李 濤,李文哲,王霖濤,薛瑞冰,孫欒彪,張雨薇,姬新穎
1.河南省核蛋白基因調(diào)控國際聯(lián)合實驗室,河南 開封475004; 2.河南大學(xué) 基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,河南 開封475004
白血病(Leukemia),亦稱作血癌,是一種造血系統(tǒng)的惡性腫瘤,也是我國最常見的惡性腫瘤之一。白血病患者過分生產(chǎn)不成熟的白細(xì)胞,妨害骨髓的正常工作,使得骨髓生產(chǎn)其他血細(xì)胞的功能降低,其結(jié)果嚴(yán)重威脅患者的生命安全[1-4]。結(jié)合臨床癥狀在患者的外周血中檢出白血病細(xì)胞是確診白血病的診斷依據(jù)。制作結(jié)構(gòu)清晰的白血病血涂片標(biāo)本對臨床診斷和組織學(xué)教學(xué)具有重要意義[5-7]。由于白血病患者血液中含有過多的未成熟白細(xì)胞(即白血病細(xì)胞),實際操作中染色效果多不理想, 影響觀察分類與診斷,為尋找較好的血涂片染色方法,我們將四種染色方法用于白血病標(biāo)本制作,并對染色效果進行比較觀察,旨在得到更好的血涂片染色效果。
恒溫保溫箱,電子秤,秒表,顯微鏡,載玻片,蓋玻片,濾紙,移液器,漏斗,玻璃棒,乳缽乳棒,燒杯,儲存瓶,膠頭滴管,中性樹膠,棉簽。
1.2.1 Wright氏染液 參考《血液細(xì)胞學(xué)》(第2版)8配制。稱取干燥的Wright氏染料0.1 g,甲醇(AR)60 mL。將Wright氏染料放置乳缽內(nèi),用乳棒輕輕研磨成粉末;加少許甘油或甲醇溶解研磨,使染料在乳缽內(nèi)徹底成光滑細(xì)致的粉末而無染料粉粒沉著,再加較多量甲醇研磨呈一面鏡光亮;靜置片刻,將上層液體倒入一清潔棕色瓶內(nèi)貯存;乳缽內(nèi)再加甲醇研磨,重復(fù)數(shù)次,直至乳缽內(nèi)染料及甲醇用完為止。搖勻,過濾,濾液密封瓶口,存室溫暗處,儲存愈久,則染料溶解、分解就越好。
1.2.2 Giemsa氏染液[8]配制方法:取Giemsa氏色素染料1 g加入66 mL甘油,混勻,60 ℃保溫溶解2 h,再加入66 mL甲醇混勻,放置24 h,過濾,貯存在棕色瓶內(nèi),即配成Giemsa氏染液原液。此原液用前用PBS(pH 6.8)稀釋10倍左右就可以使用此為Giemsa氏染液工作液。工作液可室溫保存1 mon左右。
1.2.3 磷酸鹽緩沖液(PBS 6.8) 取0.2 mol/L磷酸二氫鉀溶液250 mL,加0.2 mol/L氫氧化鈉溶液118 mL,用蒸餾水稀釋至1 000 mL,即得。
白血病血標(biāo)本取樣于河南大學(xué)第一附屬醫(yī)院血液病科,診斷為慢性粒細(xì)胞白血病患者。使用移液器吸取混勻血樣,滴取2 μL血液于潔凈載玻片上,用推片在血樣前方接觸血滴,使血滴均勻呈一直線,推片與載玻片呈45°角,用力均勻?qū)⒀瓮崎_,自然晾干。大量制作教學(xué)標(biāo)本可一次推出所需血涂片,晾干待用。
1.4.1 Wright氏染色法 Wright氏染色法參考《實用組織學(xué)技術(shù)》(第2版)9。將3片血涂片平放在染色架上,分別加Wright氏染液2~3滴,使之覆蓋整個血涂片,染色0.5~1.0 min;滴加等量或稍多的新鮮蒸餾水,與Wright氏染液混勻分別染色10、15、20 min,然后用自來水緩慢從血涂片一端沖洗去染液(注意:勿先倒去染液或直接對血涂片沖洗),待自然干燥后,中性樹膠封片,即可放置血涂片于顯微鏡高倍鏡下進行觀察。
1.4.2 Giemsa氏染色法 Giemsa氏染色法參考文獻[8]。Giemsa氏原液用前用PBS(pH 6.8)稀釋10倍左右為Giemsa氏工作染液,此工作染液需要新鮮配制。將3片標(biāo)本血涂片用無水甲醇固定3 min,滴加Giemsa氏工作液,將血涂片分別染色10、15、20 min。用自來水緩慢從血涂片一端沖洗去染液(注意:勿先傾倒去染液或直接對血涂片沖洗),置于空氣中干燥,用中性樹膠加蓋玻片封片,于顯微鏡高倍鏡下進行觀察。
1.4.3 Wright氏-Giemsa氏混合染色法 Wright氏-Giemsa氏混合染色法參考文獻[9]。將Wright氏染液∶Giemsa氏工作染液∶磷酸鹽緩沖液(PBS 6.8)按照5∶1∶6體積混合均勻。將3片血涂片平放在染色架上,甲醇固定2~5 min,甩干;加混合染液數(shù)滴,使之覆蓋整個血涂片,分別染色10、15、20 min,取出涂片,然后用自來水緩慢從血涂片一端沖洗去染液(注意:勿先傾倒去染液或直接對血涂片沖洗)。置于空氣中自然干燥,用中性樹膠及蓋玻片封片,放置于顯微鏡高倍鏡下進行觀察。
1.4.4 Wright氏-Giemsa氏分步聯(lián)合染色法 將3張血涂片平放在染色架上,首先加Wright氏染液2~3滴,使覆蓋整個血涂片,固定0.5~1.0 min,滴加等量或稍多的新鮮蒸餾水,與染液混勻分別染色10、15、20 min,用自來水緩慢從血涂片一端沖洗去染液。然后滴加Giemsa氏工作染液,將血涂片分別染色10、15、20 min。取出血涂片,再一次用自來水緩慢從血涂片一端沖洗去染液(注意:勿先倒去染液或直接對血涂片沖洗),置于空氣中自然干燥,用中性樹膠加蓋玻片封片,置于顯微鏡高倍鏡下進行觀察。
用Wright氏染色法分別染色10、 15、20 min,紅細(xì)胞呈橘黃色,白血病細(xì)胞核呈紫紅色,細(xì)胞質(zhì)顆粒呈淡藍(lán)色。染色時間無論長短細(xì)胞核均易著色,見圖1。
用pH 6.8的磷酸鹽緩沖液(PBS)配制的工作液,分別染色10、15、20 min,紅細(xì)胞呈藍(lán)灰色,白血病細(xì)胞核呈紫藍(lán)色,中性顆粒淺紫色;而pH<6.8和染色時間較短者,則核難著色,pH>6.8則核呈藍(lán)色,見圖2。
分別染色10、 15、20 min。紅細(xì)胞呈灰黃色或灰色,白血病細(xì)胞核呈紫紅色,細(xì)胞質(zhì)顆粒呈灰藍(lán)色或淡紫色,染色時間無論長短則細(xì)胞核易著色,細(xì)胞核結(jié)構(gòu)清晰,色澤艷麗,見圖3。
分別染色10、 15、20 min。紅細(xì)胞紫粉色,白血病細(xì)胞核呈紫紅色,細(xì)胞質(zhì)顆粒呈淡藍(lán)色;細(xì)胞核結(jié)構(gòu)清晰,色澤明亮透徹干凈,富有立體感。染色時間短(10 min)則細(xì)胞核難著色,見圖4。
血涂片是血液細(xì)胞學(xué)檢查的基本方法,應(yīng)用極廣,特別是對各種血液病的診斷有很大價值。但血片制備和染色不良,常使細(xì)胞鑒別發(fā)生困難,甚至導(dǎo)致錯誤結(jié)論。例如,血膜過厚細(xì)胞重疊縮小,血膜太薄白細(xì)胞多集中于邊緣,因此,染色良好的血片是血液學(xué)檢查的基本技術(shù)之一[10-12]。
本研究所采用的四種染色法,各有優(yōu)缺點:Wright氏染色法的優(yōu)點是染色時間短,結(jié)果出現(xiàn)快,較適于臨床檢驗,但其染色過程不易掌握、易污染是其缺點;Giemsa氏染色法的染色液不易污染是其最大的優(yōu)點,但是,染色效果對染液pH值要求高,較易偏堿,不易控制,經(jīng)過反復(fù)多次試驗,以pH 6.8染色效果最好(圖2)。Wright氏-Giemsa氏混合染色法雖能對前兩種染色法起互補作用,但對紅細(xì)胞著色不均勻,且染液變性快、易污染,也不適于教學(xué)標(biāo)本染色(圖3)。Wright氏-Giemsa氏分步聯(lián)合染色法的優(yōu)點是紅細(xì)胞呈紫粉色,白血病細(xì)胞核呈紫紅色,細(xì)胞質(zhì)顆粒細(xì)膩呈淡藍(lán)色,細(xì)胞核結(jié)構(gòu)清晰,色澤明亮透徹干凈,富有立體感,著色保持時間久;而缺點是染液變性快、易污染,適合新鮮配制,即適用于大批量制作組織病理學(xué)和組織胚胎學(xué)教學(xué)用片(圖4)。
綜上所述,我們的體會是:血液標(biāo)本一定要新鮮;四種血涂片滴加染液后,不要直接傾倒去染液,否則易使染液沉淀在血涂片上,影響結(jié)果觀察;直接用自來水沖洗比用蒸餾水或緩沖液沖洗更方便、徹底和節(jié)約。
圖1 不同時間Wright氏染色結(jié)果比較
圖2 不同時間Giemsa氏染色結(jié)果比較
圖3 不同時間Wright氏-Giemsa氏混合染色結(jié)果比較
圖4 不同的Wright氏-Giemsa氏分步聯(lián)合染色結(jié)果比較
[1] Widick P, Winer E S. Leukocytosis and Leukemia[J]. Prim Care, 2016,43(4):575-587.
[2] Onuoha C, Arshad J, Astle J, et al. Novel Developments in Leukopenia and Pancytopenia[J]. Prim Care, 2016,43(4):559-573.
[3] Lokadasan R, Prem S, Koshy S M, et al. Hypercalcaemia with disseminated osteolytic lesions: a rare presentation of childhood acute lymphoblastic leukaemia[J]. Ecancermedicalscience, 2015,26(9):542.
[4] Rabizadeh E, Pickholtz I, Barak M, et al. Acute leukemia detection rate by automated blood count parameters and peripheral smear review[J]. Int J Lab Hematol, 2015,37(1):44-9.
[5]RabizadehE,PickholtzI,BarakM,etal.Historicaldatadecreasecompletebloodcountreflexbloodsmearreviewrateswithoutmissingpatientswithacuteleukaemia[J].JClinPathol, 2013,66(8):692-694.
[6]GhodkeKA,PatkarNV,SubramanianPG,etal.Biclonalchroniclymphocyticleukemia:Astudyoftwocasesandreviewofliterature[J].IndianJPatholMicrobiol, 2017,60(1):84-86.
[7]BankerM,JoshiB,ShahP,etal.Embryocryopreservationinacaseofacutepromyelocyticleukemia,incidentallydiagnosedduringovarianstimulationforin-vitrofertilization[J].JHumReprodSci, 2014,7(3):224-226.
[8] 王鳳計.血液細(xì)胞學(xué)[M].2版.天津:科學(xué)技術(shù)出版社,1990,1: 6-8.
[9] 杜桌民.實用組織學(xué)技術(shù)[M].2版.北京:人民衛(wèi)生出版社,1998,4:92-95.
[10]MatsuoH,ShigaS,ImaiT,etal.Purificationofleukemicblastcellsfrombloodsmearsusinglasermicrodissection[J].IntJHematol, 2017,106(1):55-59.
[11]GulatiG,LyV,UppalG,etal.FeasibilityofCountingSmudgeCellsasLymphocytesinDifferentialLeukocyteCountsPerformedonBloodSmearsofPatientsWithEstablishedorSuspectedChronicLymphocyticLeukemia/SmallLymphocyticLymphoma[J].LabMed, 2017,48(2):137-147.
[12]NarayananS.Clinical,hematological,andcytogeneticprofileofadultmyelodysplasticsyndromeinatertiarycarecenter[J].JBloodMed, 2017 ,23(8):21-27.