低溫處理黃粉蟲蛹對管氏腫腿蜂寄生效能的影響

胡尊瑞，吳曉云，遲全元，趙梅婷，王增霞

(1.北京農業(yè)職業(yè)學院園藝系，北京 102442；2.中國農業(yè)科學院植物保護研究所，北京 100193)

低溫處理黃粉蟲蛹對管氏腫腿蜂寄生效能的影響

胡尊瑞1，2，吳曉云1，遲全元1，趙梅婷2，王增霞2

(1.北京農業(yè)職業(yè)學院園藝系，北京 102442；2.中國農業(yè)科學院植物保護研究所，北京 100193)

中間寄主的營養(yǎng)狀況是影響寄生蜂繁育效果的主要因素。對中間寄主進行處理以抑制其發(fā)育，保證其有充足的營養(yǎng)滿足子代寄生蜂發(fā)育所需。本文研究了在0℃和2℃條件下中間寄主黃粉蟲蛹體內營養(yǎng)物質蛋白質、總糖、海藻糖、糖原含量等隨處理時間的先升高后下降的變化趨勢，表皮硬化程度以及腫腿蜂的寄生率之間的關系。結果表明：寄生蜂寄生率與中間寄主體內營養(yǎng)物質含量呈正相關變化，與表皮硬化程度呈負相關變化。推薦2℃作為中間寄主處理的適宜溫度，處理時間為24 h。

管氏腫腿蜂；黃粉蟲蛹；低溫冷藏；生理生化；寄生率

在人工大量擴繁管氏腫腿蜂Sclerodermaguani的工作中，需要對中間寄主黃粉蟲Tenebriomolitor采取一定的處理措施來解決種蜂能夠成功寄生中間寄主的問題(田慎鵬和徐志強，2003；賀凱等，2006；陳倩等，2008)。若不對中間寄主進行低溫冷藏、酒精麻醉等處理，種蜂就不能成功地寄生中間寄主或者寄生率很低，達不到商品化生產的要求(陳倩等，2006；楊華等，2007；姚萬軍，楊忠岐，2008)。因此中間寄主的處理是商品蜂繁育工作中的關鍵問題。

對中間寄主黃粉蟲蛹的處理時間過長，會造成部分中間寄主的死亡，浪費原材料，虛占空間；處理時間過短則不能抑制住中間寄主的發(fā)育速度，初化蛹在常溫下2 h后其表皮便會迅速老化，7-10 d內蛹就會羽化為成蟲了。如管氏腫腿蜂不能迅速對初化蛹蜇刺麻痹的話，極容易出現(xiàn)寄生不成功。因此需要準確地確定對中間寄主進行處理的時間，提高對中間寄主的處理效率，獲得適于接蜂繁育的中間寄主從而節(jié)省原材料和能源，保持繁育的高效性。因此，采用對中間寄主進行低溫處理以降低中間寄主的生理活動，抑制其繼續(xù)發(fā)育，測定這一期間黃粉蟲蛹體內營養(yǎng)物質變化情況與寄生蜂寄生率之間的關系，以期為實現(xiàn)腫腿蜂商品化生產提供理論依據和技術支持。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

黃粉蟲蛹：為市場售黃粉蟲幼蟲，購買后在室內飼養(yǎng)，直至老熟幼蟲化蛹。管氏腫腿蜂為野外采集，實驗室繁育。

試驗儀器：勻漿器、離心機(legend MicRo 17R)、HPG-280 B型恒溫控濕光照培養(yǎng)箱、容聲BCD-233YM型冰箱、紫外分光光度計：UNIC(尤尼柯UV-28D2 H型紫外可見分光光度計)、電熱恒溫水槽：DR-8型、Nikon雙筒解剖鏡、搪瓷盤、接蜂用毛筆、指形管(12×50 mm)等小型器具。

試劑：葡萄糖分析純、蒽酮試劑分析純、牛血清蛋白分析純、酒精分析純、海藻糖分析純、糖原分析純、考馬斯亮藍G-250、三氯乙酸分析純、PBS緩沖液10×貯存液：稱79 g NaCl，2 g KCl，14.4 g Na2HPO4和18 g K2HPO4，溶于800 mL 蒸餾水中，HCl調節(jié)溶液的pH值7.4，最后加蒸餾水定容至1 L，室溫保存，用時稀釋10倍。

1.2 試驗方法

1.2.1 挑選中間寄主及處理

選擇黃粉蟲蛹(以下簡稱中間寄主)，將同一時間內挑出的蛹集中放于培養(yǎng)皿，將不同時間段蛹用記號筆分別標記，分別在0℃和2℃下，連續(xù)處理72 h，每隔12 h取樣一次進行生化分析，不同處理重復9次，取平均值，以常溫下處理的黃粉蟲蛹為對照。

1.2.2 試驗方法

1.2.2.1 中間寄主體內蛋白質含量的測定

采用考馬斯亮藍G-250法測定蟲體內的游離蛋白質含量。取中間寄主蛹10頭，加入2.0 mL磷酸鹽緩沖液，冰浴勻漿后，移至10.0 mL離心管中，用8.0 mL緩沖液沖洗勻漿器3次，在高速離心機上10000 rpm，離心15 min，除去膜組織，取上清液，過濾，再次離心10 min，取上清液，于595 nm處測OD值。重復9次，計算出平均值，利用標準曲線上查出OD值所對應的蛋白質含量。

1.2.2.2 中間寄主體內糖類含量的測定

a. 總糖含量的測定：采用蒽酮法測定蟲體內的可溶性糖原含量(王思忠等，2008)。取同批次處理的中間寄主蛹10頭，加入三氯乙酸(TCA)2.0 mL，充分研磨，移入離心管，用6.0 mL三氯乙酸沖洗勻漿器3次，一并轉入離心管，于5000 rpm下離心15 min，除去蛋白質，取上清液，再在沉淀中加入2.0 mL三氯乙酸，劇烈震蕩5 min后，再次離心5000 rpm下15 min，合并上清液，于620 nm處測定OD值，重復9次，計算出平均值，利用標準曲線上查出OD值所對應的總糖含量。

b．海藻糖含量測定：測定方法參照仵均祥等(2004)報道方法。取a提取液l.0 mL于帶塞玻璃試管中，加0.075 mol/L H2SO42.0 mL，水浴10 min。冷卻后加300 g/L KOH 2.0 mL，煮沸10 min，用于破壞還原糖。采用蒽酮法于 620 nm 處測OD值，重復9次，計算出平均值，利用標準曲線上查出OD值所對應的海藻糖含量。

c．糖原含量測定：測定方法參照仵均祥報道方法(仵均祥等，2004)。取a提取液2.0 mL于離心管中，加入6.0 mL 95%乙醇，再加2-3滴飽和Na2SO4溶液，置于4℃冰箱中，3 d后取出4000 rpm離心15 min，棄上清夜，70℃短時加熱去乙醇得沉淀，加蒸餾水溶解沉淀并定容至10 mL。采用蒽酮法于620 nm處測OD值，重復9次，計算出平均值，利用標準曲線上查出OD值所對應的糖原含量。

d．黃粉蟲蛹表皮隨時間硬化測定：檢測各處理組黃粉蟲蛹表皮硬化程度，每組測定20頭蛹，重復4次。以“+”表示表皮硬化程度，一個“+”表示表皮稍微有點硬化，“+++”表示表皮中等程度的硬化，“+++++”表示表皮高度硬化。

1.2.3 接蜂試驗

將不同溫度處理的黃粉蟲蛹放入玻璃指形管(12×50 mm)中，每管放一頭處理蛹，按照蜂蟲比為3 ∶1進行接蜂試驗，接完蜂后用棉球堵住指形管管口，防止管氏腫腿蜂逃逸。每個處理接蜂60管，重復3次。將接種好的黃粉蟲蛹放在溫度為26℃，相對濕度為75%的恒濕恒溫培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng)，試驗過程中統(tǒng)計各處理組的寄生成功率。

應用SPSS 17.0軟件對上述數據進行單因素方差分析。

圖1 黃粉蟲蛹經處理后體內蛋白質含量變化曲線Fig.1 The curves of body protein content after treatment to Tenebrio molitor pupa

2 結果與分析

2.1 蛋白質含量變化

處理溫度和時間對中間寄主體內蛋白質含量變化均存在一定的影響(圖1)。試驗組的變化規(guī)律是先升高后降低，對照組蛋白質變化則比較平穩(wěn)。蛋白質含量從0-12 h時間段緩慢上升，12-24 h為急劇上升時期，24-48 h階段時蛋白質含量變化趨于平穩(wěn)；在48-72 h階段蛋白質含量下降。在0℃處理條件下，蛋白質含量由最初的56.73 μg/mg，到24 h時含量最大值達到67.07 μg/mg，增幅為18.23%；而在2℃處理條件下，增幅為17.52%。蛋白質含量升高是因在低溫處理條件下機體產生了抗凍蛋白(AFP)或抗凍肽(Graether等，2000；Liou等，2000)，提高中間寄主的抗凍性，所以表現(xiàn)為在一定的時間段內體內蛋白質含量的增加。隨著處理時間的延長，中間寄主體內營養(yǎng)物質消耗，其體內的蛋白質含量逐漸下降。

2.2 糖類含量變化

2.2.1 總糖含量變化

處理溫度和時間對中間寄主體內總糖含量變化均存在一定的影響(圖2)。在各處理溫度下，試驗組總糖含量隨處理時間的延長呈現(xiàn)出先升高后下降的趨勢，對照組總糖含量比較平穩(wěn)。試驗組在0℃處理條件下，總糖含量升高速率最快，在12 h時總糖含量比2℃處理條件下總糖含量高出5.80 μg/mg，到達最高點的時間是在24 h處，總糖含量為28.93 μg/mg比CK高6.81 μg/mg；在2℃處理條件下到達最高點的時間也是在24 h處，總糖含量為31.00 μg/mg比CK高8.53 μg/mg；在48-72 h時段之間，中間寄主在2℃處理條件下的總糖含量比0℃處理條件下的總糖含量下降的更快。

圖2 黃粉蟲蛹經處理后體內總糖含量變化曲線Fig.2 The curves of body total sugar content after treatment to Tenebrio molitor pupa

總糖含量逐漸升高的原因是在處理條件下體內的非糖物質成為糖類物質，從而降低過冷卻點增加中間寄主的抗凍性。在0℃和2℃處理條件下的中間寄主都在24 h處體內總糖含量達到最大值，分別為29.60 μg/mg和31.00 μg/mg；24-72 h隨著處理時間的延長體內營養(yǎng)物質逐漸消耗，總糖含量逐漸下降并且在2℃處理條件下中間寄主體內的總糖含量消耗的更快(圖2)。72 h時，在2℃條件下總糖含量比0℃下低0.94 μg/mg。

2.2.2 海藻糖含量變化

在不同處理溫度下，試驗組中間寄主體內海藻糖含量隨著保藏時間的延長均表現(xiàn)出先升高后降低的趨勢，對照組海藻糖曲線相對平穩(wěn)(圖3)。在0℃處理條件下海藻糖含量上升最快，最高值出現(xiàn)在24 h，含量為6.00 μg/mg，2℃條件下最大值為5.87 μg/mg。海藻糖作為昆蟲體內的血糖，可直接供昆蟲使用，維持昆蟲的生命活動。海藻糖是昆蟲抗寒性主要物質，與昆蟲體內的過冷卻點有直接的關系。海藻糖含量的提高增加昆蟲的抗凍性，這點與海藻糖在大斑芫菁Mylabrisphalerate代謝規(guī)律是一致的(朱芬等，2008)。隨著時間延長，中間寄主體內海藻糖逐漸消耗，且0℃條件下黃粉蟲蛹體內海藻糖消耗的較快。

圖3 黃粉蟲蛹經處理后體內海藻糖變化曲線Fig.3 The curves of body trehalose content after pretreatment to Tenebrio molitor pupa

2.2.3 糖原含量變化

處理溫度和時間對中間寄主體內糖原含量均存在一定的影響，試驗組在各處理溫度下糖原含量均呈現(xiàn)出先升高后下降的趨勢，在0℃和2℃處理條件下的中間寄主糖原含量都在12 h處含量達到最大值(圖4)。0℃處理條件下在12 h處糖原含量達到最大值為3.36 μg/mg比CK含量多0.81 μg/mg；在72 h處糖原含量比CK含量少1.00 μg/mg；2℃處理條件下在12 h處含量達到最大值3.16 μg/mg比CK含量多0.62 μg/mg；在72 h處糖原含量比CK含量少1.28 μg/mg。分析

為糖原含量逐漸升高是試驗組黃粉蟲體內的非糖物質轉化為糖原物質，降低中間寄主的過冷卻點從而增加中間寄主的抗凍性，生成的糖原又進一步轉化為海藻糖等抗凍性更強的物質，導致糖原含量下降。大斑芫菁滯育幼蟲在準備滯育時儲備了大量糖原，這些糖原可能為滯育期間海藻糖、山梨醇和甘油的代謝提供了原料積累，轉化為如海藻糖、蔗糖、果糖、葡萄糖等，從而提高昆蟲的抗寒能力。棉鈴蟲Helicoverpaarmigera在滯育進入期大量合成海藻糖、山梨醇等貯存在體液中，這些物質既是能源物質又是很好的抗凍劑防止低溫傷害(徐衛(wèi)華，2008)。

圖4 黃粉蟲蛹經處理后體內糖原含量變化曲線Fig.4 The curves of body glycogen content after pretreatment to Tenebrio molitor pupa

2.2.4 黃粉蟲蛹表皮變化

隨著保藏時間的延長，中間寄主黃粉蟲蛹表皮不斷進行硬化，新化蛹表皮是最嫩的，12 h對照組CK黃粉蟲蛹表皮即達到“++”硬化，24-36 h時為“+++”；48 h硬化度“++++”；60-72 h為“+++++”(表1)。如果表皮不及時進行硬化，新化蛹易受到外部物理攻擊和損傷；試驗組在相同保藏時間下，低溫條件有效抑

表1 中間寄主黃粉蟲蛹表皮老化程度

注：“+”表示中間寄主黃粉蟲蛹表皮老化程度，“+”越多，老化程度越厲害。Note：“+” express harden degree of intermediate hosts’ cuticular layer，the more“+”，the harden degree is.

制試驗組黃粉蟲蛹表皮硬化，12-36 h期間，黃粉蟲蛹表皮硬化程度弱，為“+”；隨著時間的延長，這種硬化程度逐漸加劇，48-60 h為“++”；72 h硬化為“+++”。表皮硬化越弱越有利于腫腿蜂的寄生。所以，低溫條件更有利于管氏腫腿蜂的寄生。

2.2.5 腫腿蜂對黃粉蟲蛹寄生率

試驗組管氏腫腿蜂寄生率曲線都是先升高后降低，而CK的寄生率曲線則一直呈下降趨勢(圖5)。因為腫腿蜂寄生分為識別—蜇刺—取食—產卵等一系列過程，所以寄生率是先升高的(賀凱等，2006)；隨著表皮硬化程度加劇，寄生率逐漸降低。0℃和2℃試驗組，在24 h處，兩處理組寄生率達到最大值，分別為91.0%和94.6%；管氏腫腿蜂寄生趨勢與中間寄主體內總糖含量相關性極為顯著，相關系數為K=0.929(P<0.01)、蛋白質和海藻糖相關性稍差，相關系數分別為K=0.786和K=0.783(P<0.05)。這可能是管氏腫腿蜂在寄生中間寄主時，需要取食中間寄主，進行補充營養(yǎng)物質，促進毒液產生和卵巢的發(fā)育(賀凱等，2006)，特別是補充蛋白質和糖類能有效提高寄生蜂寄生能力和壽命(鄭許松，2003；伍和平和李保平，2007)。而對照組中間寄主營養(yǎng)物質含量穩(wěn)定，且在常溫狀態(tài)下一直處于發(fā)育狀態(tài)，表皮硬化快，腫腿蜂不能很好補充營養(yǎng)，毒刺不能穿過黃粉蟲蛹表皮而進行有效蟄刺，導致寄生率很低。分析發(fā)現(xiàn)腫腿蜂寄生率與中間寄主表皮硬化程度呈負相關(K=-0.880；P<0.01顯著相關)。依據腫腿蜂寄生效果，推薦在2℃、24 h作為黃粉蟲蛹最佳處理組合。

圖5 不同處理條件下腫腿蜂對黃粉蟲蛹寄生率曲線Fig. 5 Parasite rate of Tenebrio molitor pupa on different treatment

3 結論與討論

有研究表明昆蟲在越冬或經受低溫時，體內的蛋白質會發(fā)生變化。據報道，在北美的阿拉斯加有33種昆蟲含抗凍蛋白(Duman等，2004)，而且這種蛋白的作用是阻止昆蟲的血淋巴在低溫下結凍；在滯育的馬鈴薯葉甲Leptinotarsadecem及西南玉米桿草螟Diatraeagrandiosella的血淋巴中均發(fā)現(xiàn)了滯育蛋白；在棉鈴蟲的血淋巴蛋白圖譜分析過程中，分辨出20多條譜帶，其中有許多譜帶隨著發(fā)育階段的不同，其含量往往發(fā)生明顯的變化。

對接蜂前中間寄主黃粉蟲蛹進行處理，導致其體內營養(yǎng)物質含量、表皮硬化程度發(fā)生改變，從而影響管氏腫腿蜂寄生率。綜合考慮黃粉蟲蛹體內營養(yǎng)物質含量、表皮硬化程度和腫腿蜂寄生率之間的關系。中間寄主經過一定時間的處理后能夠獲得更好的營養(yǎng)狀態(tài)，有利于寄生蜂對其產生寄生行為——雌蜂在中間寄主體上取食補充營養(yǎng)并進行寄生、產卵(賀凱等，2006)。寄生蜂寄生率與中間寄主黃粉蟲蛹體內營養(yǎng)物質含量情況是一致的。蛋白質、糖類物質含量豐富，腫腿蜂可以有效地補充營養(yǎng)，卵巢、毒腺得到發(fā)育(賀凱等，2006)，腫腿蜂寄生率高；低溫條件抑制了黃粉蟲蛹表皮硬化程度，表皮硬化弱，中間寄主的營養(yǎng)物質含量高，寄生蜂寄生效果好；中間寄主的營養(yǎng)物質含量低，表皮硬化程度強，腫腿蜂的寄生率就低。

綜上所述，腫腿蜂寄生率與低溫處理中間寄主體內營養(yǎng)物質含量成正相關，與表皮硬化程度成負相關。經低溫處理后中間寄主營養(yǎng)豐富，寄生蜂在取食寄主補充營養(yǎng)后，可以有效對寄主進行蟄刺，并且補充營養(yǎng)能夠有效延長寄生蜂壽命，提高寄生蜂寄生率高。低溫處理抑制黃粉蟲蛹表皮硬化程度，腫腿蜂對黃粉蟲蛹能取食方便、蜇刺有效。處理時間過短，腫腿蜂不識別、蜇刺，處理時間過長，黃粉蟲蛹表皮硬化嚴重，雖然識別但蜇刺無效導致寄生失敗。所以推薦使用2℃作為中間寄主黃粉蟲蛹處理溫度，低溫處理黃粉蟲蛹時間為24 h。

關于腫腿蜂識別中間寄主與黃粉蟲蛹體內營養(yǎng)物質之間關系還有待進一步研究。

References)

Chen Q, Liang HZ, Zhang QS.Effect of cold storage ofTenebriomolitorpupae onSclerodermusguani(Hymenoptera: Bethylidae)breeding[J].ChineseJournalofBiologicalControl, 2006, 1: 7. [陳倩,梁洪柱,張秋雙．低溫貯存黃粉蟲蛹對管氏硬皮腫腿蜂繁育的影響[J]. 中國生物防治, 2006, 1: 7]

Chen Q,Liang HZ,Gao LW,etal．Influence of host storage temperature and duration on the reproduction ofSclerodermaguani[J]．ChineseJournalofBiologicalControl,2008,24(1):7-11. [陳倩,梁洪柱,高靈旺,等．中間寄主貯存溫度和時間對管氏腫腿蜂繁殖的影響[J]．中國生物防治,2008,24(1):7-11]

Duman JG, Bennett V, Sformo T,etal. Antifreeze proteins in Alaskan insects and spiders[J].JournalofInsectPhysiology,2004,50(4): 259-266.

Graether SP, Kuiper MJ, Gagne SM. β-Helix structure and ice-binding pro-perties of a hyperactive antifreeze protein from an insect[J].Nature,2000,406:325-328.

He K, Xv ZQ, Dai PL. The parasitizing behavior ofSclerodermaguaniXiao et Wu (Hymenoptera: Bethylidae)wasps onTenebriomolitorpupae[J].ActaEntomologicaSinica,2006,49(3):454-460.[賀凱,徐志強,代平禮．管氏腫腿蜂對黃粉甲的寄生行為[J]．昆蟲學報,2006,49(3):454-460]

Liou YC, Tocilj A, Davies PL,etal. Mimicry of ice structure by surface hydroxyls and water of α,β-helix antifreeze protein[J].Nature,2000,406:322-324.

Tian SP, Xv ZQ. Effects of different temperatures on the development ofSclerodermaguanireared withTenebriomolitor[J].EntomologicalKnowledge,2003,40(4):356-359. [田慎鵬,徐志強．不同溫度條件對利用黃粉甲繁育管氏腫腿蜂的影響[J]．昆蟲知識,2003,40(4):356-359]

Yang H, Yang W, Zhou ZJ,etal．Parasitization capacity, fecundity and life table of laboratory population ofSclerodermasichuanensisXiao on the pupae ofTenebriomolitorLinne[J].ChineseJournalofBiologicalControl,2007,23(2):110-114.[楊華,楊偉,周祖基,等. 川硬皮腫腿蜂在黃粉蟲蛹上的寄生、繁殖能力及實驗種群生命表[J]．中國生物防治,2007,23(2):110-114]

Wang SZ, Li Q, Feng CH,etal. Cold-hardiness ofLocustamigratoriatibetensisin each developmental stage[J].ChineseBulletinofEntomology,2008,44(6):896-897.[王思忠,李慶,封傳紅,等．西藏飛蝗各發(fā)育階段的耐寒性[J]．昆蟲知識,2008,44(6):896-897]

Wu JX, Yuan F, Su L.Change of carbohydrate contents in larvae of the wheat midge,Sitodiplosismosellana(Gehin)during mature and diapause stage[J].ActaEntomologicaSinica, 2004, 47(2):178-183.[仵均祥,袁鋒,蘇麗．麥紅吸漿蟲幼蟲滯育期間糖類物質變化[J]．昆蟲學報,2004,47(2):178-183]

Wu HP, Li BP. Influence of supplementary food on longevity and feeding behavior ofMeteoruspulchricornis(Hymenoptera:Braconidae)[J]．ChineseJournalofBiologicalControl,2007,23(2):184-187.[伍和平, 李保平. 補充營養(yǎng)對斑痣懸繭蜂壽命和取食行為的影響[J]. 中國生物防治,2007,23(2):184-187]

Xv WH.Advances in insect diapauses[J].ChineseBulletinofEntomology,2008,45(4):512-527. [徐衛(wèi)華．昆蟲滯育研究進展[J]. 昆蟲知識,2008,45(4):512-527]

Yao WJ, Yang ZQ. Mass-rearing ofSclerodermusguani(Hymenoptera: Bethylidae)with substitute host[J].ChineseJournalofBiologicalControl,2008,24(3):220-226.[姚萬軍,楊忠岐.人工繁殖管氏腫腿蜂的替代寄主研究[J].中國生物防治,2008,24(3):220-226]

Zheng XS, Yu XP, Lv ZX,etal. Effects of different nutritional resource on the longevity and parasitic ability of egg parasitoidAnagrusnilaparvatae[J].ChineseJournalofAppliedEcology,2003,14(10):1751-1755. [鄭許松,俞曉平,呂仲賢,等. 不同營養(yǎng)源對稻虱纓小蜂壽命及寄生能力的影響[J]. 應用生態(tài)學報,2003,14(10):1751-1755]

Zhu F，Li H，Wang Y,etal.Change of glycogen and polyol contents of the diapausing larve ofMylabrisphalerata(Palla)(Coleoptera:Meoidae)at different diapausing stage[J]．ActaEntomologicaSinica,2008,51(1):9-13．[朱芬,李紅,王永等．大斑蕪菁滯育幼蟲在滯育不同階段體內糖類和醇類含量的變化[J].昆蟲學報,2008,51(1):9-13]

Pupae ofTenebriomolitortreatment in low temperature to the effect ofSclerodermaguaniparasitism

HU Zun-Rui1,2，WU Xiao-Yun1，CHI Quan-Yuan1，ZHAO Mei-Ting2，WANG Zeng-Xia2

(1. Department of Horticulture，Beijing Vocation College of Agriculture，Beijing 102442, China；2. Institute of Plant Protection, Chinese Academy of Agricultural Sciences, Beijing 100193, China)

The nutrition status of intermediate hosts is the main factor affecting the breeding effect of parasitic wasps．It is necessary to process the intermediate hosts in order to block the development，and to ensure that it meets the development of the offspring. Therefore, it is special significance to explore the suitable treatment temperature and time. Under the condition of 0℃ and 2℃ studying the relationship among nutrient substance ofTenebriomolitorpupae changes with time，such as protein，total sugar，trehalose，glycogen increased first and then decreased, harden degree of intermediate hosts’ cuticular layer and parasite rate ofSclerodermaguani. It is clearly that the parasite rate ofSclerodermaguanihas a positive correlation with the content of intermediate hosts’ nutrient substance, and has a negative correlation with harden degree of intermediate hosts’ cuticular layer. In the end, it is advised that 2℃ as the suitable temperature to treat intermediate host, and the time for treatment is 24 h.

Sclerodermaguani；pupae ofTenebriomolitor；cold storage；physiology and biochemistry；parasite rate

北京市農業(yè)基金科技項目(20140144)；北京農業(yè)職業(yè)學院科研項目(XY-DKC-14-06)

胡尊瑞，男，1985年生，山東臨沂人，講師，博士，主要從事有害生物防治研究，E-mail：huzunrui001@163.com

Received：2016-02-04；接受日期Accepted：2016-04-12

Q965;S476

A

1674-0858(2017)01-0187-06

胡尊瑞，吳曉云，遲全元，等.低溫處理黃粉蟲蛹對管氏腫腿蜂寄生效能的影響[J].環(huán)境昆蟲學報，2017,39(1):187-192.