陳宗鋒 趙汝崗 張強* 成軍 朱春曉 王晶晶 劉琨
1.泰山醫(yī)學院研究生部,泰安 271016 2.首都醫(yī)科大學附屬北京地壇醫(yī)院骨科,北京 100015 3.首都醫(yī)科大學附屬北京地壇醫(yī)院傳染病研究所 新發(fā)突發(fā)傳染病研究北京市重點實驗室,北京 100015 4.濰坊醫(yī)學院,濰坊 261042
富馬酸替諾福韋酯(Tenofovir Disoproxil Fumarate,TDF),分子量為635.5149,有效成分為替諾福韋(tenofovir),是一種核苷類逆轉(zhuǎn)錄酶抑制劑,自2001年美國食品和藥物管理局(Food and Drug Administration, FDA, USA)批準應(yīng)用,目前廣泛應(yīng)用于人類免疫缺陷病毒(HIV, human immunodeficiency virus)感染、慢性乙肝等抗病毒治療。核苷類逆轉(zhuǎn)錄酶抑制劑作用于RNA逆轉(zhuǎn)錄酶,阻止核糖核酸病毒的遺傳物質(zhì)RNA逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,進而阻止病毒復(fù)制。
替諾福韋在臨床上取得良好效果,伴隨而來的是其各種副作用的發(fā)生,例如骨量降低、骨質(zhì)疏松癥[1]、低磷酸鹽血癥性軟骨病[2]、范可尼綜合征[3、4]。已經(jīng)證實,經(jīng)過抗逆轉(zhuǎn)錄病毒治療(antiretroviral therapy, ART)后,含TDF治療方案比其他核苷類逆轉(zhuǎn)錄酶抑制劑的骨質(zhì)丟失率高1%-2%[5-9]。目前,為減少TDF相關(guān)性骨質(zhì)丟失的并發(fā)癥,相關(guān)替代藥物(如馬拉韋羅, Maraviroc, MVC[10],輝瑞公司生產(chǎn)的一種新的抗艾藥)也在研發(fā)中。已報道,另一個并發(fā)癥是腎毒性,應(yīng)用TDF的患者腎毒性高達22-53%,包括近端小管功能不全、范可尼綜合征、腎衰[11,12]。近端腎小管功能異常導(dǎo)致尿磷酸鹽丟失或者腎1,α-二羥維生素D3丟失,伴隨骨軟化已報道,在含TDF治療組達1.6%-22%[13]。
正常骨代謝處于動態(tài)平衡,是以成骨細胞的骨形成和破骨細胞的骨吸收為基礎(chǔ)。來源于間充質(zhì)干細胞的成骨細胞,在人體內(nèi)合成膠原蛋白和糖蛋白形成類骨質(zhì)[14]。成骨細胞功能變化,可以導(dǎo)致骨丟失,或者骨量減少,或者骨質(zhì)疏松癥。
基于臨床中觀察到的替諾福韋酯相關(guān)性骨質(zhì)丟失,我們旨在探索替諾福韋酯相關(guān)性骨質(zhì)丟失的可能機制。在本研究中,我們探索替諾福韋酯是否能影響成骨細胞的生物學特征及礦化形成,進一步影響成骨細胞的功能和骨形成。為此我們選擇成骨細胞前體細胞,暴露于含不同濃度的培養(yǎng)基中,收集細胞,檢測細胞增殖、凋亡及礦化的變化。已經(jīng)有研究顯示替諾福韋酯可以導(dǎo)致成骨細胞基因表達紊亂,這些基因涉及到成骨細胞功能,進而導(dǎo)致骨密度降低[15]。我們的研究第一次探索了TDF對MC3T3-E1細胞凋亡及礦化的影響。
小鼠胚胎前體成骨樣細胞MC3TC-E1(購于中國醫(yī)學科學院基礎(chǔ)醫(yī)學研究所基礎(chǔ)醫(yī)學細胞中心,Chinese academy of medical sciences, institute of basic medical basic medical cell resource center),富馬酸替諾福韋二吡呋酯藥物(Tenofovir Disoproxil Fumarate,正大天晴公司提供,批號:1505041102,含量:99.5%,水分:0.3%)、MEM-α培養(yǎng)基(Gibco公司),新生胎牛血清(Gibco公司),CCK8試劑(Dojindo,CK04)、Vitamin C(SIGMA公司)、β-甘油磷酸鈉(SIGMA公司)、100×青-鏈霉素溶液(吉諾生物醫(yī)藥技術(shù)有限公司)、DMSO(美國AMRESCO公司)、PBS(Gibco公司,4.775 g/500 ml)、酶標儀(BIO-RAD Model 680型)、超低溫保存箱(SANYO)、流式細胞儀(FACS,Fluorescence Activated Cell Sorter)、CO2溫箱(SANYO)、低速離心機(法國捷安公司),以及實驗室其他常用設(shè)備。
配制濃度為0.5 mmol/ml的TDF母液:稱取0.318 g TDF,溶于1 ml DMSO,充分振蕩混勻,-20℃儲存?zhèn)溆?。按照實驗所需濃度,用普通培養(yǎng)基稀釋到相應(yīng)濃度。
1.2.1細胞培養(yǎng)、傳代、凍存:將新鮮購置MC3T3-E1細胞,置于5%CO2、37℃培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),普通培養(yǎng)液含90%MEM-α基礎(chǔ)培養(yǎng)基、10%的胎牛血清、100 μg/ml雙抗(青霉素-鏈霉素)。誘導(dǎo)培養(yǎng)液在普通培養(yǎng)液基礎(chǔ)上含10 mmol/Lβ-甘油磷酸鈉、50 μg/L Vitamin C。每2~3天換液1次,細胞密度長至80%~90%傳代,并凍存部分第一、二、三代以備用。
1.2.2細胞增殖情況檢測:CCK8比色法。96孔板接種細胞,每孔100 μL,每孔細胞數(shù)4800個細胞。鋪板24小時后,觀察細胞是否貼壁,貼壁后,更換含不同濃度TDF(50 nM、500 nM、5000 nM、50000 nM、250000 nM、500000 nM)的普通培養(yǎng)液。共分8組,即空白對照組、不同濃度TDF處理組、DMSO處理組。分別干預(yù)1 d、3 d、5 d、7 d后,用PBS洗一遍,加入CCK8(5 mg/mL),每孔20 μL,5%CO2、37℃培養(yǎng)箱孵育1.5 h,570 nm波長酶標儀測定各孔吸光度值(OD值)。
1.2.3細胞凋亡檢測:6孔板中接種細胞,每孔2 ml,每孔細胞數(shù)1.5×105個。24h細胞貼壁后,更換含不同濃度TDF(50 nM、500 nM、5000 nM、50000 nM、250000 nM、500000 nM)的誘導(dǎo)培養(yǎng)液,分別于24 h、48 h后,胰酶消化收集細胞,PBS、cell staining buffer各洗一遍,100ul cell staining buffer重懸細胞,Annexin V 2ul/樣,室溫染色15 min,上機檢測前7AAD染色,2ul/樣,流式細胞儀檢測TDF對細胞凋亡的影響。
1.2.4細胞鈣化程度檢測:茜紅素染色法。6孔板接種細胞,每孔2 ml,每孔細胞數(shù)1.5×105個,培養(yǎng)24 h后待細胞貼壁,更換含不同濃度TDF(50 nM、500 nM、50000 nM)的誘導(dǎo)培養(yǎng)基,每2天換液。于第14天以70%乙醇固定細胞1 h,以雙蒸水洗3次后,茜紅素溶液染色30 min。染色后以雙蒸水洗3遍后,觀察并拍照。
實驗所得數(shù)據(jù)用均數(shù)±標準差表示。SPSS13.0統(tǒng)計軟件分析數(shù)據(jù),進行單因素方差分析,各實驗組間比較采用Student-Newman-Keuls(SNK)檢測,以P<0.05表示差異有統(tǒng)計學意義,P>0.05表示無統(tǒng)計學差異。
本研究結(jié)果顯示,與DMSO對照組相比,TDF干擾24 h時,50 nM、500 nM、5000 nM濃度對MC3T3-E1細胞增殖無抑制(P>0.05),而48 h時,50 nM、500 nM對MC3T3-E1細胞增殖無抑制(P>0.05),余各濃度的TDF均抑制MC3T3-E1細胞增殖。結(jié)果表明,不同濃度的TDF對MC3T3-E1細胞增殖抑制差異較大,而在臨床血藥濃度(約500nM)下對MC3T3-E1細胞增殖無抑制(P>0.05)。
本實驗結(jié)果顯示,與DMSO對照組相比,TDF濃度為250000 nM和500000 nM時,干擾48 h,MC3T3-E1細胞凋亡率明顯增加。而在血藥濃度(約500 nM),TDF對MC3T3-E1細胞凋亡無影響。
鈣沉積,用來評估體外細胞外基質(zhì)礦化的生理過程。礦化對于骨形成過程非常重要。為了探究TDF對骨礦化過程的作用,我們用茜紅素染色分析誘導(dǎo)培養(yǎng)基中鈣結(jié)節(jié)的形成。MC3T3-E1 細胞分別用含TDF(0 nM、50 nM、500 nM、50000 nM)、DMSO(0.1‰)的誘導(dǎo)培養(yǎng)基和非誘導(dǎo)培養(yǎng)基處理14 d。NC組培養(yǎng)基:不含β-甘油磷酸鈉和維生素C。結(jié)果如圖4所示,500 nM和50000 nM TDF處理組礦化結(jié)節(jié)明顯減少,同時對照組(含0.1‰DMSO)和正常組(除5%胎牛血清和0.5%雙抗的培養(yǎng)基外,不含DMSO和TDF)鈣結(jié)節(jié)較多,而非誘導(dǎo)培養(yǎng)基培養(yǎng)14 d后(NC組)無鈣結(jié)節(jié)的形成。表明TDF能抑制MC3T3-E1鈣結(jié)節(jié)的形成。
注:Δ在相同濃度下,不同時間點兩組間抑制率有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。TDF干擾24 h后,高濃度TDF(50000 nM、250000 nM、500000 nM)與DMSO對照組相比,抑制率有統(tǒng)計學意義(P<0.05),低濃度(0nM、50 nM、500 nM、5000 nM)和DMSO對照組相比無統(tǒng)計學意義(P值分別為0.868、0.881、0.591、0.167);TDF干擾48 h后,空白組(0 nM)、TDF處理組(50 nM、500 nM)和DMSO對照組相比無統(tǒng)計學意義(P值分別為0.096、0.207、0.381),余各組與DMSO對照組相比,均有統(tǒng)計學意義(P<0.05);ΔAt the same concentration, the rates have statistical significance between the two groups of different times (24 h and 48h);At 24 h, the rates of high concentration groups (50000 nM, 250000 nM, 500000 nM) are statistically significant (P<0.05), compared with the DMSO control group; the rates of low concentration groups (50nM, 500nM, 5000nM) and DMSO group do not have significance (P value are 0.868、0.881、0.591、0.167), compared with DMSO control group;At 48 h, the rates of treatment groups (0nM, 50nM, 500nM), have no statistical significance (P value are 0.096, 0.207, 0.381), compared with DMSO control group; the rates of the other groups have statistical significance , compared with DMSO control group
圖1 不同濃度TDF不同處理時間對MC3T3-E1細胞增殖抑制率Fig.1 The growth inhibition rate of MC3T3-E1 cells at different concentrations of TDF on 24 h and 48 h.
濃度(nM)24 h48 h011.58±5.08▲8.88±3.95△DMSO12.86±2.53▲7.98±2.31△5013.72±5.88▲8.33±4.13△50012.25±5.63▲10.97±7.15△500014.73±4.26▲11.82±6.21△5000018.21±6.98▲16.83±8.59△25000015.05±14.21▲●35.94±8.82△●5000009.57±2.42▲●48.00±20.85△●
注:●相同TDF濃度(250000 nm/L、500000 nm/L),不同時間點,兩者之間有統(tǒng)計學意義(P<0.05),其余各組間無統(tǒng)計學意義(P>0.05);▲TDF干擾24 h后,不同濃度TDF對成骨細胞凋亡率各組間均無統(tǒng)計學意義;△TDF干擾48 h后,TDF濃度(500000 nmol/L、250000 nmol/L)處理組與對照組(DMSO處理組)相比有統(tǒng)計學意義(P<0.05),其余各組間均無無統(tǒng)計學意義(P>0.05);●At different points and same TDF concentration(250000nm/L or 500000nm/L), the apoptosis rates between groups are significant(P<0.05);▲after 24 h TDF treated, the apoptosis rates between groups have no significance;△after 48 h TDF treated, the apoptosis rates of 50000nM group and 250000nmol/L group have significance(P<0.05), compared with DMSO group.
圖2 不同濃度TDF對細胞凋亡的影響。Fig.2 The effect of different concentrations of TDF on cell apoptosis
本研究旨在探索TDF對成骨細胞增殖、凋亡、鈣結(jié)節(jié)形成的影響。我們選擇MC3T3-E1作為體外模型,探索TDF對MC3T3-E1成骨細胞的影響。
HIV感染者中,骨量減少及骨質(zhì)疏松較普遍,原因是多方面的。包括HIV病毒活動,藥物毒性,還有宿主因素。其中藥物毒性發(fā)揮重要作用,尤其是TDF。盡管很多臨床文獻報道骨代謝與TDF的關(guān)系,但是涉及的病理機制并未無完全闡明。
臨床研究已經(jīng)表明TDF與骨代謝密切相關(guān)。在含TDF抗病毒治療方案的患者中,將TDF轉(zhuǎn)換成阿巴卡韋(abacavir, ABC),48周時,環(huán)磷酰胺(cyclophosphamide, CTX)、膠原蛋白I型(Collagen type I)、I型前膠原氨基端肽(Procollagen I N-terminal Peptide,P1NP)等血清三種骨標志物的含量有意義地降低,表明骨代謝減弱[16],骨保護素(osteoprotegerin, OPG)無變化,遺憾地是此研究中核因子κB受體活化因子配體(receptor activator activator nuclear factor-κB ligand, RANKL)在樣本中未能檢測到,OPG/RANKL/RANK信號系統(tǒng)對調(diào)節(jié)骨代謝平衡起重要作用。持續(xù)應(yīng)用包含齊多夫定(zidovudine, AZT)/拉米夫定(lamivudine, 3TC)的ART治療方案,直接轉(zhuǎn)換成TDF/恩曲他濱(emtricitabine, FTC)方案時,骨代謝增加、骨密度(bone mineral density, BMD)降低,表明影響體內(nèi)骨代謝[17]。相同的研究指出,低骨密度的接受抑制病毒治療的HIV感染患者,從TDF換成雷特格韋(raltegravir),48周時,髖骨和脊柱BMD升高,骨代謝標志物(氨基末端肽、骨鈣素(bone gla protein, BGP)、骨堿性磷酸酶(bone specific alkaline phosphatase, BSAP))降低[18]。ABC/3TC和TDF/FTC聯(lián)合依非韋倫(efavirenz, EFV),最低限度,影響腎小球濾過率,96周時,TDF/FTC組,腎小管功能障礙(視黃醇結(jié)合蛋白(retinol binding protein, RBP)/肌酐比值、微球蛋白(β-2 microglobulin, B2M)/肌酐比值)和骨代謝標志物水平(P1NP、CTX、BGP、BSAP)都增加較大,髖骨骨密度降低更多[19]。
由TDF引起的腎磷和鈣丟失可能與代償性骨重吸收有關(guān),并改變了再生骨的礦化。此外,由于HIV本身引起的炎癥性細胞因子的活化,也可引起骨密度降低[20]。
本實驗結(jié)果顯示,TDF對MC3T3-E1成骨細胞的增殖和凋亡的影響受TDF濃度和干擾時間的影響,即低濃度對增殖和凋亡無影響,高濃度抑制增殖并促進凋亡,并隨干擾時間增加,增殖抑制率和促凋亡率增大;TDF抑制鈣結(jié)節(jié)形成,進而影響成骨。在血藥濃度(約500 nM)時,TDF不影響MC3T3-E1成骨細胞的增殖和凋亡,但長時間應(yīng)用(TDF干擾14天),鈣結(jié)節(jié)形成明顯受到抑制。
圖3 流式細胞計數(shù)檢測不同濃度TDF對MC3T3-E1凋亡的影響Fig.3 The effect of different concentrations of TDF on cell apoptosis detected by flow cytometry
圖4 TDF對MC3T3-E1細胞礦化的影響Fig.4 The effect of TDF on the mineralization of MC3T3-E1 cells
綜上所述,我們的研究證實,在體外,血藥濃度(約500 nM)TDF對MC3T3-E1前成骨細胞的增殖、凋亡等生物學特性無影響,但抑制成骨細胞礦化,進而影響骨形成。HIV患者骨病的病理機制是復(fù)雜的,也可能是HIV病毒本身和應(yīng)用抗病毒藥物兩者之間復(fù)雜的相互作用所導(dǎo)致。未來的我們的研究將更加深入地探索,HIV病毒本身對骨代謝的作用,以及暴露于HIV和TDF兩者時骨代謝的變化,來更充分地闡明艾滋病骨病的關(guān)鍵驅(qū)動因素。