秦冠南 王帆 伍國鋒△
(1. 貴州醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院急診科,貴州 貴陽 550004;2.貴州省人民醫(yī)院,貴州 貴陽 550002)
△通信作者
腦出血家犬微創(chuàng)血腫清除術(shù)時間窗研究
秦冠南1王帆2伍國鋒1△
(1. 貴州醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院急診科,貴州 貴陽 550004;2.貴州省人民醫(yī)院,貴州 貴陽 550002)
目的 通過動物實驗來評價微創(chuàng)血腫清除術(shù)的最佳時間窗。方法 將25只家犬隨機分為模型組(n=5)和微創(chuàng)組(n=20),抽取自體動脈血注入基底節(jié)制作腦出血模型,造模成功后模型組內(nèi)科治療,微創(chuàng)組又隨機分為6 h、12 h、18 h、24 h四個亞組,每組5只家犬,分別于造模成功后6 h、12 h、18 h、24 h行微創(chuàng)手術(shù),兩組均于造模成功后及14d后進行神經(jīng)功能缺損評分,并提取血腫周圍腦組織,檢測血腫周圍腦組織血腦屏障及腦組織含水量。結(jié)果 (1)血腦屏障通透性:與模型組相比,各微創(chuàng)組血腦屏障通透性降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);微創(chuàng)組內(nèi)與6 h組相比,12 h、18 h、24 h組差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);12 h、18 h、24 h組任兩組間相比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。(2)腦含水量:與模型組相比,6 h、12 h、18 h組顯著下降(P<0.01),24 h組差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);與6 h組相比,12 h組差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),18 h、24 h組差異顯著(P<0.01);12 h、18 h、24 h組任兩組相比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。(3)神經(jīng)功能缺損評分:14 d后微創(chuàng)6 h、12 h、18 h、24 h組神經(jīng)功能缺損評分與模型組相比均降低(P<0.05);其中微創(chuàng)6 h組評分較12 h、18 h、24 h組更低(P<0.05);微創(chuàng)12 h、18 h、24 h組任兩組間相比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。結(jié)論 腦出血后24 h內(nèi),尤其是6 h內(nèi)行微創(chuàng)血腫清除術(shù)能降低血腦屏障通透性,減輕腦水腫,改善神經(jīng)功能。
腦出血; 微創(chuàng)血腫清除術(shù); 時間窗; 血腦屏障; 腦含水量
腦出血又稱自發(fā)性腦出血,系指顱內(nèi)或全身疾病引起腦實質(zhì)內(nèi)出血,是一種發(fā)病率、死亡率及致殘率均較高的疾病。導(dǎo)致腦出血死亡的主要原因是血腫占位效應(yīng)和繼發(fā)性腦水腫。目前,越來越多的證據(jù)提示腦水腫在腦出血后繼發(fā)性腦損傷中起著重要作用,特別是在遲發(fā)性神經(jīng)功能惡化患者中,更多是因為腦水腫而不是腦出血本身導(dǎo)致病情惡化[1]。而血腦屏障(blood brain barrier,BBB)通透性的增加在腦出血后腦水腫的發(fā)生中起著重要的作用[2-3]。因此,降低血腦屏障通透性、控制腦水腫在腦出血治療中有著重要意義。近年來廣泛開展的微創(chuàng)血腫清除術(shù)采用局麻,手術(shù)時間短,損傷小,效果良好,但血腫清除后腦組織的病理生理變化尚未完全闡明,關(guān)于微創(chuàng)手術(shù)時機的選擇也有不同的觀點[4]。本實驗以家犬為對象,通過復(fù)制腦出血的動物模型,并選擇不同時間對家犬腦出血模型進行微創(chuàng)手術(shù),以血腫周圍腦組織血腦屏障通透性、腦組織含水量、神經(jīng)功能評分為指標(biāo),觀察不同時間段微創(chuàng)手術(shù)的療效,從而探討微創(chuàng)顱內(nèi)血腫清除術(shù)治療腦出血的最佳時間窗。
1.1 實驗材料
(1)實驗動物:健康家犬25只,體質(zhì)量(10±2) kg,雌雄不限,由貴州醫(yī)科大學(xué)動物中心提供,實驗過程中對動物的處置符合動物倫理學(xué)要求。(2)主要實驗器材與試劑:DY-1型立體定向儀(天津醫(yī)療器械科技研究所),YL-1型一次性使用顱內(nèi)血腫穿刺針(北京萬特福公司),伊文思藍(EB,Sigma公司,美國) 。
1.2 動物模型的制備
術(shù)前12 h禁食,4 h禁水。術(shù)前用3%戊巴比妥對家犬進行麻醉,麻醉劑用量1 mL/kg,麻醉生效后,頭部備皮,通過固定雙耳道及犬牙,將其固定于立體定向儀上,并保持水平及垂直刻度對稱,依照圖譜[5]選擇左側(cè)基底節(jié)區(qū)為造模部位。以雙耳框中點連線為坐標(biāo)零平面,顱中縫為縱坐標(biāo)向前21 mm,中線左開10 mm為穿刺點。骨科電鉆驅(qū)動下,用YL-1型一次性顱內(nèi)血腫穿刺針垂直鉆透顱骨,一次性注射器取股動脈血3 mL,不抗凝,立即換用有刻度的穿刺針頭,沿定向孔垂直進針1.8 cm,緩慢注血,時間大于5 min,注血完畢后留針10 min,緩慢退針后局部加壓5 min,骨蠟封閉顱孔,消毒、縫合、包扎。造模2 h后行頭顱CT及MRI,見左側(cè)基底節(jié)區(qū)出血灶,示造模成功(圖1)。凡不符合成功標(biāo)準(zhǔn)者通過隨機抽樣原則補齊動物并重新造模。
1.3 實驗動物分組
造模成功后將家犬隨機分為模型組(n=5)和微創(chuàng)組(n=20)。(1)模型組造模成功后給予內(nèi)科治療,20%甘露醇1g/ kg-1·d-1靜脈滴注;(2)微創(chuàng)組又隨機分為6 h、12 h、18 h、24 h組四個亞組,每組5只,分別于造模成功后6 h、12 h、18 h、24 h行微創(chuàng)手術(shù)。兩組家犬均于造模后連續(xù)3d肌注青霉素預(yù)防感染。
1.4 家犬腦出血微創(chuàng)血腫清除術(shù)
微創(chuàng)組四個亞組分別于造模成功后6 h、12 h、18 h、24 h再次將家犬麻醉固定于定位儀上,局部消毒,沿原進針路徑及深度將YL-1顱內(nèi)血腫穿刺針置入血腫腔,連接沖洗管及引流管,以滅菌生理鹽水反復(fù)沖洗血腫腔,見暗紅色血性液體及血凝塊流出,每次沖洗3 mL ,沖洗2~3次后引流液轉(zhuǎn)為清亮,夾閉引流管,以尿激酶1萬U溶解在3 mL滅菌生理鹽水中由沖洗管注入,夾閉引流管,半小時后開放[6]。按上述方法每日血腫腔注入尿激酶及生理鹽水沖洗血腫腔1次,連續(xù)3 d后拔出穿刺針,局部骨蠟封閉顱孔、消毒、包扎。微創(chuàng)手術(shù)時需注意無菌操作,沖洗時要先排盡空氣,每次沖洗過程中需注意出入平衡。微創(chuàng)組家犬分別于微創(chuàng)術(shù)前、微創(chuàng)術(shù)后7 d、微創(chuàng)術(shù)后14 d行頭顱MRI,進行前后對比觀察血腫情況,確保血腫清除成功。見圖2-4。
1.5 評價指標(biāo)
1.5.1 血腦屏障通透性 應(yīng)用伊文思藍(EB)作為示蹤劑檢測血腦屏障的通透性,在各組家犬?dāng)囝^取腦前2 h,經(jīng)足部靜脈按2 mL/kg注入2%EB,循環(huán)2 h后,取血腫周圍腦組織,電子天平秤取腦組織濕重后,加入4 mL 甲酰胺, 54 ℃水浴24 h后,勻漿離心5 min,分光光度計(λ=632 nm)測定上清液,紫外分光光度儀比色,濾光波長632 nm,測吸光度,參照李東亮[7]的制作方法建立標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算EB含量。
1.5.2 腦組織含水量 腦組織含水量的測定采用干-濕重法測定,動物迅速斷頭取腦后,取左側(cè)大腦半球,電子天平先稱取濕重,放入電熱恒溫干燥箱100 ℃烘烤48 h,再稱取干重,腦組織含水量=(濕重-干重)/濕重×100% 。
1.5.3 神經(jīng)功能評分 在造模成功3 h后及14 d后對各組家犬進行神經(jīng)功能缺損評分評價,根據(jù)Purdy神經(jīng)功能缺損評分標(biāo)準(zhǔn),對犬的意識、行為、轉(zhuǎn)頭、轉(zhuǎn)圈、偏盲等情況進行評分并記錄其得分,總得分最低為2分,表示完全正常,無神經(jīng)功能缺損;總得分最高為11分,表示動物意識喪失或死亡;得分越高,癥狀越重。
1.6 統(tǒng)計學(xué)分析
各組家犬腦組織EB含量及含水量見表1。
表1 各組EB含量及腦組織含水量±s)
注:(1)EB含量: 與模型組相比,aP<0.05;與微創(chuàng)6 h組相比,bP<0.05;微創(chuàng)12 h、18 h、24 h組任兩組間比較P>0.05;(2)腦組織含水量: 與模型組相比,cP<0.01,dP<0.05;與6 h組相比,eP<0.05,fP<0.01;微創(chuàng)12 h、18 h、24 h組任兩組間比較P>0.05。
各組家犬神經(jīng)功能缺損評分結(jié)果:兩組家犬在造模成功后Purdy評分差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。14 d后,與模型組比較,微創(chuàng)各亞組的Purdy評分均低于模型組(P<0.05),其中6 h組降低最明顯,6 h組與12 h、18 h、24 h組評分比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),12 h、18 h、24 h組任兩組相比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見表2。
表2 各組神經(jīng)功能缺損評分±s)
注:治療前各組評分比較P>0.05;治療后,與模型組比較,微創(chuàng)各亞組評分均降低,P<0.05;微創(chuàng)組中6 h組較12 h、18 h、24 h評分更低,P<0.05;微創(chuàng)12 h、18 h、24 h組間評分差異無統(tǒng)計學(xué)意義,P>0.05。
本實驗中,我們在以往腦出血模型的基礎(chǔ)上[7],利用立體定位技術(shù),參照圖譜,采用注入自體非抗凝動脈血的方法,成功地復(fù)制了基底節(jié)區(qū)出血動物模型。家犬具有發(fā)達的神經(jīng)系統(tǒng),其腦組織解剖及腦血管病后病理生理變化接近人類,實驗動物穩(wěn)定性好[8-9]。因此,本實驗可模擬人類腦出血后造成的腦水腫和神經(jīng)功能缺損。
腦出血后出現(xiàn)的腦水腫是導(dǎo)致患者神經(jīng)功能惡化甚至死亡的主要原因之一。從術(shù)后2 h、7 d、14 d頭顱MRI結(jié)果可見,腦出血術(shù)前血腫占位效應(yīng)明顯,周圍組織受壓,中線偏移,通過微創(chuàng)手術(shù),術(shù)后7 d時血腫已基本清除,MRI上已未見水腫,術(shù)后14 d時血腫已完全清除,血腫對周圍組織的壓迫已明顯減輕。從微創(chuàng)組腦組織含水量與模型組比較也可以看到,微創(chuàng)各組腦組織含水量均較模型組降低。影像學(xué)及腦組織含水量均提示微創(chuàng)手術(shù)能夠有效減輕出血后腦水腫的發(fā)生、發(fā)展。這與Mould WA等的研究結(jié)果[10]一致。
腦出血后腦水腫發(fā)生機制非常復(fù)雜,至今仍未完全闡明,血腦屏障破壞、凝血酶、炎性因子等都可能影響腦水腫的形成[11]。作為維持中樞神經(jīng)系統(tǒng)內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定的重要結(jié)構(gòu),血腦屏障的結(jié)構(gòu)和功能障礙是腦出血后腦水腫發(fā)生、發(fā)展的主要病理基礎(chǔ)。腦出血后,炎性因子、Hb分解產(chǎn)物、凝血酶和基質(zhì)金屬蛋白酶等因素均可導(dǎo)致BBB的破壞。本實驗結(jié)果顯示,微創(chuàng)組家犬腦組織EB含量均低于模型組,說明微創(chuàng)手術(shù)能減輕腦出血后血腦屏障的破壞。
關(guān)于腦出血手術(shù)的治療時機,目前仍無統(tǒng)一認識。由于出血部位、出血量、基礎(chǔ)疾病等不同,手術(shù)時機的選擇仍有爭議,但多數(shù)學(xué)者認為超早期,即病后6 h內(nèi)手術(shù)能提高療效并改善預(yù)后。有研究顯示,腦出血早期(6 h以內(nèi)),血腫周圍腦組織開始出現(xiàn)輕度損傷,隨著時間的推移逐漸加重,至72 h損傷達高峰,并與腦出血后血腫周圍組織的炎性反應(yīng)、氧自由基反應(yīng)、細胞凋亡的峰期基本一致[12],而清除血腫則能減輕出血后細胞毒性物質(zhì)的產(chǎn)生及腦水腫的發(fā)生[13],我們的研究結(jié)果也證實了這一點。本實驗中,腦出血后12 h、18 h、24 h行微創(chuàng)手術(shù)術(shù)后神經(jīng)功能缺損評分雖低于模型組,但均高于微創(chuàng)6h組,且微創(chuàng)12 h、18 h、24 h組間比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義,而血腦屏障通透性及腦組織含水量的改變與神經(jīng)功能改變一致,提示超早期(6 h)行微創(chuàng)手術(shù)能通過減輕血腦屏障的破壞及腦水腫的發(fā)生,減輕神經(jīng)功能缺損,改善預(yù)后。而12 h、18 h、24 h行微創(chuàng)手術(shù)雖然也能減少血腦屏障的破壞、減輕腦水腫,但此時腦組織已出現(xiàn)不可逆損害,療效及預(yù)后較超早期(6 h)手術(shù)差。
本實驗結(jié)果表明,腦出血后24 h內(nèi)行微創(chuàng)血腫清除術(shù),能降低出血后血腦屏障通透性及腦水腫,從而減輕繼發(fā)性腦損傷,改善神經(jīng)功能預(yù)后。手術(shù)時機的選擇應(yīng)在6 h內(nèi)進行,這樣有利于神經(jīng)功能的恢復(fù)。
[1] Xi G,Keep RF,Hoff JT.Pathophysiology of brain edema formation[J].Neurosurg Clin N Am,2002,13(3):371-383.
[2] Keep RF,Xiang J,Ennis SR,et al. Blood brain barrier function in intracerebral hemorrhage[J].Acta Neurochir Suppl,2008,105:73-77.
[3] Keep RF,Zhou N,Xiang J,et al.Vascular disruption and blood-brain barrier dysfunction in intracerebral hemorrhage[J].Fluids Barriers CNS,2014,11(10):18.
[4] Sanmdani U,Rohde V.A review of stereotaxy and lysis for intraeranial hemorrhage[J].Neurosurgical Review,2009,32(1):15-21.
[5] 婁朋遜,主編.常用實驗動物腦立體定位圖譜[M].上海:科學(xué)出版社,1980:344-391.
[6] 李東亮,趙紅崗,齊偉,等.孕酮對局灶腦缺血再灌注大鼠血-腦脊液屏障變化的影響[J].中風(fēng)與神經(jīng)疾病雜志,2001,11(2):73-74.
[7] 羅興梅,伍國鋒,仲偉斌,等.微創(chuàng)清除顱內(nèi)血腫對家犬腦出血模型灶周腦組織的影響[J].中華急診醫(yī)學(xué)雜志,2010,19(1):57-59.
[8] 劉圣 施海彬 胡衛(wèi)星,等.畢格犬和雜種犬腦血管及腦組織的對照研究[J].介入放射學(xué)雜志,2011,20(9):717-722.
[9] Rink C, Christoforidis G, Abduljalil A, et a1. Minimally invasive neuroradiologic model of preclinical transient middle cerebral artery occlusion in canines[J].PNAS, 2008, 105:14100-14105.
[10] Mould WA ,Carhuapoma JR,Muschelli J,et al.Minimally invasive surgery plus recombinant tissue-type plasminogen activator for intracerebral hemorrhage evacuation decreases perihematomal edema[J].Stroke,2013,44(3):627-634.
[11] Xi G,Keep RF,Hoff JT.Mechanisms of brain injury after intracerebral haemorrhage [J].Lancet Neurol,2006,5(1):53-63.
[12] 曹英肖,王風(fēng)聚,劉振波,等. 腦出血后不同時間血腫周圍病理及超微結(jié)構(gòu)變化的研究[J].中華神經(jīng)外科雜志,2013,29(8):829-831.
[13] Morgenstern LB,Hemphill JC,Anderson C,et al.American Heart Association Stroke Council and Council on Cardiovascular Nursing.Guidelines for the management of spontaneous intracerebral hemorrhage: a guideline for healthcare professionals from the American Heart Association/American Stroke Association[J].Stroke,2010,41(9):2108-2129.
R-332
A
1000-744X(2016)08-0822-04
2016-03-29)