yíng)養(yǎng)不足而死亡。

本試驗(yàn)中,1～30 d的稚蚌,池塘水養(yǎng)殖組成活率及稚蚌殼長(zhǎng)顯著低于3個(gè)微擬球藻組,而31～60 d中池塘水養(yǎng)殖的稚蚌成活率顯著高于其他組,而養(yǎng)殖稚蚌的池塘水中,四尾柵藻占總藻類的72.2%,是優(yōu)勢(shì)藻種,故稚蚌成活率顯著高于投喂四尾柵藻組。這可能是由于剛完成變態(tài)發(fā)育的稚蚌,鰓絲等攝食器官未發(fā)育完全,不能像成蚌一樣正常濾食水中藻類,而是主要靠斧足攝食,隨著稚蚌生長(zhǎng)活動(dòng)能力增強(qiáng),鰓絲及其他器官逐漸發(fā)育完全,濾食能力增強(qiáng),能夠?yàn)V食池塘水中藻類、細(xì)菌等,從而加快了稚蚌生長(zhǎng)。

[1] 王小冬,王巖,王偉良,等.不同放養(yǎng)和管理模式下三角帆蚌養(yǎng)殖水體的水化學(xué)特征[J].水產(chǎn)學(xué)報(bào),2008,32(2):303-308.

[2] Wang Y,Wang W L,Qin J G,et al.Effects of integrated combination and quicklime supplementation on growth and pearl yield of freshwater pearl mussel,Hyriopsis cumingii(Lea,1852)[J].Aquaculture Research,2009,40(14):1634-1641.

[3] 費(fèi)志良,潘建林,徐在寬,等.三角帆蚌對(duì)水體懸浮物和葉綠素a消除量的研究[J].海洋湖沼通報(bào),2005,11(2):40-45.

[4] Hosper S H.Biomanipulation,new perspectives for restoration of shallow,eutrophic lakes in the Netherlands[J].Hydrobiological Bulletin,1989,23(1):5-10.

[5] Richter A F.Biomanipulation and its feasibility for water quality management in shallow eutrophic water bodies in the Netherlands [J].Hydrobiological Bulletin,1986,20(1-2):165-172.

[6] Shapiro J,Wright D I.Lake restoration by biomanipulation:Round Lake,Minnesota,the first two years[J].Freshwater Biology,1984, 14(4):371-383.

[7] Way C M,Hornbach D J,Miller Way C A,et al.Dynamics of filter feeding in Corbicula fluminea(Bivalvia:Corbiculidae)[J].Canadian Journal of Zoology,1990,68(1):115-120.

[8] 楊東妹,陳宇煒,劉正文,等.背角無齒蚌濾食對(duì)營(yíng)養(yǎng)鹽和浮游藻類結(jié)構(gòu)影響的模擬[J].湖泊科學(xué),2008,20(2):228-234.

[9] 吳小平,梁彥齡,王洪鑄,等.蚌科鉤介幼蟲的比較形態(tài)學(xué)研究:Ⅱ.六個(gè)種幼蟲的形態(tài)[J].水生生物學(xué)報(bào),2000,24(3): 252-256.

[10] Araujo R,Ramos M A.Description of the glochidium of Margaritifera auricularia(Spengler 1793)(Bivalvia,Unionoidea)[J]. Philosophical Transactions of the Royal Society B:Biological Sciences,1998,353:1553-1559.

[11] Lima P,Lima M L,Kovitvadhi U,et al.A review on the“in vitro”culture of freshwater mussels(Unionoida)[J].Hydrobiologia, 2012,691(1):21-33.

[12] 聞海波,顧若波,華丹,等.三角帆蚌鉤介幼蟲體外培養(yǎng)及變態(tài)稚貝的形態(tài)變化[J].武漢大學(xué)學(xué)報(bào):理學(xué)版,2011,57(1): 57-62.

[13] 陳修報(bào),楊健,聞海波,等.橢圓背角無齒蚌發(fā)育關(guān)鍵階段形態(tài)結(jié)構(gòu)以及寄生有效積溫的研究[J].南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2010,33(4):100-104.

[14] Meghann E V.Development of a suitable diet for endangered juvenile oyster mussels,Epioblasma capsaeformis(Bivalvia:Unionidae),reared in a captive environment[D].Blacksburg,USA: Virginia Tech,2009.

[15] Beck K M.Development of an algal diet for rearing juvenile freshwater mussels(Unionidae)[D].Blacksburg,USA:Virginia Tech,2001.

[16] 王揚(yáng)才,葉顯峰.餌料藻類對(duì)貝類育苗的影響[J].齊魯漁業(yè), 2003,20(11):6-8.

[17] 龔世園,朱子義,楊學(xué)芬,等.網(wǎng)湖絹絲麗蚌食性的研究[J].華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),1997,16(6):589-593.

[18] 鄭光明,魏青山.武昌南湖圓背角無齒蚌食性與生長(zhǎng)的研究[J].華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),1999,18(1):62-67.

[19] 吳慶龍,陳宇煒,劉正文.背角無齒蚌對(duì)浮游藻類的濾食選擇性與濾水率研究[J].應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào),2005,16(12):2423-2427.

[20] 劉波,王美垚,謝駿,等.低溫應(yīng)激對(duì)吉富羅非魚血清生化指標(biāo)及肝臟HSP70基因表達(dá)的影響[J].生態(tài)學(xué)報(bào),2011,31 (17):4866-4873.

[21] Uthaiwan K,Noparatnaraporn N,Machado J.Culture of glochidia of the freshwater pearl mussel Hyriopsis myersiana(Lea,1856)in artificial media[J].Aquaculture,2001,195(1-2):61-69.

[22] Reece F T.Studies on the in vitro propagation of freshwater mussels with implications for improving juvenile health[D].North Carolina:North Carolina State University,2014.

[23] Zimmerman L L.Propagation of juvenile freshwater mussels(Bivalvia:Unionidae)and assessment of habitat suitability for restoration of mussels in the Clinch River,Virginia[D].Blacksburg: Virginia Polytechnic Institute and State University,2003.

[24] Henley W F,Zimmerman L L,Neves R J,et al.Design and evaluation of recirculating water systems for maintenance and propagation of freshwater mussels[J].North American Journal of Aquaculture,2001,63(2):144-155.

[25] Hua Dan.Biology,captive propagation,and feasibility of pearl culture in the pink heelsplitter(Potamilus alatus)(Say,1817) (Bivalvia:Unionidae)[D].Blacksburg,VA,USA:Virginia Polytechnic Institute and State University,2005.

[26] Mummert A K.Evaluating the feasibility of rearing juvenile freshwater mussels in a flow-through pond system at white sulphur springs national fish hatchery[D].Blacksburg,VA,USA:Virginia Polytechnic Institute and State University,2001.

[27] 郭良勇,劉海映,陳雷,等.底質(zhì)粒徑和水溫對(duì)不同規(guī)格毛蚶苗潛沙能力的影響[J].大連海洋大學(xué)學(xué)報(bào),2016,31(3): 295-300.

[28] Gatenby C M,Neves R J,Parker B C.Influence of sediment and algal food on cultured juvenile freshwater mussels[J].Journal of the North American Benthological Society,1996,15(4):597-609.

[29] Gatenby C M,Parker B C,Neves R J.Growth and survival of juvenile rainbow mussels,Villosa iris(Lea,1829)(Bivalvia: Unionidae),reared on algal diets and sediment[J].The American Malacological Bulletin,1997,14(1):57-66.

[30] Isom B G,Hudson R G.Freshwater mussels and their fish hosts; physiological aspects[J].The Journal of Parasitology,1984,70 (2):318-319.

[31] Hua D,Neves R J,Jiao Y.Effects of algal density,water flow and substrate type on culturing juveniles of the rainbow mussel(Villosa iris)(Bivalvia:Unionidae)in a laboratory recirculating system [J].Aquaculture,2013,416-417:367-373.

[32] Kovitvadhi S,Kovitvadhi U,Sawangwong P,et al.Optimization of diet and culture environment for larvae and juvenile freshwater pearl mussels,Hyriopsis(Limnoscapha)myersiana Lea,1856 [J].Invertebrate Reproduction&Development,2006,49(1-2): 61-70.

[33] Kovitvadhi S,Kovitvadhi U,Sawangwong P,et al.A laboratoryscale recirculating aquaculture system for juveniles of freshwater pearl mussel Hyriopsis(Limnoscapha)myersiana(Lea,1856) [J].Aquaculture,2006,275(1-4):169-177.

[34] Boltovskoy D,Izaguirre I,Correa N.Feeding selectivity of Corbicula fluminea(Bivalvia)on natural phytoplankton[J].Hydrobiologia,1995,312(3):171-182.

[35] 費(fèi)志良,吳軍,趙欽,等.三角帆蚌對(duì)藻類濾食及消化的研究[J].淡水漁業(yè),2006,36(5):24-27.

Effects of diet and substrate on early growth of juvenile freshwater mussel Hyriopsis cumingii

ZHANG Jia-kang1,2,MA Xue-yan2,3,WEN Hai-bo1,2,3,ZOU Jun1,2,XU Pao1,2,3,HUA Dan2,GU Ruo-bo1,2,3
(1.Wuxi Fisheries College,Nanjing Agricultural University,Wuxi 214081,China;2.Sino-US Cooperative Laboratory for Germplasm Conservation and Utilization of Freshwater Mollusks,Freshwater Fisheries Research Center,Chinese Academy of Fishery Sciences,Wuxi 214081,China;3.Key Laboratory of Genetic Breeding and Aquaculture Biology of Freshwater Fishes,Ministry of Agriculture,Freshwater Fisheries Research Center,Chinese Academy of Fishery Sciences,Wuxi 214081,China)

Two feeding trails were conducted to study effects of different diets and sediments on growth of juvenile freshwater mussel Hyriopsis cumingii at water temperature of(24±1)℃in order to find suitable diets and sediment for survival of freshwater mussel juveniles.In the first trail,effects of two different substrates(fine sediment and fine sediment with calcium powder)and two diets(Nanno 3600 and Shellfish diet 1800)on survival and growth of 1-30 d old freshwater mussel juveniles(freshly metamorphosed)were tested,and in the second trail,influences of five diets(Nanno 3600,Shellfish diet 1800,Chlorella vulgaris,Scenedesmus quadricauda and Oocystis sp.)on survival and growth of 31-60 d old juveniles were studied.The one-way analysis of variance revealed that there was no significant difference in survival between the juveniles in group A3 fed Nanno 3600 and fine sediment(P＞0.05)and in group A1 fed mixed algae and fine sediment,significant difference(P＜0.05)that in the juveniles fed mixed algae in group A2 and fine sediment with calcium,and very significant difference(P＜0.01)with group A5 which was cultured in pond water collected from the Freshwater Fisheries Research Center.The best growth was observed in the juveniles in group A2,with far higher shell length than those in groups A1 and A3(P＜0.05)and very far higher than those in groups A4 and A5(P＜0.01).In the second stage,group B5 presented significantly higher survival rate compared to groups B1,B2 and B4(Shellfish diet 1800)(P＜0.05),and very significantly higher survival rate compared to group B3(P＜0.01).There was no significant difference in shell length between group B5 and groups B4(P＞0.05),significance difference in groups B1 and B2(P＜0.05),and very significant difference with group B3(P＜0.01).It can be concluded that the survival will be improved in 1-30 d old juveniles fed Nannochloropsis oculata in Nanno 3600,and that adding calcium in sediment is conducive to the growth of the juveniles.Nannochloropsis oculata is more conducive to growth of the 31-60 d old juvenile freshwater mussel.

Hyriopsis cumingii;diet;sediment;survival rate

10.16535/j.cnki.dlhyxb.2017.02.006

2095-1388(2017)02-0155-06

S966.2

:A

2016-06-06

江蘇省水產(chǎn)三新工程項(xiàng)目(Y2014-38);中央基本科研業(yè)務(wù)費(fèi)專項(xiàng)(2015JBFM02)

張佳康(1994—),男,本科生。E-mail:615141413@qq.com

馬學(xué)艷(1990—),女,研究實(shí)習(xí)員。E-mail:maxy@ffrc.cn