潘偉康,余 輝,王懷杰,鄭百俊,郭青青,郭正團,高 亞,李 鵬
(1. 西安交通大學(xué)第二附屬醫(yī)院小兒外科,陜西西安 710004;2. 西安交通大學(xué)醫(yī)學(xué)部,陜西西安 710061)
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◇臨床研究◇
腎母細胞瘤中ERCC1、TUBB3、TOP2AmRNA的表達及臨床意義
潘偉康1,余輝1,王懷杰1,鄭百俊1,郭青青2,郭正團1,高亞1,李鵬1
(1. 西安交通大學(xué)第二附屬醫(yī)院小兒外科,陜西西安710004;2. 西安交通大學(xué)醫(yī)學(xué)部,陜西西安710061)
目的探討核苷酸切除修復(fù)交叉互補基因(excisionrepaircrosscomplementation1,ERCC1)、3型β微管蛋白編碼基因(ClassⅢβ-tubulin,TUBB3)和DNA拓撲異構(gòu)酶Ⅱα(TopoisomeraseⅡA,TOP2A)mRNA在小兒腎母細胞瘤組織中的表達及臨床意義。方法收集18例腎母細胞瘤組織標本及14例癌旁組織標本,通過分支-DNA液相芯片法檢測標本中ERCC1、TUBB3、TOP2AmRNA的表達水平,并分析上述基因表達與腎母細胞瘤臨床病理的關(guān)系。結(jié)果腎母細胞瘤組織中ERCC1、TUBB3和TOP2A高表達率分別為44.4%、50.0%和66.7%,均顯著高于癌旁組織的7.1%、7.1%和14.3%,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。ERCC1高表達率與腎母細胞瘤臨床分期和病理類型有關(guān)(P<0.05),TOP2A高表達率與腎母細胞瘤臨床分期相關(guān)(P<0.05)。結(jié)論小兒腎母細胞瘤組織中ERCC1、TUBB3和TOP2AmRNA表達高于癌旁組織,可能參與腎母細胞瘤的發(fā)生發(fā)展過程。
腎母細胞瘤;ERCC1;TUBB3;TOP2A
腎母細胞瘤也稱為Wilms瘤,是最常見的小兒實體腫瘤之一,其發(fā)病率約為兒童全部腫瘤的6%[1]。通過手術(shù)切除聯(lián)合術(shù)后化療和放療等綜合治療途徑,可使腎母細胞瘤患兒的5年生存率達到87%[2]。但目前腎母細胞瘤的治療仍面臨諸多問題,如腫瘤的發(fā)生發(fā)展機制的闡明、多藥耐藥現(xiàn)象的克服、化療毒副作用的降低和治療有效率的提高等。隨著分子生物學(xué)的發(fā)展,在肺癌、結(jié)直腸癌、乳腺癌等多種成人實體腫瘤中發(fā)現(xiàn),核苷酸切除修復(fù)交叉互補基因(excisionrepaircross-complementinggroup,ERCC1)、3型β微管蛋白編碼基因(ClassⅢβ-tubulin,TUBB3)和DNA拓撲異構(gòu)酶Ⅱα(topoisomeraseⅡA,TOP2A)mRNA的異常表達與腫瘤的發(fā)生發(fā)展、化療藥物的療效密切相關(guān)[3-6]。但有關(guān)ERCC1、TUBB3、TOP2A基因在正常腎臟及小兒腎母細胞瘤中的表達鮮見報道。為此本研究擬通過分支DNA液相芯片技術(shù),測定腫瘤組織和癌旁組織中ERCC1、TUBB3和TOP2AmRNA的表達,并分析ERCC1、TUBB3和TOP2AmRNA表達水平與腎母細胞瘤病理學(xué)參數(shù)的關(guān)系,為探索小兒腎母細胞瘤的發(fā)生發(fā)展機制及個體化綜合治療方案的選擇和精準藥物療效預(yù)測提供參考依據(jù)。
1.1臨床資料收集西安交通大學(xué)第二附屬醫(yī)院小兒外科2014年1月~2015年11月經(jīng)影像學(xué)檢查、實驗室檢查及手術(shù)后病理證實的腎母細胞瘤組織標本18例。男性13例,女性5例;年齡0.5~8歲,中位年齡2.3歲。所有病例均為初治病例,均未接受放化療。同期取距離腫瘤組織2cm處癌旁組織18例(4例樣本不合格,未入組)作為對照組。
1.2方法1.2.1樣本制備腫瘤組織及癌旁組織用100mL/L甲醛溶液固定16~24h,乙醇洗滌。
1.2.2檢測方法采用分支DNA液相芯片技術(shù),同時檢測樣本中ERCC1、TUBB3、TOP2AmRNA表達,由廣州益善醫(yī)學(xué)檢驗所檢測。與PCR方法相比,該技術(shù)不需要進行RNA抽提及逆轉(zhuǎn)錄。具體操作步驟為:①56 ℃用裂解液裂解樣本2h;②加入緩沖液、探針-微球和支持延伸探針,55 ℃震蕩孵育過夜;③次日將孵育板置于磁力架靜置1min,去上清液;④洗滌液震蕩洗滌1min,于磁力架上靜置1min,去上清液,重復(fù)3次;⑤加入擴增延伸探針和標記探針,50 ℃下震蕩反應(yīng)1h;⑥磁力架上靜置1min,去上清液,洗滌2次;⑦加入鏈霉親和素-藻紅蛋白,50 ℃震蕩30min;⑧靜置于磁力架上1min,去上清液,重復(fù)洗滌2次。⑨加洗滌液震蕩洗滌5min,Luminex閱讀儀讀取中位熒光值(MFI),經(jīng)廣州益善醫(yī)學(xué)檢驗所相關(guān)數(shù)據(jù)分析軟件分析,得到最終結(jié)果。
1.3結(jié)果判定ERCC1、TUBB3、TOP2AmRNA表達水平以百分率表示?!?5%為高表達,60%~75%為中偏高表達,40%~60%為中表達,40%~25%為中偏低表達,小于25%為低表達。mRNA表達水平可以反映藥物療效。將ERCC1和TUBB3高表達、中偏高表達記為高表達組,中表達、中偏低表達和低表達記為中低表達組。將TOP2A高表達、中偏高表達和中表達記為高表達組,將中偏低表達和低表達記為中低表達組。
1.4統(tǒng)計學(xué)分析所有數(shù)據(jù)分析均使用SPSS19.0統(tǒng)計軟件完成,采用Fisher確切概率法檢驗進行統(tǒng)計分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1一般結(jié)果分析18例入組患兒中,8例患兒術(shù)前出現(xiàn)肉眼血尿,4例患兒術(shù)中發(fā)現(xiàn)腎靜脈或下腔靜脈中有瘤栓,腫瘤質(zhì)量約220~870g。無合并其他系統(tǒng)畸形及綜合征。左側(cè)8例,右側(cè)10例,均為單側(cè)腎母細胞瘤。病理類型包括預(yù)后良好(FH)型10例(圖1A),預(yù)后不良(UH)型8例(圖1B)。按照SIOP分期系統(tǒng),Ⅰ~Ⅱ期11例,Ⅲ~Ⅳ期7例,Ⅴ期0例。
圖1預(yù)后良好型(A)及預(yù)后不良型(B)腎母細胞瘤HE染色
Fig.1HEstainingofnephroblastomawithFH(A)andnephroblastomawithUH(B) (×200)
2.2ERCC1、TUBB3、TOP2AmRNA在腫瘤組織和癌旁組織中的表達在腫瘤組織及癌旁組織中,ERCC1、TUBB3、TOP2AmRNA表達結(jié)果見表1。結(jié)果顯示:腎母細胞瘤組織中ERCC1高表達率為44.4%,明顯高于癌旁組織7.1%(P<0.05)。TUBB3在腫瘤組織中高表達率為50%,在癌旁組織中高表達率為7.1%,兩者差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。TOP2A在腫瘤組織中高表達率(66.7%)明顯高于癌旁組織(14.3%),差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。
2.3ERCC1、TUBB3、TOP2AmRNA表達與腎母細胞瘤臨床病理的關(guān)系在Ⅲ/Ⅳ期患兒中,ERCC1mRNA高表達率為85.7%,顯著高于Ⅰ/Ⅱ期的18.2%(P<0.05)。UH型高表達率為87.5%,高于FH型的10%(P<0.05)。表明ERCC1mRNA高表達率與臨床分期和組織類型有關(guān),但是與性別、年齡無關(guān)(P>0.05,表2)。
TUBB3mRNA高表達率與性別、年齡、臨床分期和組織類型均無關(guān)(P>0.05,表2)。
晚期(Ⅲ/Ⅳ)患兒TOP2AmRNA高表達率為100%,明顯高于早期(Ⅰ/Ⅱ)患兒的45.5%(P<0.05),表明TOP2AmRNA高表達率與臨床分期相關(guān),但與性別、年齡、組織類型無關(guān)(P>0.05,表2)。
表1ERCC1、TUBB3、TOP2AmRNA在腫瘤組織和癌旁組織的表達
Tab.1TheexpressionsofERCC1,TUBB3andTOP2AmRNAinnephroblastomaandperitumoraltissues
[n (%)]
表2ERCC1、TUBB3、TOP2AmRNA表達與腎母細胞瘤臨床病理的關(guān)系
Tab.2RelationshipofERCC1,TUBB3,andTOP2AmRNAexpressionswithclinicopathologicparametersofnephroblastoma
臨床病理參數(shù)nERCC1高表達中低表達PTUBB3高表達中低表達PTOP2A高表達中低表達P性別 男13490.118761.000850.615 女5412341年齡 ≥2.311380.154651.000741.000 <2.37523452臨床分期 Ⅰ+Ⅱ11290.013470.335560.038 Ⅲ+Ⅳ7615270組織類型 FH10190.003460.637731.000 UH8715353
隨著手術(shù)、化療、放療等綜合治療手段的應(yīng)用,小兒腎母細胞瘤的生存率得到了顯著改善。目前,國際上傾向在保證療效的情況下,降低治療強度,減少毒副作用,改善患兒的生存質(zhì)量[7]。因此,需要深入評估患兒的個體差異,選擇合適的個體化治療方案和劑量,克服多藥耐藥現(xiàn)象,提高治療有效率并降低毒性反應(yīng),實現(xiàn)精準治療的目標。腎母細胞瘤的發(fā)生發(fā)展和多藥耐藥是多種基因在多個不同階段共同作用的結(jié)果。因此,對腫瘤組織進行多種基因并行檢測,不僅有助于闡明腫瘤的發(fā)生發(fā)展機制,還可以預(yù)測化療藥物的療效,從而針對性地選擇治療方案。
ERCC1屬于核苷酸外切修復(fù)家族成員,其表達量直接影響DNA的修復(fù)[8]。ERCC1的異常表達與結(jié)直腸癌、肝癌、肺癌等多種腫瘤的發(fā)生密切相關(guān)[3,9-10]。另外,由于鉑類藥物主要是通過引起腫瘤細胞內(nèi)DNA的交聯(lián),阻礙DNA的合成與復(fù)制,從而抑制腫瘤細胞的生長。因此,ERCC1表達與鉑類藥物的療效密切相關(guān),美國國立綜合癌癥網(wǎng)絡(luò)(NationalComprehensiveCancerNetwork,NCCN)臨床實踐指南建議患者在接受鉑類藥物化療前進行ERCC1基因表達檢測[11]。在多種腫瘤中,ERCC1低表達的患者與高表達患者相比,更能夠從含鉑類藥物的治療方案中獲益[4,12]。TUBB3基因編碼的β-tubulin-Ⅲ蛋白是微管蛋白的重要組成部分。微管蛋白在維持細胞形態(tài)、調(diào)控細胞有絲分裂中起重要作用。有研究表明,TUBB3基因異常表達與腫瘤發(fā)生發(fā)展和抗微管類藥物密切相關(guān)[5]。KOH等[13]用免疫組化方法檢測發(fā)現(xiàn),在肺鱗癌中TUBB3陽性率高于其他病理類型,且TUBB3陽性表達與5年無病生存率和總生存時間有關(guān)。TUBB3低表達的患者對長春堿類藥物的敏感性更好[14]。TOP2A基因通過編碼DNA拓撲異構(gòu)酶Ⅱ參與DNA復(fù)制、轉(zhuǎn)錄和翻譯等過程,增強腫瘤細胞的增殖能力。研究發(fā)現(xiàn),TOP2A高表達的患者對依托伯苷和蒽環(huán)類藥物較敏感,而低表達患者對上述兩類藥物表現(xiàn)出耐藥性[6,15]。
目前,基因表達檢測通常使用定量PCR法。定量PCR法是敏感度高的mRNA檢測方法,但該方法需要進行RNA抽提、純化、逆轉(zhuǎn)錄和目標片段擴增等多個步驟,易產(chǎn)生積累誤差,且定量PCR方法每次檢測的基因數(shù)目有限,無法實現(xiàn)多基因的并行檢測。為此本研究采用分支-DNA液相芯片法,在樣本裂解后直接進行檢測,省略了RNA抽提、逆轉(zhuǎn)錄及目標片段擴增等步驟,大大降低多步驟操作的積累誤差,同時能最大程度保證檢測結(jié)果的準確性和可重復(fù)性。并且可同步實現(xiàn)多個基因的mRNA水平檢測,尤其適用于甲醛固定石蠟包埋(FFPE)樣本的多基因并行檢測[16-17]。
本研究結(jié)果顯示,腎母細胞瘤組織中ERCC1高表達率明顯高于癌旁組織,ERCC1高表達率與腎母細胞瘤臨床分期和病理組織類型有關(guān),較晚臨床分期和預(yù)后不良的患兒ERCC1更趨向于高表達。表明腎母細胞瘤組織中存在大量的DNA損傷,引起DNA修復(fù)基因的表達增加。提示腫瘤惡性程度越高,其DNA損傷積累越多,基因組越不穩(wěn)定。TUBB3mRNA在癌旁組織中存在表達,提示TUBB3表達對維持正常細胞生理活動起著重要作用。但TUBB3mRNA的高表達率在腫瘤組織和癌旁組織中存在顯著差異,表明其異常表達可能在腎母細胞瘤的發(fā)生中起到了促進作用。TOP2A在腫瘤組織中的高表達率明顯高于癌旁組織,在臨床分期較晚的患兒中,TOP2A的高表達率為100%。表明TOP2A在腫瘤組織中表達增高,并隨著臨床分期的加大,其表達呈現(xiàn)上升的趨勢,提示晚期腎母細胞瘤患兒可能對依托伯苷和蒽環(huán)類藥物更敏感。
綜上所述,ERCC1、TUBB3和TOP2AmRNA的異常表達可能參與腎母細胞瘤的發(fā)生發(fā)展過程,檢測ERCC1、TUBB3和TOP2AmRNA的表達水平可能為腎母細胞瘤的臨床分期、惡性程度判斷及化療方案的選擇提供依據(jù)。但因本研究病例偏少及腫瘤發(fā)生發(fā)展的復(fù)雜性,ERCC1、TUBB3和TOP2A在腎母細胞瘤中的作用有待進一步研究與論證。
[1]DAVIDOFFAM.Wilms’tumor[J].CurrOpinPediatr, 2009, 21(3):357-364.
[2]PASTOREG,ZNAORA,SPREAFICOF,etal.MalignantrenaltumoursincidenceandsurvivalinEuropeanchildren(1978-1997):reportfromtheAutomatedChildhoodCancerInformationSystemproject[J].EurJCancer, 2006, 42(13):2103-2114.
[3]SAEBOM,SKJELBREDCF,NEXOBA,etal.IncreasedmRNAexpressionlevelsofERCC1,OGG1andRAIincolorectaladenomasandcarcinomas[J].BMCCancer, 2006, 16(6):208-215.
[4]OLAUSSENKA,DUNANTA,FOURETP,etal.DNArepairbyERCC1innon-small-celllungcancerandcisplatin-basedadjuvantchemotherapy[J].NEnglJMed, 2006, 355(10):983-991.
[5]VILMARA,GARCIA-FONCILLASJ,HUARRIZM,etal.RT-PCRversusimmunohistochemistryforcorrelationandquantificationofERCC1,BRCA1,TUBB3andRRM1inNSCLC[J].LungCancer, 2012, 75(3):306-312.
[6]PRESSMF,SAUTERG,BUYSEM,etal.AlterationoftopoisomeraseII-alphageneinhumanbreastcancer:associationwithresponsivenesstoanthracycline-basedchemotherapy[J].JClinOncol, 2011, 29(7):859-867.
[7]NAKAMURAL,RITCHEYM.CurrentmanagementofWilms’tumor[J].CurrUrolRep, 2010, 11(1):58-65.
[8]TSODIKOVOV,JVANOVD,ORELLIB,etal.StructuralbasisfortherecruitmentofERCCl-XPFtonucleotideexcisionrepaircomplexesbyXPA[J].EMBO, 2007, 26(22):4768-4776.
[9]FAUTRELA,ANDRIEUXL,MUSSOO,etal.OverexpressionofthetwonucleotideexcisionrepairgenesERCC1andXPCinhumanhepatocellularcarcinoma[J].JHepatol, 2005, 43(2):288-293.
[10]ZHOUW,LIUG,PARKS,etal.Gene-smokinginteractionassociationsfortheERCC1polymorphismsintheriskoflungcancer[J].CancerEpidemiolBiomarkersPrev, 2005, 14(2):491-496.
[11]ETTINGERDS,AKERLEYW,BORGHAEIH,etal.Non-smallcelllungcancer,version2.2013[J].JNatlComprCancNetw, 2013, 11(6):645-653.
[12]O’GRADYS,FINNSP,CUFFES,etal.TheroleofDNArepairpathwaysincisplatinresistantlungcancer[J].CancerTreatRev, 2014, 40(10):1161-1170.
[13]KOHY,JANGB,HANSW,etal.ExpressionofclassⅢbeta-tubulincorrelateswithunfavorablesurvivaloutcomeinpatientswithresectednon-smallcelllungcancer[J].JThoracOncol, 2010, 5(3):320-325.
[14]ZHANGHL,RUANL,ZHENGLM,etal.AssociationbetweenclassⅢβ-tubulinexpressionandresponsetopaclitaxel/vinorebine-basedchemotherapyfornon-smallcelllungcancer:ameta-analysis[J].LungCancer, 2012, 77(1):9-15.
[15]BRASEJC,SCHMIDTM,FISCHBACHT,etal.ERBB2andTOP2Ainbreastcancer:acomprehensiveanalysisofgeneamplification,RNAlevels,andproteinexpressionandtheirinfluenceonprognosisandprediction[J].ClinCancerRes, 2010, 16(8):2391-2401.
[16]CANALESRD,LUOY,WILLEYJC,etal.EvaluationofDNAmicroarrayresultswithquantitativegeneexpressionplatforms[J].NatBiotechnol, 2006, 24(9):1115-1122.
[17]KNUDSENBS,ALLENAN,MCLERRANDF,etal.Evaluationofthebranched-chainDNAassayformeasurementofRNAinformalin-fixedtissues[J].JMolDiagn, 2008, 10(2):169-176.
(編輯邱芬)
ExpressionandclinicalsignificanceofERCC1,TUBB3andTOP2AmRNAinnephroblastoma
PANWei-kang1,YUHui1,WANGHuai-jie1,ZHENGBai-jun1,GUOQing-qing2,GUOZheng-tuan1,GAOYa1,LIPeng1
(1.DepartmentofPediatricSurgery,theSecondAffiliatedHospitalofXi’anJiaotongUniversity,Xi’an710004; 2.HealthScienceCenter,Xi’anJiaotongUniversity,Xi’an710061,China)
ObjectiveToinvestigatetheexpressionandclinicalsignificanceofexcisionrepaircrosscomplementation1(ERCC1),ClassⅢβ-tubulin(TUBB3)andtopoisomeraseⅡA(TOP2A)innephroblastoma.MethodsTheexpressionlevelsofERCC1,TUBB3andTOP2Ain18casesofnephroblastomatissueand14casesofperitumoraltissueweredetectedbybranch-DNAliquidchiptechnology.Therelationshipoftheexpressionsoftheabovegeneswiththeclinicopathologiccharacteristicsofnephroblastomawasanalyzed.ResultsThehighexpressionratesofERCC1,TUBB3andTOP2Ainnephroblastomatissues(44.4%,50.0%, 66.7%)weresignificantlyhigherthanthoseinperitumoraltissues(7.1%, 7.1%and14.3%) (P<0.05).ThehighexpressionofERCC1wascorrelatedwiththeclinicalstageandhistopathologictype(P<0.05).TOP2Awascorrelatedwiththeclinicalstage(P<0.05).ConclusionTheexpressionsofERCC1,TUBB3andTOP2Awerehigherinnephroblastomathaninnormalrenaltissue.HighexpressionsofERCC1,TUBB3andTOP2Amayplayanimportantroleincarcinogenesisandprogressionofnephroblastoma.
nephroblastoma;ERCC1;TUBB3;TOP2A
2016-01-28
2016-05-25
國家自然科學(xué)基金資助項目(No.81172589)
李鵬.E-mail:sienafiat@hotmail.com
R737.11
A
10.7652/jdyxb201605015
SupportedbytheNationalNaturalScienceFoundationofChina(No.81172589)
優(yōu)先出版:http://www.cnki.net/kcms/detail/61.1399.R.20160803.1405.020.html(2016-08-03)