李冬月,李祥龍,林樟楠,劉宏娟,張建安
(1清華大學核能與新能源技術研究院,北京 100084;2昆明理工大學國土資源工程學院,云南 昆明 650093)
共生菌系TSH06連續(xù)發(fā)酵生產丁醇
李冬月1,2,李祥龍2,林樟楠1,劉宏娟1,張建安1
(1清華大學核能與新能源技術研究院,北京 100084;2昆明理工大學國土資源工程學院,云南 昆明 650093)
傳統(tǒng)的產丁醇生產菌均為嚴格厭氧,本實驗室分離出一株兼性厭氧共生菌系TSH06,可在微氧條件下發(fā)酵生產丁醇。本文研究了共生菌系TSH06微氧條件下的丁醇連續(xù)發(fā)酵,考察了稀釋率對TSH06細胞生長及丁醇合成的影響。結果表明,低稀釋率有利于丁醇的生成,高稀釋率有利于酸的積累,丁醇濃度隨著稀釋率的增大而減小,而生產強度隨稀釋率的增大而增大。當稀釋率大于0.2h–1時,生產強度呈下降趨勢。最優(yōu)化的稀釋率為0.2h–1,丁醇生產強度可達1.06g/(L·h)。研究結果可為微氧條件下丁醇連續(xù)發(fā)酵的進一步優(yōu)化提供理論依據(jù)。
丁醇;微氧發(fā)酵;連續(xù)發(fā)酵;稀釋率;生產強度
近年來,隨著石油資源的日漸枯竭和環(huán)境問題的持續(xù)加劇,新能源的研究越來越受到重視,生物質能源作為可持續(xù)發(fā)展的可再生能源,已成為研究和關注的重點[1-2]。丁醇是優(yōu)良的有機溶劑和重要的化工原料,廣泛應用于化工、醫(yī)藥、塑料、油漆、有機合成等行業(yè)[3-5]。作為生物能源與傳統(tǒng)的生物乙醇相比,丁醇具有和汽油相當?shù)臒嶂岛托镣橹怠⑤^低的管道腐蝕性和揮發(fā)性,能與汽油以任意比混合、蒸汽壓低和安全性高等優(yōu)良特性[6-8]。因此生物丁醇被認為是一種非常具有研究潛力的新型生物質能源。傳統(tǒng)丁醇發(fā)酵通常采用批次發(fā)酵,由于產物抑制,往往存在終產物濃度低、生產強度低等問題,嚴重制約了生物丁醇的生產。連續(xù)發(fā)酵方式與其他發(fā)酵方式相比縮短了發(fā)酵時間,提高了設備利用率和生產強度,便于自動化控制。目前我國的丙酮丁醇發(fā)酵工廠基本上采用的是連續(xù)發(fā)酵方式[9]。
稀釋率是連續(xù)發(fā)酵工藝過程的一個重要指標,稀釋率越低,底物在發(fā)酵罐中停留的時間越長,能更長時間與菌體接觸,菌體細胞更容易生長,生產強度較低;稀釋率越高,底物與菌體接觸的時間越短,菌體細胞容易被洗出,生產強度會增大。ANDRADE等[10]利用Clostridium acetobutylicumATCC 824以葡萄糖和乳酸為底物,稀釋率為0.05h–1時,丁醇產量為8.6g/L,丁醇的生產強度為0.42g/(L·h)。TASHIRO等[11]利用C. saccharoperbutylacetonicumN1-4以葡萄糖為底物,稀釋率為0.11h–1時,丁醇產量為6.51g/L,丁醇的生產強度為0.72g/(L·h),稀釋率從0.11h–1增大到0.20h–1,生產強度提高了72.2%,達到1.24g/(L·h)。ZHENG等[12]利用C. saccharoperbutylacetonicumN1-4以木糖為底物,稀釋率從0.14h–1提高到0.26h–1時,丁醇生產強度從0.235g/(L·h)提高到0.529g/(L·h)。
細胞固定化技術能夠提高細胞密度,增強發(fā)酵穩(wěn)定性和提高溶劑耐受性,提高丁醇生產強度[13]。CHANG等[14]采用甘蔗渣作為固定化材料,利用C. acetobutyliumABE 1201以玉米秸稈汁為底物進行連續(xù)發(fā)酵,稀釋率為0.16h–1時,丁醇生產強度達到1.2g/(L·h)。當采用甜高粱甘蔗渣作為固定化載體,以葡萄糖為底物進行連續(xù)發(fā)酵,稀釋率為0.08h–1時,乙醇-丙酮-丁醇(ABE)產量和生產強度分別為16.5g/L和1.32g/(L·h)[15]。SURVASE等[16]采用木漿纖維素固定床反應器,利用C. acetobutylicumDSM 792以葡萄糖為底物,稀釋率為0.22h–1時,丁醇的生產強度達到1.79g/(L·h)。
由于目前報道的丁醇生產菌均為嚴格厭氧,因此,現(xiàn)有的連續(xù)發(fā)酵操作均在嚴格厭氧條件下進行。本實驗室分離到一株共生菌系TSH06,由厭氧梭菌C. acetobutylicumTSH1和兼性厭氧桿菌B. cereusTSH1組成??梢栽谖⒀鯒l件下進行發(fā)酵生產丁醇,無需嚴格厭氧,簡化了實驗操作,節(jié)約了厭氧設備的投入。
本文以共生菌系TSH06為出發(fā)菌株,采用葡萄糖為底物進行單級連續(xù)發(fā)酵,考察了稀釋率對細胞生長及丁醇合成的影響。其研究結果有助于深入了解共生菌丁醇代謝機制,并對微氧條件下進一步的丁醇連續(xù)發(fā)酵工藝優(yōu)化提供理論依據(jù)。
1.1 菌種及培養(yǎng)基
共生菌系TSH06為本實驗室保藏菌種。
LB培養(yǎng)基(g/L):氯化鈉10,酵母浸粉1.0,蛋白胨10,121℃滅菌15 min。
玉米培養(yǎng)基:質量分數(shù)為6%的玉米糊,121℃滅菌15min。
RCM培養(yǎng)基(g/L):酵母浸粉3.0,牛肉膏10,蛋白胨10,葡萄糖5.0,可溶性淀粉1.0,氯化鈉5.0,醋酸鈉3.0,半胱氨酸鹽酸鹽0.5,瓊脂2.0,pH 8.5。
P2半合成培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖60,酵母浸粉1.0,115℃滅菌15 min。
緩沖液組分(g/L):K2HPO450,K2HPO450,CH3COONH4220,過濾滅菌。
微量元素液組分(g/L):MgSO4·7H2O 20,MnSO4·H2O 1.0,NaCl 1.0,F(xiàn)eSO4·7H2O 1.0,對甲基苯甲酸 0.1,維生素 0.1,生物素 0.0001,過濾滅菌。
在發(fā)酵接種前,以1%的比例將緩沖液和微量元素液加入到P2半合成培養(yǎng)基中[17]。
1.2 實驗方法
菌種活化:將甘油管保藏的TSH06接入到15mL 6%的玉米培養(yǎng)基中,常規(guī)培養(yǎng)箱中37℃靜置培養(yǎng)24~36h。
種子培養(yǎng):將充分活化的菌種以體積比7%的接種量接種到60mL P2培養(yǎng)基中,37℃靜置培養(yǎng)24h。
批式發(fā)酵:2L發(fā)酵罐,P2培養(yǎng)基裝液量為1L,接種量為7%,37℃靜置發(fā)酵。
連續(xù)發(fā)酵:2L發(fā)酵罐(BIOTECH,上海)裝液量為1L。發(fā)酵罐中丁醇濃度為6~8 g/L時開始連續(xù)發(fā)酵,發(fā)酵體積維持在1L左右。考察稀釋率(D)對連續(xù)發(fā)酵的影響,溫度37℃,轉速為50r/min。
1.3 分析方法
菌體濃度:用UV 759S紫外可見分光光度計在600 nm處測定其吸光值OD600。
葡萄糖濃度:使用SBA-40D生物傳感分析儀(山東省科學院生物研究所)測定。
發(fā)酵產物測定:乙醇、丙酮、丁醇(ABE)組分濃度采用氣相色譜(GC)進行定量測定,以異丁醇為內標物,色譜柱為KB-5MS,25m×0.53m×1.00μm,檢測器為FID,進樣溫度240℃,檢測溫度為260℃,柱溫80℃。載氣為氮氣,流速為2.5mL/L,進樣量為1μL。根據(jù)標準曲線和進樣量計算發(fā)酵液中溶劑濃度[18]。
乙酸、丁酸和葡萄糖濃度采用高效液相色譜(島津公司LC-20A)測定。色譜柱型號為AminexHPX-87柱(Bio-Red美國),柱溫65℃,流動相0.005 mol/L H2SO4,流速為0.8mL/min,檢測器型號為RID-10A,進樣量為30uL。
2.1 共生菌株TSH06生理代謝特性
首先研究了共生菌系TSH06生理代謝特性。分別比較了微氧和厭氧條件下,B. cereusTSH1、C. acetobutylicumTSH1、TSH06(B. cereusTSH1+C. acetobutylicumTSH1)在P2培養(yǎng)基、玉米培養(yǎng)基的細胞生長和丁醇合成情況。結果如表1和表2所示。由表1可知:共生菌系TSH06不僅在厭氧條件下生長,也可以在微氧條件下生長,C. acetobutylicumTSH1只能在嚴格厭氧條件下生長。
進而考查了共生菌株TSH06丁醇合成性能。分別比較了TSH1、B. cereusTSH1、TSH06微氧條件下合成丁醇的性能,初始糖濃度為22g/L,37℃靜置發(fā)酵36h。其中C. acetobutylicumTSH1在厭氧條件下培養(yǎng)作為對照。結果如表2所示。由表2可知,在微氧條件下,B. cereusTSH1幾乎不能合成丁醇,而TSH06在微氧條件下可以合成丁醇。發(fā)酵36h,丁醇濃度達到5.15g/L,這與C. acetobutylicumTSH1在厭氧條件下的丁醇發(fā)酵水平相當。TSH06丁醇得率和生產強度分別為0.22 g/g和0.14 g/(L·h),這與也C. acetobutylicumTSH1在厭氧條件下的丁醇發(fā)酵參數(shù)接近。
通過對菌株的生理特性和發(fā)酵特性對比可知,在相同發(fā)酵條件下,共生菌系TSH06可在厭氧和微氧條件下生長并發(fā)酵生產丁醇,C. acetobutylicumTSH1只能在嚴格厭氧條件下生長并合成丁醇。微氧條件下發(fā)酵生產丁醇無需厭氧操作,簡化了實驗操作,也節(jié)省了厭氧設備的投入。
2.2 共生菌TSH06批式發(fā)酵特性
TSH06不僅可以在厭氧條件下生長,也可以在微氧條件下生長,這不同于傳統(tǒng)的嚴格厭氧發(fā)酵[19-20]。在2L發(fā)酵罐中考察了微氧條件下TSH06細胞生長及丁醇合成情況,初始糖濃度為60.3g/L,結果如圖1所示。
表1 共生菌株系TSH06的生理特性
表2 微氧條件下共生菌系TSH06的發(fā)酵特性
圖1 共生菌TSH06批式發(fā)酵生產丁醇
由圖1中可知,在微氧條件下,TSH06細胞可以正常生長并合成丁醇。隨著葡萄糖的不斷消耗,在12h時開始產生有機酸,同時菌體濃度逐漸上升,溶液的pH逐漸下降,此時主要代謝產物為乙酸和丁酸。發(fā)酵20h后,進入產溶劑期,溶劑乙醇、丙酮、丁醇產量迅速增加。OD600在44h達到其最大值為7.98,發(fā)酵結束后乙酸和丁酸的濃度分別為1.21g/L和2.24g/L,ABE溶劑的濃度達到19.5g/L,其中,丙酮4.21g/L、乙醇2.13g/L、丁醇13.0g/L,丁醇得率和生產強度分別達到0.22g/g和0.19g/(L·h)。
2.3 不同稀釋率對連續(xù)發(fā)酵的影響
在連續(xù)發(fā)酵過程中,稀釋率是影響連續(xù)發(fā)酵工藝過程的重要參數(shù),稀釋率越低,底物在發(fā)酵罐中停留的時間越多,能更長時間與菌體接觸,丁醇濃度更高,但生產強度較低;稀釋率越高,底物與菌體接觸的時間越短,丁醇的濃度將下降,但丁醇生產強度越高[21]。本文采用單級連續(xù)發(fā)酵,考察了3個不同稀釋率0.05h–1、0.2h–1、0.25h–1下連續(xù)發(fā)酵過程中的細胞生長、底物消耗和產物合成情況,結果如圖2、圖3所示。
圖2 不同稀釋率對TSH06細胞生長、底物消耗及發(fā)酵pH的影響
圖3 不同稀釋率對TSH06產物合成的影響
初糖濃度為60g/L,初始pH為5.98,當稀釋率為0.05h–1時,溶劑產量和丁醇產量分別為14.5g/L和 9.0g/L,丁醇生產強度為0.45g/(L·h),是批式發(fā)酵生產強度的2.37倍。隨著稀釋率的增大,菌體濃度變化不大,丁醇濃度下降,丁醇生產強度增大。稀釋率為0.2h–1時,丁醇生產強度達到1.06g/(L·h),ABE總溶劑和丁醇濃度分別為10.2g/L和5.3g/L,是批式發(fā)酵生產強度的5.58倍,與0.05h–1相比,丁醇生產強度提高了135.6%。當稀釋率增大到0.25h–1時,丁醇生產強度達到0.9g/(L·h),ABE總溶劑和丁醇濃度分別為5.8g/L和3.6g/L,是批式發(fā)酵生產強度的4.74倍,與0.05h–1相比,丁醇生產強度提高了100%。
在3個不同稀釋率(0.05h–1、0.2h–1、0.25h–1)下,菌體濃度、pH沒有出現(xiàn)明顯變化。OD600平均值分別為5.5、5.8和6.0,pH始終維持在4.0~5.0之間。在稀釋率為0.2h–1時,丁醇生產強度達到最大,為1.06g/(L·h)。
目前已經報道的丁醇連續(xù)發(fā)酵均嚴格厭氧,ZHENG等[12]在稀釋率為0.14h–1時,丁醇產量為1.68g/L,丁醇的生產強度為0.235g/(L·h)。TASHIRO等[10]在稀釋率為0.20h–1時,丁醇產量為6.21g/L,丁醇的生產強度為1.24g/(L·h)。本實驗涉及的共生菌TSH06在微氧條件下丁醇生產強度與文獻報道相當。而在微氧條件下發(fā)酵生產丁醇無需厭氧操作,節(jié)省了厭氧設備的投入,簡化了實驗操作。
本文研究了共生菌TSH06微氧條件下連續(xù)發(fā)酵生產丁醇的特性。共生菌TSH06不同于傳統(tǒng)的嚴格厭氧菌,可以在微氧條件下發(fā)酵生產丁醇。微氧批式發(fā)酵丁醇濃度和生產強度分別達到13.04g/L和0.19g/(L·h)??疾炝讼♂屄蕦SH06丁醇合成的影響。稀釋率為0.20h–1時,丁醇生產強度為達到最大1.06g/(L·h),是批式發(fā)酵生產強度的5.58倍,與稀釋率0.05h–1時發(fā)酵參數(shù)相比較,丁醇生產強度提高了47.2%。共生菌TSH06微氧條件下發(fā)酵生產丁醇無需厭氧操作,節(jié)省了厭氧設備的投入,簡化了實驗操作。
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The continuous butanol fermentation of symbiotic system TSH06
LI Dongyue1,2,LI Xianglong2,LIN Zhangnan1,LIU Hongjuan1,ZHANG Jian’an1
(1Institute of Nuclear and New Energy Technology,Tsinghua University,Beijing 100084,China;2Faculty of Land Resources Engineering,Kunming University of Science and Technology,Kunming 650093,Yunnan,China)
The traditional butanol producing strain was strict anaerobic bacteria. A facultative anaerobic symbiotic system TSH06 was isolated in our lab,which could produce butanol under micro-aerobic conditions. This work studied the continuous butanol fermentation of TSH06 under the micro-aerobic condition. The effect of dilution rate on the cell growth and butanol production was investigeted. The test results indicated that the lower dilution rate enhanced the butanol production and the higher dilution rate was beneficial for the acid accumulation. However,the butanol productivity decreased when the dilution rate was higher than 0.2h–1. The optimized dilution rate was 0.2h–1with the butanol productivity of 1.06 g/(L·h). The results provided the theoretical basis for the further optimization of butanol continuous fermentation under micro-aerobic conditions.
butanol;micro-aerobic fermentation;continuous fermentation;dilution rate;productivity
Q815
A
1000–6613(2017)04–1418–06
10.16085/j.issn.1000-6613.2017.04.035
2016-09-21;修改稿日期:2016-10-20。
工業(yè)生物催化教育部重點實驗室(清華大學)開放基金(2015301)及工業(yè)生物催化教育部重點實驗室 (清華大學) 開放基金(2015302)項目。
李冬月(1989—),男,碩士研究生。聯(lián)系人:張建安,副研究員。E-mail:zhangja@tsinghua.edu.cn。劉宏娟,副研究員。E-mail:liuhongjuan@tsinghua.edu.cn。