陳競適++劉靜++任海姣++侯愛香
摘 要:為篩選肉源高產(chǎn)脂肪酶菌株,本研究以湘西陳年臘肉為樣品,采用稀釋平板計數(shù)法分析湘西臘肉的微生物結(jié)構(gòu),利用產(chǎn)脂肪菌株在羅丹明B篩選平板上形成變色圈的方法進行初篩,采用對硝基苯酚棕櫚酸酯比色法比較初篩菌株脂肪酶活力進行復篩,通過形態(tài)學和分子生物學相結(jié)合的方法鑒定復篩菌株。結(jié)果表明:湘西陳年臘肉有豐富的微生物群落,是產(chǎn)脂肪酶菌株的良好菌源,酵母菌、霉菌和微球菌是其主要微生物群落;臘肉中的微生物經(jīng)羅丹明B平板初篩后得1號菌株,變色圈最大為2.6 cm,11、12號菌株次之,為2.4 cm;復篩得酶活力最高的菌株為1號菌株達13.8 U/mL,與初篩預測結(jié)果一致,經(jīng)構(gòu)建其16S rDNA區(qū)域系統(tǒng)發(fā)育樹,鑒定1號目的菌株為寡養(yǎng)單胞菌屬。
關鍵詞:臘肉;微生物菌群;平板水解圈法;酶活力測定;高產(chǎn)脂肪酶細菌
Microbial Flora Analysis of Aged Cured Pork in Western Hunan Province and Screening of
a High-Yield Lipase-Producing Strain
CHEN Jingshi1, LIU Jing1, REN Haijiao1, HOU Aixiang1,2,*
(1.College of Food Science and Technology, Hunan Agricultural University, Changsha 410128, China;
2.Hunan Provincial Engineering and Technology Research Center for Fermented Food, Changsha 410128, China)
Abstract: To screen a high-yield lipase strain derived from processed meat, the bacterial community structure in aged cured pork in western Hunan province was analyzed by the dilution plate count method and the isolated strains were subjected to two rounds of screening on rhodamine B plates for lipase activity. Lipase activity was colorimetrically determined using p-NPP as a substrate. The screened isolates were identified by morphology and molecular biology techniques. The results showed that abundant microbial communities existed in aged cured pork in western Hunan province, which was a good source of microbial lipase with yeasts, molds and Micrococcus being predominant. Primary screening indicated that strain 1 produced the largest zones (2.6 cm diameter) of discoloration on rhodamine B plates, followed by strains 11 and 12 (2.4 cm). Secondary screening confirmed strain 1 to have the highest lipase activity of 13.8 U/mL. At last a phylogenetic tree was built for the screened strain to identify it as Stenotrophomonas sp.
Key words: cured pork; microbial flora; plate hydrolysis circle method; enzyme activity assay; high-yield lipase-producing bacteria
DOI:10.7506/rlyj1001-8123-201703001
中圖分類號:TS251.1 文獻標志碼:A 文章編號:1001-8123(2017)03-0001-06
引文格式:
陳競適, 劉靜, 任海姣, 等. 湘西陳年臘肉微生物群落分析及高產(chǎn)脂肪酶細菌的篩選[J]. 肉類研究, 2017, 31(3): 1-6. DOI:10.7506/rlyj1001-8123-201703001. http://www.rlyj.pub
CHEN Jingshi, LIU Jing, REN Haijiao, et al. Microbial flora analysis of aged cured pork in western hunan province and screening of a high-yield lipase-producing strain[J]. Meat Research, 2017, 31(3): 1-6. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/rlyj1001-8123-201703001. http://www.rlyj.pub
我國發(fā)酵肉制品有著悠久的歷史,因其顏色、香氣、味道和造型獨特而著稱于世。湖南是全國肉類食品生產(chǎn)大省之一,80%以上是傳統(tǒng)腌臘制品,其中又以湘西臘肉最具有代表性,湘西臘肉主要是指在湖南西部地區(qū)的農(nóng)戶在臘月期間將自家喂養(yǎng)的本地豬宰殺,在大缸中加入食鹽、糖、亞硝酸鈉及多種香料進行腌制,并在自家柴火或土爐進行煙熏而加工成的傳統(tǒng)肉制品[1]。由于高鹽、低水分含量和煙熏的原因,傳統(tǒng)臘肉的保存時間較長,一般可達8~10 個月[2]。在臘肉的發(fā)酵過程中,食鹽滲透慢,生產(chǎn)周期較長,微生物對臘肉的風味產(chǎn)生了很大的影響。有研究[3]表明,臘肉中微生物可以通過代謝支鏈氨基酸(branched chain amino acid,BCAA)生成支鏈醛、醇、酸,從而形成干腌風味,同時,隨著生產(chǎn)周期的延長,微生物的生長繁殖也逐漸增多,增加了臘肉制品的安全風險[4]。湖南傳統(tǒng)臘肉的優(yōu)勢菌主要是乳酸菌和葡萄球菌[5];葡萄球菌和乳酸菌的數(shù)量分別
為106 CFU/g和105 CFU/g[6]。
脂肪酶屬于界面水解酶,在動植物體和微生物中普遍存在,可以催化三脂酰甘油酯及其他一些水不溶性酯類的水解、醇解、酯化、轉(zhuǎn)酯化及酯類逆向合成,廣泛應用于洗滌劑、化妝品、油脂與食品加工、有機合成、表面清洗、皮革與造紙工業(yè)等生產(chǎn)實踐領域[7]。其中微生物脂肪酶因其來源廣泛,具有更好的溫度以及酸堿度適應性而在食品工業(yè)被廣泛應用[8]。目前對微生物脂肪酶的研究較多,但主要集中于細菌、根霉屬、曲霉屬、青霉屬、毛霉屬、地霉屬、假絲酵母屬、假單胞菌屬、伯克霍爾德菌屬等[9],少有關于肉源中對于高產(chǎn)脂肪酶細菌的鑒定研究。隨著豬油逐漸退出食用油市場,對豬油的利用慢慢減少,造成豬油資源的浪費,高產(chǎn)脂肪酶菌株的篩選與研究可以為動物油脂的改性和腌臘制品的風味改良提供新途徑。
本實驗以湖南臘肉為原料,對其所含的微生物種類及其數(shù)量進行鑒定和計數(shù),分析其菌群組成,然后從中篩選出含高產(chǎn)脂肪酶的細菌,并進行菌種鑒定,旨在為臘肉風味改進提供微生物種類方面的意見,并對臘肉中的微生物進行合理利用,豐富高產(chǎn)脂肪酶微生物的可選擇種類。
1 材料與方法
1.1 材料與試劑
湖南湘西臘肉 花垣縣和鳳凰縣農(nóng)戶。
NaCl、4-硝基酚、阿拉伯樹膠、聚乙烯醇、葡萄糖、牛肉浸膏、玫瑰紅B 國藥集團化學試劑有限公司;
氯霉素、Triton X-100、細菌基因組DNA提取試劑盒 北京鼎國生物技術有限公司;平板計數(shù)瓊脂(plate count agar,PCA)培養(yǎng)基、甘露醇高鹽瓊脂(manitol salt agar,MSA)培養(yǎng)基、MRS培養(yǎng)基、馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)基、計數(shù)瓊脂粉、酵母提取粉、細菌學蛋白胨 廣東環(huán)凱微生物科技有限
公司;磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉 天津市密歐化學試劑有限公司。
1.2 儀器與設備
SPX-25085-Ⅱ細菌生化培養(yǎng)箱 上海新苗醫(yī)療器械制造有限公司;MJX-250B-Z霉菌生化培養(yǎng)箱 上海博迅實業(yè)有限公司;凈化工作臺 蚌埠市瑞風凈化設備有限公司;D2S2-LJC080鼓風干燥箱 上海福瑪實驗設備有限公司;XMTD-7000數(shù)顯恒溫水浴鍋 上海浦東物理光學儀器廠;DYCP-33B型瓊脂糖水平電泳槽 上海精科實業(yè)有限公司。
1.3 方法
1.3.1 培養(yǎng)基及試劑的配制[9]
富集培養(yǎng)基:胰蛋白胨粉5.0 g、酵母提取粉2.5 g、葡萄糖1.0 g、水1 L、豬油乳化液10 L,pH 7.0;初篩培養(yǎng)基:胰蛋白胨10.0 g、酵母提取粉5.0 g、NaCl 10.0 g、瓊脂12.0 g、豬油乳化液10 mL、0.01 g/mL羅丹明B
1 mL;復篩培養(yǎng)基:蛋白胨4.0 g、酵母粉0.5 g、蔗糖0.5 g、(NH4)2SO4 0.1 g、MgSO4·7H2O 0.1 g、KH2PO4 0.1 g、豬油乳化液4 mL、pH 8.0;Tris-HCl:6.055 g Tris堿定容至1 L,pH 7.0;對硝基苯酚(p-nitrophenol,p-NP)溶液母液:0.139 1 g p-NP溶于200 mL Tris-HCl,pH7.0;對硝基苯酚棕櫚酸酯(p-nitrophenol palmitate,p-NPP):0.037 8 g p-NPP、0.1 g阿拉伯膠、0.4 mL Triton X-100溶于Tris-HCl緩沖液定容于100 mL,放置于-20 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
1.3.2 微生物計數(shù)
細菌總數(shù)按GB/T 4789.2—2010《食品微生物學檢驗 菌落總數(shù)測定》進行測定;酵母菌、霉菌按GB 4789.15—2010《食品微生物學檢驗 霉菌和酵母計數(shù)》進行測定;乳酸菌按GB 4789.35—2010《食品微生物學檢驗 乳酸菌檢驗》進行測定;微球菌參考菌落總數(shù)的測定方法,通過涂布平板接種法接種于MSA培養(yǎng)基中進行測定;耐熱菌測定時先將裝有混合液的錐形瓶放入75 ℃水浴鍋中加熱處理,之后參考菌落總數(shù)的測定方法進行測定。
1.3.3 高產(chǎn)脂肪酶菌種的篩選與分離
1.3.3.1 菌株的富集培養(yǎng)
稱取10.0 g臘肉加入到90 mL富集培養(yǎng)基中,置于37 ℃的搖床內(nèi)以200 r/min搖床培養(yǎng)48 h。
1.3.3.2 菌株的初篩及純化培養(yǎng)
參照黃斌[9]與洪琨[10]等的方法,將富集培養(yǎng)液用無菌生理鹽水進行梯度稀釋,各取0.1 mL 10-6、10-7和10-8
3 個梯度的稀釋液涂布于含有羅丹明B的初篩培養(yǎng)基上,置于37 ℃條件下培養(yǎng)3 d后,于380 nm紫外光下觀察,挑選菌落周圍有明顯黃色熒光圈的菌落,利用平板劃線法接種到新的初篩平板上,同樣條件下培養(yǎng)2 d,挑取有黃色熒光圈的單菌落接種于復篩培養(yǎng)基中,置于37 ℃條件下以200 r/min搖床培養(yǎng)24 h后,進行酶活力的測定。
1.3.4 脂肪酶活力的測定[9]
采用p-NPP比色法進行脂肪酶酶活力的測定。
1.3.4.1 對硝基苯酚(p-NP)標準曲線的繪制
用5 mmol/L的p-NP母液分別配制成10, 20,…, 80, 90, 100 μmol/L 10 個不同濃度的工作液,分別取各濃度的p-NP溶液在410 nm波長處測其吸光度,并用蒸餾水進行空白對照。以A410 nm為縱坐標,p-NP的濃度為橫坐標,得到p-NP的標準曲線。
1.3.4.2 樣品酶活力的測定[9]
取5 mmoL/L p-NPP溶液0.3 mL,待測菌菌液0.2 mL,兩者充分混合后在37 ℃條件下,以200 r/min搖床培養(yǎng)15 min,立即取出加入0.5 mL無水乙醇終止反應。以置于80 ℃水浴鍋中加熱5 min進行滅活處理后的酶液為對照,以只加入0.3 mL 5 mmoL/L p-NPP溶液與0.5 mL無水乙醇為空白組。各組分別取200 μL反應液加入
96孔板中用酶標儀測定水解產(chǎn)生的對硝基苯酚在410 nm波長處的吸光度,根據(jù)p-NP標準曲線計算p-NP的濃度c,
并換算成酶活力單位,一個酶活力單位定義為:在37 ℃、pH 7.0條件下,每分鐘水解生成1 μmol p-NP所需的酶量。
1.3.5 高產(chǎn)脂肪酶目的菌株的鑒定
通過對待測菌株進行初步分離篩選、搖瓶復篩、酶活力測定后,選定酶活力最高的目的菌株進行菌種鑒定。
1.3.5.1 菌落形態(tài)觀察
分別用平板劃線法和斜面劃線法將目的菌株接種于初篩平板、PCA平板和PCA斜面培養(yǎng)基上,置于37 ℃恒溫箱中培養(yǎng)2 d,觀察記錄菌落形態(tài)。
1.3.5.2 菌株形態(tài)觀察
將PCA斜面培養(yǎng)基上的菌種采用革蘭氏染色法進行鏡檢,在顯微鏡下直接觀察菌株的形態(tài)特征。
1.3.5.3 菌株的16S rDNA分子鑒定
基因組DNA的提?。哼x用細菌基因組DNA提取試劑盒,參照其方法提取出基因組DNA,將提取出的基因組DNA進行瓊脂糖凝膠電泳驗證,觀察是否提取出基因組DNA。
16S rDNA系統(tǒng)發(fā)育樹分析:提取細菌總DNA,將DNA送至生工生物工程(上海)股份有限公司進行堿基測序,然后將得到的16S rDNA測序結(jié)果提交到美國國立生物技術信息中心(The National Center for Biotechnology Information,NCBI)數(shù)據(jù)庫并進行BLAST對比,找到并下載典型的菌株序列與實驗菌株的序列用Lasergene軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。
2 結(jié)果與分析
2.1 臘肉中菌相組成及數(shù)量
由表1可知,細菌和酵母菌、霉菌數(shù)量最多,為本實驗所用臘肉材料中的優(yōu)勢菌,微球菌、葡萄球菌和乳酸菌數(shù)量也較多,耐熱菌的數(shù)量最少,其中細菌、霉菌成為優(yōu)勢菌可能是因為作坊式加工的湘西臘肉在其保藏上存在缺陷,沒有避免高濕的環(huán)境,導致了霉菌的大量增生,可以通過在貯藏過程中保持較低的水分活度和較低的溫度或是低氧等手段避免臘肉的霉變,從而延長其保存期。
2.2 臘肉中高產(chǎn)脂肪酶細菌的篩選
2.2.1 高產(chǎn)脂肪酶菌株初篩結(jié)果
通過采用羅丹明B培養(yǎng)基篩選出12 株可在其中形成明顯黃色透明圈的菌株,測定其菌落大小以及透明圈大小,結(jié)果如表2所示。
一般情況下,透明圈大的菌株產(chǎn)酶能力也會越大。由表2可知,1號菌株透明圈直徑為2.6 cm,為12 組菌株中透明圈直徑最大,4號菌株水解圈直徑最小,僅為1.4 cm,實驗組中有一半菌株的透明圈直徑基本保持在2.0~2.4 cm左右。但不能僅由透明圈直徑對產(chǎn)酶能力進行判斷,因為1號菌株雖然透明圈直徑大,但是其菌落直徑也為最大,不能真實反映細菌的產(chǎn)酶能力強弱,因此需要進行進一步的酶活力測定來驗證初篩的初步判斷,初篩結(jié)果可以作為酶活力測定的參考結(jié)果。
2.2.2 產(chǎn)脂肪酶菌株復篩及酶活測定結(jié)果
采用p-NPP比色法對初篩得到的12 株待測菌株的酶活力進行檢驗復篩。由研究可得,p-NP濃度與吸光度的標準曲線方程為:y=0.006x+0.056 4,相關系數(shù)R2=0.997 9,相關性較好,可以根據(jù)該方程用吸光度來判斷p-NP的濃度。利用酶標儀測定所得結(jié)果為p-NP的吸光度,根據(jù)已測得的p-NP濃度與吸光度的標準曲線,得到各組菌株所對應的p-NP濃度,換算成酶活力大小如表3所示。
由表3可知,通過比較分析,可以得出12 組菌株中,1號菌株的酶活力最高,達13.8 U/mL,10號次之,
2號最低僅為1.4 U/mL。1號組的酶活力約為2號組酶活力的9.8 倍,其余普通產(chǎn)脂肪酶菌株酶活力基本在
5~6 U/mL之間,為高產(chǎn)菌株的1/2,由酶活力測定結(jié)果結(jié)合初篩結(jié)果可知:初篩利用透明圈和菌落直徑對產(chǎn)酶能力進行預測,僅為參考意見,表觀特征可能受環(huán)境條件等其他因素的影響,而酶活力測定是在同等條件下從酶解產(chǎn)物濃度對產(chǎn)酶能力進行判斷,比初篩結(jié)果更為可靠。由酶活力大小可知,1號菌株因其產(chǎn)酶能力較強,宜作為目的菌株進行研究。
2.3 臘肉中高產(chǎn)脂肪酶菌株的鑒定
2.3.1 菌種的形態(tài)觀察
將1號菌種接種于羅丹明B培養(yǎng)基,在37 ℃條件下培養(yǎng)(48±2) h后形成明顯的透明圈,菌落形態(tài)呈不規(guī)則狀,邊緣為鋸齒狀,表面較黏稠,有菌膜。
2.3.2 菌種的形態(tài)觀察結(jié)果
對目的菌株進行革蘭氏染色,在普通光學顯微鏡下放大100 倍,觀察個體形態(tài),如圖1所示。
由圖1可知,目的菌株1號菌經(jīng)革蘭氏染色后呈紅色,為革蘭氏陰性菌。細菌呈直桿狀,兩端鈍圓,長度較短,為短桿菌。
2.3.3 目的菌株的16S rDNA分子鑒定結(jié)果
2.3.3.1 基因組DNA的提取結(jié)果
將基因組DNA進行瓊脂糖凝膠電泳,得到電泳條帶如圖2所示,說明基因組DNA已被提取。
2.3.3.2 目標菌株的堿基測序結(jié)果
將DNA提取物送交生工生物工程(上海)股份有限公司進行測序,得到1號細菌的1 447 個堿基序列,其基因堿基測序結(jié)果如下:
2.3.3.3 系統(tǒng)發(fā)育樹的構(gòu)建結(jié)果
根據(jù)16S rDNA測序結(jié)果,將得到的堿基序列在http://www.ncbi.nlm.nih.gov/上進行BLAST比對,結(jié)果見表4。
由圖3可知,發(fā)育樹結(jié)果可判定1號菌株為寡養(yǎng)單胞菌(Stenotrophomonas sp.)。
3 討 論
3.1 臘肉中菌相和優(yōu)勢菌的分析及應用
臘肉中的微生物種類及數(shù)量對臘肉的發(fā)酵和呈味作用有著較大的影響[11],為了優(yōu)化臘肉發(fā)酵工藝、改善臘肉風味,國內(nèi)外已有多位學者對其進行了研究,如陳美春等[12]對四川臘肉在腌制和貯存過程中微生物的變化情況進行了研究,發(fā)現(xiàn)在腌制中期乳酸菌為最主要的優(yōu)勢菌,其次為葡萄球菌,乳酸菌數(shù)1.0×105 CFU/g,葡萄球菌數(shù)4.3×104 CFU/g,在成熟貯藏過程中,臘肉中各菌群的數(shù)量不斷變化,霉菌和酵母菌繼續(xù)生長。劉洋[13]通過對2 種臘肉產(chǎn)品中的葡萄球菌和芽抱桿菌分離鑒定發(fā)現(xiàn),傳統(tǒng)臘肉中優(yōu)勢菌株為肉葡萄球菌(Staphylococcus carnosus)和枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis);低鹽臘肉中的葡萄球菌和芽孢桿菌構(gòu)成復雜,沒有明顯的優(yōu)勢菌株。通過對臘肉的菌相進行分析,可以為臘肉的風味改良[14]
提供一定的思路,現(xiàn)大多數(shù)研究主要集中在臘肉的添加物或是臘肉自身所含化學物質(zhì)的變化對其風味的影響,如在臘肉中添加木瓜蛋白酶[15]、胰蛋白酶[16],以及臘肉加工過程中脂肪氧化分解與呈味作用之間的關系[17],而少有從微生物組成角度對風味進行研究的實驗。在對臘肉進行菌相分析時,本實驗結(jié)果表明,優(yōu)勢菌株主要為酵母菌、霉菌、微球菌,霉菌成為優(yōu)勢菌可能是湖南臘肉風味的重要組成因素,也可能是貯藏過程中水分含量較高而臘肉品種為陳年臘肉,存放時間過長,導致霉菌大量生長成為優(yōu)勢菌[18]??梢哉J為,臘肉中的優(yōu)勢菌除了受臘肉本身的影響外,還可能與環(huán)境條件、地域和存放時間有關,因此在菌相組成上與其他地區(qū)的臘肉有些許差異[19]。本實驗對湖南陳年臘肉微生物菌群進行了研究,并對其中的高產(chǎn)脂肪酶菌株進行了篩選,可以對湖南地區(qū)陳年臘肉的防腐措施[20]提供建議,并對發(fā)酵菌株的選育提供一定的指導,有利于指導湖南特色風味臘肉發(fā)酵劑的研發(fā),從而進行工業(yè)化大規(guī)模生產(chǎn)。微生物發(fā)酵劑的應用有利于縮短發(fā)酵時間,降低生產(chǎn)成本,控制產(chǎn)品品質(zhì),生產(chǎn)中一般用乳酸菌與微球菌或霉菌或酵母的混合菌種進行發(fā)酵[21],如劉洋等[22]通過實驗發(fā)現(xiàn),以戊糖片球菌、木糖葡萄球菌、肉葡萄球菌、清酒乳桿菌和漢遜德巴利酵母菌組合微生物發(fā)酵劑SM-194對四川臘肉的理化及微生物特性有顯著影響,可在一定程度上改善產(chǎn)品品質(zhì),保障產(chǎn)品的安全性。
3.2 臘肉中高產(chǎn)脂肪酶的篩選和鑒定
以前的研究大多集中在動植物中,如從萌發(fā)的油菜種子中制備脂肪酶[23]。細菌和真菌中脂肪酶的發(fā)現(xiàn),帶動了微生物資源的發(fā)展[24],微生物脂肪酶相較于動植物脂肪酶,具有生產(chǎn)成本低,產(chǎn)量高和繁殖速度快等特點[25],因此在工業(yè)生產(chǎn)中被廣泛運用,具有較高的應用價值。符小燕等[26]從廣式臘腸中篩選出的葡萄球菌經(jīng)誘變后酶活力為5.26 U/mL,為初始酶活力的8 倍,在特定的優(yōu)化培養(yǎng)基中測得最高酶活力為17.54 U/mL。實驗對臘肉中存在的高產(chǎn)脂肪酶進行了篩選分離、酶活力測定、堿基測序與定性分析,從臘肉中篩選出了實驗條件下最高酶活力為13.8 U/mL的革蘭氏陰性寡養(yǎng)單胞菌。
國內(nèi)有許多學者對微生物中脂肪酶的應用進行了研究,如利用微乳凝膠固定化皺落假絲酵母脂肪酶(Candida rugosa lipases,CRL)在有機溶劑中催化戊酸和乙醇合成食品領域、化妝領域重要香味劑——戊酸乙酯[27]。張權等[28]利用殼聚糖固定化海洋微生物YS2071脂肪酶,發(fā)現(xiàn)脂肪酶經(jīng)固定化處理之后,其酸堿耐受性增強,酶活力保留率比游離脂肪酶要高,為微生物脂肪酶的應用提供了數(shù)據(jù)基礎。在生物柴油的合成方面,微生物脂肪酶也有著重要的應用。通過單因子實驗發(fā)現(xiàn),霉菌X-28的紫外線突變株X-281產(chǎn)生的脂肪酶對催化生物柴油的合成有著重要的影響。以大豆油為原料,發(fā)現(xiàn)在5 mL正乙烷作為溶劑,使用20%的固定化脂肪酶用量,反應溫度為40 ℃,采用每5 h流加油醇-甲醇(物質(zhì)的量比1∶1)3 次時,大豆油的轉(zhuǎn)化率可高達91%[29]。
本研究對臘肉中高產(chǎn)脂肪酶菌株進行篩選、分離和鑒定,國內(nèi)研究少有,同時臘肉中的高產(chǎn)脂肪酶對臘肉的風味以及油脂含量也有著較大的影響[30],可以此作為改善臘肉風味的后續(xù)研究方向。經(jīng)篩選得到的高產(chǎn)脂肪酶菌株豐富了微生物脂肪酶的種類,對其進行堿基定序和發(fā)育樹定性操作,進一步確定了高產(chǎn)脂肪酶菌株的種屬,有利于其后續(xù)的開發(fā)利用。但由于并未對篩選出來的高產(chǎn)酶菌株進行不同底物的反應實驗,因此對于其在實際生產(chǎn)生活中的運用還較為局限。
4 結(jié) 論
本研究主要對臘肉中的菌相組成和數(shù)量進行了分析,并篩選鑒定出了臘肉中所含的高產(chǎn)脂肪酶菌株,實驗結(jié)果顯示:臘肉中的主要菌種為酵母菌、霉菌和微球菌,高產(chǎn)脂肪酶菌株為寡養(yǎng)單胞菌,且在實驗條件下,最高酶活力可達13.8 U/mL。湖南臘肉的菌相構(gòu)成對湖南臘肉的工業(yè)化生產(chǎn)有著一定的參考作用[31],高產(chǎn)脂肪酶的發(fā)現(xiàn)進一步提升了臘肉中微生物的利用價值。但實驗對影響臘肉風味的優(yōu)勢菌株并未進行研究,僅分析了種類和數(shù)目,下一步可以根據(jù)本實驗結(jié)果對臘肉的微生物發(fā)酵劑配方進行研究[32],同時對實驗中篩選出來的高產(chǎn)脂肪酶菌株進行應用研究,觀察在不同底物條件下或不同實驗條件下,其產(chǎn)酶能力的變化,從而確定其最適底物和最適作用條件[33],將其合理運用于實際生產(chǎn)。
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