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      奇亞籽提取物體外抗氧化活性研究

      2016-07-21 01:31:47相啟森時(shí)國(guó)慶趙震宇馬云芳崔席席申瑞玲
      食品與發(fā)酵工業(yè) 2016年6期
      關(guān)鍵詞:抗氧化劑自由基

      相啟森,時(shí)國(guó)慶,趙震宇 ,馬云芳,崔席席,申瑞玲*

      1(鄭州輕工業(yè)學(xué)院 食品與生物工程學(xué)院,河南 鄭州,450002)2(食品生產(chǎn)與安全河南省協(xié)同創(chuàng)新中心,河南 鄭州,450002)

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      奇亞籽提取物體外抗氧化活性研究

      相啟森1, 2,時(shí)國(guó)慶1, 2,趙震宇1, 2,馬云芳1, 2,崔席席1, 2,申瑞玲1, 2*

      1(鄭州輕工業(yè)學(xué)院 食品與生物工程學(xué)院,河南 鄭州,450002)2(食品生產(chǎn)與安全河南省協(xié)同創(chuàng)新中心,河南 鄭州,450002)

      摘要奇亞籽是唇形科植物芡歐鼠尾草的種子,已被證實(shí)具有多種健康促進(jìn)作用。文中評(píng)價(jià)了白奇亞籽和黑奇亞籽的體外抗氧化活性并測(cè)定了其總多酚和總黃酮含量。結(jié)果表明:2種奇亞籽提取物均能夠以濃度依賴的方式清除DPPH·和ABTS+·,白奇亞籽提取物對(duì)DPPH·和ABTS+·的清除能力顯著高于黑奇亞籽提取物;白色和黑色奇亞籽提取物的FeSO4·7H2O當(dāng)量分別為(41.48+2.84) μmol/g和(29.70±2.43) μmol/g;同時(shí),2種奇亞籽提取物均能顯著抑制亞油酸自由基引起的β-胡蘿卜素漂白。此外,2種奇亞籽提取物均能夠有效抑制自由基誘導(dǎo)的亞油酸過氧化和牛血清白蛋白氧化降解。白奇亞籽和黑奇亞籽中總多酚含量分別為(3.40±0.09) mg CAE/g和(2.97±0.07) mg CAE/g,總黃酮含量分別為(1.24±0.06) RE mg/g和(1.07±0.08) RE mg/g。

      關(guān)鍵詞奇亞籽;抗氧化劑;自由基;鐵離子還原能力

      大量研究表明,機(jī)體氧化應(yīng)激與神經(jīng)退行性疾病、動(dòng)脈粥樣硬化、慢性炎癥等疾病的發(fā)生及衰老過程密切相關(guān)[1]。研究證實(shí),從膳食中補(bǔ)充VC、類胡蘿卜素等抗氧化劑能夠有效預(yù)防和降低氧化應(yīng)激造成的健康危害[2]。近年來,從食物資源中分離和制備天然抗氧化劑愈發(fā)受到重視,并成為食品營(yíng)養(yǎng)領(lǐng)域的研究熱點(diǎn)[3-4]。

      奇亞也被稱為芡歐鼠尾草(SalviahispanicaL.),是一種起源于墨西哥和危地馬拉的作物,其種子即為奇亞籽。在南美洲,奇亞有著悠久的種植和食用歷史。在哥倫布發(fā)現(xiàn)美洲之前,奇亞是墨西哥等地僅次于玉米和大豆的第三大糧食作物[5]。最近的研究表明,奇亞籽富含蛋白質(zhì)、膳食纖維、多不飽和脂肪酸等營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)和迷迭香酸等植物活性成分[5-7]。隨著生活水平的提高和健康意識(shí)逐步的增強(qiáng),消費(fèi)者對(duì)營(yíng)養(yǎng)和健康食品的需求也日益增強(qiáng)。因營(yíng)養(yǎng)豐富、食用價(jià)值高并具有多種健康促進(jìn)作用,奇亞籽在食品工業(yè)中有著巨大的開發(fā)利用前景。本研究以白色和黑色2種奇亞籽為研究對(duì)象,采用DPPH·清除試驗(yàn)等體外抗氧化體系評(píng)價(jià)了其提取物的自由基清除能力、鐵離子還原能力及對(duì)脂質(zhì)過氧化和蛋白質(zhì)氧化降解的影響。

      1材料與方法

      1.1材料

      1.1.1原料

      黑色和白色奇亞籽,購于澳大利亞Chia Co公司。

      1.1.2主要儀器設(shè)備

      UV 8100型紫外分光光度計(jì),北京萊伯泰科儀器有限公司;DZKW型電熱恒溫水浴鍋,北京市永光明醫(yī)療儀器廠;BSA224S-CW型電子天平,賽多利斯科學(xué)儀器(北京)有限公司;XQ200型多功能高速粉碎機(jī),上海廣沙工貿(mào)有限公司;RE-52AA型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,上海亞榮生化儀器廠;微量移液器,德國(guó)Eppendorf公司;Mini-Protean Tetra小型垂直電泳槽、PowerPacTM通用電泳儀電源和ChemiDocTMXRS化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng),美國(guó)Bio-Rad公司。

      1.1.3主要實(shí)驗(yàn)試劑

      1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)、2, 2-聯(lián)氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二銨鹽(ABTS)、β-胡蘿卜素、菲洛嗪(Ferrozine)、牛血清白蛋白(BSA)、考馬斯亮藍(lán)R-250,合肥博美生物有限公司;2,2-偶氮二(2-甲基丙基咪)二鹽酸鹽(AAPH),阿拉丁試劑(上海)有限公司;β-巰基乙醇、十二烷基磺酸鈉(SDS)、丙烯酰胺、N, N′-亞甲雙丙烯酰胺、甘氨酸、N,N,N′,N′-四甲基二乙胺(TEMED)、異丙醇、Tris堿、溴酚藍(lán)、過硫酸銨,美國(guó)Amresco公司;甲醇、冰乙酸、FeSO4·7H2O、VC(VitC),天津市化學(xué)試劑六廠;三氯甲烷、Tween-40、Al (NO3)3、NaNO2、蘆丁、沒食子酸,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

      1.2實(shí)驗(yàn)方法

      1.2.1奇亞籽提取物的制備

      稱取一定量奇亞籽并采用粉碎機(jī)進(jìn)行干法粉碎,過60目篩,即為奇亞籽全粉。準(zhǔn)確稱取10.0 g奇亞籽全粉,加入200 mL體積分?jǐn)?shù)80%的乙醇溶液,混勻后于室溫提取2 h,于3 000 r/min、室溫條件下離心10 min,取上清后重復(fù)提取1次。合并上清液,于45℃水浴下蒸發(fā)至干,用體積分?jǐn)?shù)80%乙醇定容至25 mL,得濃度為400 mg/mL的奇亞籽提取物,于-18 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

      1.2.2DPPH·清除能力的測(cè)定

      DPPH·清除試驗(yàn)參照Vulic等的報(bào)道并稍作修改[8]。取1.0 mL稀釋后的奇亞籽提取液,加入4.0 mL DPPH甲醇溶液(100 μmol/L),混勻后避光靜置30 min,測(cè)定 517 nm處的吸光值(A1)。以相同體積80%乙醇代替奇亞籽提取液,測(cè)定其吸光值作為空白對(duì)照(A0);按照公式(1)計(jì)算DPPH·清除率:

      DPPH·清除率/%= (1-A1/A0)× 100

      (1)

      以樣品濃度為自量,自由基清除率為因變量作圖并進(jìn)行線性擬合,計(jì)算IC50值。另以Trolox標(biāo)準(zhǔn)梯度液(0~160 μmol/L)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,奇亞籽的DPPH·清除能力表示為1 g奇亞籽樣品中所含Trolox的當(dāng)量微摩爾數(shù)(μmol Trolox/g)。

      1.2.3ABTS+·清除能力的測(cè)定

      參考文獻(xiàn)[9],將10.0 mL ABTS溶液(7 mmol/L)和5.0 mL過硫酸鉀溶液(7.35 mmol/L)混合,在室溫下避光下反應(yīng)16 h。用無水乙醇將ABTS自由基儲(chǔ)備液進(jìn)行稀釋,使其在734 nm處的吸光度為 0.70 ± 0.02。取1.0 mL稀釋后的奇亞籽提取液,加入4.0 mL ABTS自由基儲(chǔ)備液,充分混勻,室溫反應(yīng)30 min,測(cè)定734 nm處吸光度并按公式(2)計(jì)算ABTS+·清除率。 [10],將300 mol/L醋酸鈉緩沖液(pH 3.6)、10 mmol/L的TPTZ溶液與20 mmol/L的FeCl3·6H2O按體積比10∶1∶1比例混合制備TPTZ工作液。取200 μL不同濃度的奇亞籽提取液,加入800 μL TPTZ工作液并混勻,37℃避光反應(yīng)30 min,測(cè)定593 nm處吸光度。配制50~400 μmol/L的FeSO4·7H2O標(biāo)準(zhǔn)溶液,按照上述方法作處理并測(cè)定反應(yīng)液在593 nm處的吸光值,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。奇亞籽的鐵還原能力(FRAP值)表示為1 g樣品達(dá)到同樣吸光度所需FeSO4的微摩爾數(shù)(μmol FeSO4/g)。

      ABTS+·清除率/%=(1-A1/A0)× 100

      (2)

      其中A0為空白組的吸光度,A1為奇亞籽提取液處理組的吸光度。

      1.2.4鐵離子還原能力(FRAP)測(cè)定

      1.2.5β-胡蘿卜素/亞油酸漂白法

      取1.0 mL β-胡蘿卜素三氯甲烷溶液(5 mg/mL),加入25 μL亞油酸及400 mg Tween-40,45 ℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)以除去三氯甲烷,然后緩慢加入100 mL 蒸餾水,并劇烈振蕩,得β-胡蘿卜素/亞油酸乳液。分別取1.0 mL不同濃度奇亞籽提取物溶液和4.0 mL β-胡蘿卜素/亞油酸乳液加入到試管中并混勻,于470 nm處測(cè)定0 min吸光度;50 ℃水浴反應(yīng)120 min后,測(cè)定470 nm處吸光度。按以下公式分別計(jì)算β-胡蘿卜素漂白率和抗氧化活性[11-12]。

      β-胡蘿卜素漂白率(R)=ln (A0/A120)/t

      (3)

      式中:A0表示t=0 min時(shí)樣品的吸光度,A120表示t=120 min時(shí)樣品的吸光度。

      抗氧化活性(AA)=[(R空-R樣)/R空]×100

      (4)

      式中:R空表示空白組的β-胡蘿卜素漂白率,R樣表示樣品的β-胡蘿卜素漂白率。

      1.2.6奇亞籽提取物對(duì)Fe2+/VitC誘導(dǎo)亞油酸脂質(zhì)過氧化的影響

      采用Fe2+/VitC反應(yīng)體系產(chǎn)生的羥自由基誘導(dǎo)亞油酸發(fā)生脂質(zhì)過氧化反應(yīng)[13]。亞油酸用甲醇助溶,加入到1.5 mL離心管中,終濃度為1 mmol/L。在反應(yīng)體系中,先加入不同濃度的奇亞籽提取物,混合均勻后再加入FeSO4和VitC(終濃度分別為50 μmol/L和1 mmol/L)。將離心管在37℃水浴避光反應(yīng)24 h。反應(yīng)結(jié)束后,測(cè)定樣品中硫代巴比妥酸反應(yīng)產(chǎn)物(TBARS)含量[14]。

      1.2.7奇亞籽提取物對(duì)AAPH誘導(dǎo)BSA氧化降解的影響

      在BSA終濃度為0.5 mg/mL的反應(yīng)體系中,先加入不同濃度的奇亞籽提取物,再加入終濃度為100 mmol/L的AAPH溶液,于37℃水浴反應(yīng)6 h。反應(yīng)結(jié)束后,取100 μL反應(yīng)液轉(zhuǎn)移至1.5 mL離心管中,加入25 μL 5×SDS凝膠電泳上樣緩沖液,100℃加熱變性10 min,進(jìn)行10% SDS-PAGE凝膠電泳;電泳結(jié)束后,用考馬斯亮藍(lán)R-250染色30 mim并采用脫色液進(jìn)行脫色;使用Chemi DocTMXRS化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)進(jìn)行凝膠成像[14]。

      1.2.8總多酚和總黃酮含量測(cè)定

      采用Folin-Ciocalteu法測(cè)定奇亞籽中總多酚含量,以沒食子酸為標(biāo)準(zhǔn)品[11],以沒食子酸當(dāng)量表示(mg GAE/g干重);采用Al (NO3)3-NaNO2比色法測(cè)定奇亞籽中總黃酮含量,以蘆丁為標(biāo)準(zhǔn)品,結(jié)果表示為蘆丁當(dāng)量(mg RE/g干重)[11]。

      1.2.9統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

      采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,數(shù)據(jù)表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差。各組間的差異比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),以P<0.05和P<0.01分別表示差異顯著和極顯著。

      2結(jié)果與分析

      2.1奇亞籽提取物對(duì)DPPH·的清除作用

      如圖1所示,白色和黑色奇亞籽提取物均能有效清除DPPH·,且清除率隨奇亞籽提取物添加濃度的增大而升高,呈現(xiàn)良好的劑量-效應(yīng)關(guān)系。經(jīng)計(jì)算,在1.2.2所述試驗(yàn)體系中,白色和黑色奇亞籽提取物清除DPPH·的IC50值分別為(11.55±0.21) mg/mL和(18.18±1.03) mg/mL,且存在極顯著差異(P<0.01)。

      圖1 奇亞籽提取物對(duì)DPPH·的清除作用Fig.1 DPPH· radical scavenging activity of the chia seeds extracts

      以Trolox為對(duì)照品繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖2),白色和黑色奇亞籽的Trolox當(dāng)量分別為(9.54± 0.14) μmol Trolox/g和(7.86±0.77) μmol Trolox/g。統(tǒng)計(jì)學(xué)分析表明,白奇亞籽的Trolox當(dāng)量顯著高于黑奇亞籽(P<0.01)。

      圖2 Trolox對(duì)DPPH·的清除作用Fig.2 DPPH· radical scavenging activity of trolox

      2.2奇亞籽提取物對(duì)ABTS+·的清除作用

      ABTS是一種化學(xué)性自由基引發(fā)劑,能夠被過硫酸鉀(K2S2O8)氧化并生成穩(wěn)定的藍(lán)綠色陽離子自由基(ABTS+·)??寡趸镔|(zhì)可將藍(lán)綠色ABTS+·還原為無色的ABTS分子形式,通過檢測(cè)ABTS+·在734 nm吸光度的變化即可評(píng)價(jià)其抗氧化活性[15]。如圖3所示,白色和黑色奇亞籽提取物均能有效清除ABTS+·,且清除率隨添加濃度的增加而升高,呈良好的劑量-效應(yīng)關(guān)系。經(jīng)計(jì)算,在1.2.3所述試驗(yàn)體系中,白奇亞籽和黑奇亞籽提取物對(duì)ABTS+·的IC50值分別為(4.39±0.04) mg/mL和(6.92±0.08) mg/mL,且白奇亞籽提取物對(duì)ABTS+·的清除能力顯著高于黑奇亞籽提取物(P<0.01)。

      圖3 奇亞籽提取物對(duì)ABTS+·的清除作用Fig.3 ABTS+· radical scavenging capacity of the chia seeds extracts

      2.3奇亞籽提取物的鐵離子還原能力(FRAP)

      鐵離子還原法(FRAP)的原理是:在低pH值的溶液中,F(xiàn)e3+-TPTZ(Fe3+-三吡啶三嗪)被抗氧化劑還原成Fe2+-TPTZ,使反應(yīng)液變成深藍(lán)色,在593 nm處有最大光吸收,這樣通過測(cè)量樣品吸光度的變化來測(cè)量其抗氧化能力,結(jié)果常表示為Fe2+當(dāng)量或標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的抗氧化能力[10]。由圖4可知,隨著2種奇亞籽提取物添加濃度的增加,反應(yīng)液在593 nm吸光度逐漸升高,即鐵離子還原能力逐漸升高。以FeSO4·7H2O為標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,求得白奇亞籽和黑奇亞籽的FeSO4·7H2O當(dāng)量分別為(41.48+2.84) μmol/g和(29.70±2.43) μmol/g,且存在極顯著差異(P<0.01)。

      圖4 奇亞籽提取物的鐵離子還原能力Fig.4 Ferric reducing antioxidant power of the chia seeds extracts

      2.4奇亞籽提取物抑制亞油酸氧化引發(fā)的β-胡蘿卜素漂白

      β-胡蘿卜素漂白法(β-carotene bleaching test)主要用于評(píng)價(jià)樣品在乳化脂質(zhì)體系中的抗氧化能力,其原理是:乳狀液中的亞油酸經(jīng)自動(dòng)氧化生成的自由基可引起β-胡蘿卜素的黃色衰減(在470 nm處吸光度減小),且吸光度隨時(shí)間的延長(zhǎng)而逐漸降低;當(dāng)存在抗氧化劑時(shí),β-胡蘿卜素漂白的速率被減緩[16]。由圖5可知,白奇亞籽和黑奇亞籽提取物均能顯著抑制亞油酸氧化引起的β-胡蘿卜素漂白。當(dāng)添加濃度分別為20、30和40 mg/mL時(shí),白亞籽提取物的抗氧化活性顯著高于黑奇亞籽提取物(P<0.05)。

      圖5 采用β-胡蘿卜素漂白法評(píng)價(jià)奇亞籽提取物的抗氧化能力Fig.5 Antioxidant activity of chia seeds extracts using the β-carotene bleaching assay注:與同濃度黑奇亞籽提取物組相比,*P<0.05,**P<0.01

      2.5奇亞籽提取物對(duì)亞油酸過氧化的抑制作用

      亞油酸是一種必需的ω-6不飽和脂肪酸,極易在空氣中發(fā)生氧化。本研究采用Fe2+/VitC體系產(chǎn)生的羥基自由基(·OH)誘導(dǎo)亞油酸發(fā)生過氧化反應(yīng),并以TBARS為指標(biāo)評(píng)價(jià)奇亞籽提取物對(duì)亞油酸過氧化的抑制作用。

      由圖6可知,在無Fe2+/VitC條件下,亞油酸自氧化反應(yīng)較為緩慢,其TBARS含量較低[(4.24±0.47)至(5.11±1.14) μmol/L]。在Fe2+/VitC所產(chǎn)生的羥基自由基(·OH)作用下,與空白組相比,模型組樣品中TBARS含量顯著升高(P<0.01)。在Fe2+/VitC誘導(dǎo)亞油酸過氧化反應(yīng)體系中分別加入終濃度為50、100、150和200 μg/mL的奇亞籽提取物均能夠顯著抑制TBARS的生成,且抑制作用隨奇亞籽提取物添加濃度的升高而增強(qiáng),呈良好的劑量-效應(yīng)關(guān)系。

      圖6 奇亞籽提取物對(duì)Fe2+/VitC誘導(dǎo)亞油酸氧化的抑制作用Fig.6 Inhibitory effects of chia seeds extracts on Fe2+/VitC-mediated linoleic acid oxidation注:與空白組相比,**P<0.01;與Fe2+/VitC模型組相比,#P<0.05,##P<0.01

      2.6奇亞籽提取物對(duì)AAPH誘導(dǎo)蛋白氧化降解的抑制作用

      蛋白質(zhì)是自由基攻擊的重要目標(biāo),自由基介導(dǎo)的蛋白質(zhì)氧化損傷已被證實(shí)參與了多種疾病的發(fā)生和衰老過程[17]。自由基對(duì)蛋白質(zhì)的損傷作用主要包括肽鏈斷裂、蛋白質(zhì)分子間交聯(lián)聚合、氨基酸殘基修飾等。本研究采用AAPH熱分解產(chǎn)生的自由基攻擊BSA蛋白,使其多肽鏈發(fā)生斷裂并生成小分子質(zhì)量的肽鏈;經(jīng)考馬斯亮藍(lán)R-250染色后,原始蛋白條帶信號(hào)減弱,據(jù)此評(píng)價(jià)蛋白質(zhì)氧化降解的程度。

      圖7 奇亞籽提取物對(duì)AAPH誘導(dǎo)BSA蛋白氧化降解的影響Fig.7 Effects of chia seeds extracts on AAPH-induced BSA oxidative degradation

      由圖7可知,與空白組相比,模型組BSA蛋白與100 mol/L AAPH于37 ℃反應(yīng)6 h后發(fā)生明顯的氧化降解,導(dǎo)致其在66 kDa條帶減弱。與模型組相比,兩種奇亞籽提取物均能夠有效抑制AAPH誘導(dǎo)的BSA氧化降解,且抑制作用隨奇亞籽提取物添加濃度的升高而增強(qiáng),呈現(xiàn)良好的劑量-效應(yīng)關(guān)系。

      2.7奇亞籽中總多酚和總黃酮含量

      采用Folin-Ciocalteu法測(cè)得白奇亞籽和黑奇亞籽中總多酚含量分別為(3.40±0.09) mg CAE/g和(2.97±0.07) mg CAE/g;白奇亞籽和黑奇亞籽中總黃酮含量分別為(1.24±0.06) mg RE/g和(1.07±0.08) mg RE/g。統(tǒng)計(jì)學(xué)分析表明,白奇亞籽中總多酚和總黃酮含量均顯著高于黑奇亞籽(P<0.05),這與白奇亞籽提取物抗氧化活性強(qiáng)于黑奇亞籽提取物的試驗(yàn)結(jié)果相一致。

      3結(jié)論與討論

      因營(yíng)養(yǎng)豐富、食用價(jià)值高并具有多種健康促進(jìn)作用,奇亞籽成為了當(dāng)前食品營(yíng)養(yǎng)領(lǐng)域的研究熱點(diǎn)。2009年,歐洲食品安全局(EFSA)等多個(gè)權(quán)威組織對(duì)奇亞籽營(yíng)養(yǎng)、健康功效和安全性進(jìn)行了系統(tǒng)的的評(píng)價(jià),認(rèn)為在面包中添加5%的奇亞籽不會(huì)危害消費(fèi)者健康[18]。在我國(guó),根據(jù)國(guó)家衛(wèi)生計(jì)生委于2014年5月發(fā)布的《關(guān)于批準(zhǔn)塔格糖等6種新食品原料的公告》,奇亞籽被批準(zhǔn)為新食品原料,其使用范圍僅不能包括嬰幼兒食品。目前,國(guó)外對(duì)奇亞籽的研究多集于其加工特性和產(chǎn)品開發(fā)[19-20],而國(guó)內(nèi)對(duì)奇亞籽的研究則剛剛起步。本文采用多種抗氧化試驗(yàn)方法評(píng)價(jià)了白色奇亞籽和黑色奇亞籽提取物的體外抗氧化活性。試驗(yàn)結(jié)果表明,奇亞籽是一種重要的天然抗氧化劑和功能食品原料來源,在食品工業(yè)領(lǐng)域極具開發(fā)潛力。

      [1]KROGERUS K, GIBSON B R. 125thAnniversary review: diacetyl and its control during brewery fermentation[J]. Journal of the Institute of Brewing, 2013, 119 (3): 86-97.

      [1]ROBERTS R A, LASKIN D L, SMITH C V, et al. Nitrative and oxidative stress in toxicology and disease[J]. Toxicological Sciences, 2009, 112 (1): 4-16.

      [2]VETRANI C, COSTABILE G, DI MARINO L, et al. Nutrition and oxidative stress: a systematic review of human studies[J]. International Journal of Food Sciences and Nutrition, 2013, 64 (3):312-326.

      [3]FINLEY J W, KONG A N, HINTZE K J, et al. Antioxidants in foods: state of the science important to the food industry [J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2011, 59 (13): 6 837-6 846.

      [4]BERGER R G, LUNKENBEIN S, STR?HLE A, et al. Antioxidants in food: mere myth or magic medicine? [J]. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 2012, 52 (2): 162-171.

      [6]MOHD Al N, YEAP S K, HO W Y, et al. The promising future of chia,SalviahispanicaL [J]. Journal of Biomedicine and Biotechnology, 2012, 2012(1):171 956.

      [7]MOREIRA R, CHENLO F, TORRES M D. Effect of chia (SativahispanicaL.) and hydeocolloids on the rheology of gluten-free doughs based on chestnut flour[J]. LWT-Food Science and Technology, 2013, 50 (1): 160-166.

      [9]LI Q, YU N W, WANG Y P, et al. Extraction optimization ofBruguieragymnorrhizapolysaccharides with radical scavenging activities[J]. Carbohydrate Polymers, 2013, 96 (1): 148-155.

      [10]BENZIE I F F, STRAIN J J. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of “antioxidant power”: The FRAP assay [J]. Analytical Biochemistry, 1996, 239 (1): 70-76.

      [11]AKTUMSEK A, ZENGIN G, GULER G O, et al. Assessment of the antioxidant potential and fatty acid composition of fourCentaureaL. taxa from Turkey[J]. Food Chemistry, 2013, 141 (1): 91-97.

      [12]DAPKEVICIUS A, VENSKUTONIS R, VAN BEEK T A, et al. Antioxidant activity of extracts obtained by different isolation procedures from some aromatic herbs grown in Lithuania[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture, 1998, 77 (1): 140-146.

      [13]KAWAI Y, FUJII H, OKADA M, et al. Formation of Nε-(succinyl)lysineinvivo: a novel marker for docosahexaenoic acid-derived protein modification[J]. Journal of Lipid Research, 2006, 47 (7): 1 386-1 398.

      [14]XIANG Q S, LIU Q, XU L, et al. Carnosic acid protects biomolecules from free radical-mediated oxidative damageinvitro[J]. Food Science and Biotechnology, 2013, 22 (5): 1 381-1 388.

      [15]RE R, PELLEGRINI N, PROTEGGENTE A, et al. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay[J]. Free Radical Biology and Medicine, 1999, 26 (9/10): 1 231-1 237.

      [16]KULISIC T, RADONIC A, KATALINIC V, et al. Use of different methods for testing antioxidative activity of oregano essential oil[J]. Food Chemistry, 2004, 85 (4): 633-640.

      [17]BARAIBAR M A, LIU L, AHMED E K, et al. Protein oxidative damage at the crossroads of cellular senescence, aging, and age-related diseases[J]. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2012, 2012: ID 919832.

      [18]BRESSON J L, FLYNN A, HEINONEN M, et al. Opinion on the safety of “Chia seeds (SalviahispanicaL.) and ground whole Chia seeds” as a food ingredient[J]. The European Food Safety Authority Journal, 2009(996): 1-26.

      [19]STEFFOLANI E, MARTINEZ M M, LEN A E, et al. Effect of pre-hydration of chia (SalviahispanicaL.), seeds and flour on the quality of wheat flour breads [J]. LWT-Food Science and Technology, 2015, 61 (2): 401-406.

      Evaluation of antioxidant capacity of chia seeds extractsinvitro

      XIANG Qi-sen1, 2, SHI Guo-qing1, 2, ZHAO Zhen-yu1, 2, MA Yun-fang1, 2,CUI Xi-xi1, 2, SHEN Rui-ling1, 2*

      1(College of Food and Biological Engineering, Zhengzhou University of Light Industry, Zhengzhou 450002, China)2 (Henan Collaborative Innovation Center for Food Production and Safety, Zhengzhou 450002, China)

      ABSTRACTChia seeds are derived from the Salvia hispanica plant, which can offer various health benefits. The in vitro antioxidant potential, total phenolic and total flavonoid contents of white and black chia seeds were evaluated. All the investigated chia extracts exhibited dose-dependent DPPH· and ABTS+·radical radical-scavenging activities. The white chia seeds extracts exhibited much higher DPPH· and ABTS+·radical-scavenging activity than that of black chia seeds. The reducing capabilities of white and black chia extracts were (41.48+2.84) μmol/g and (29.70±2.43) μmol/g, respectively. Both extracts effectively inhibited linoleate free radical-mediated bleaching of β-carotene. In addition, the extracts significantly inhibited free radical-mediated linoleic acid peroxidation and the oxidative degradation of bovine serum albumin. The total phenolic contents of white and black chia seeds were (3.40±0.09) mg CAE/g and (2.97±0.07) mg CAE/g, respectively. The total flavonoid contents of white and black chia seeds were (1.24±0.06) mg RE/g and (1.07±0.08) mg RE/g, respectively. These results suggest that chia seeds could be considered as a good source of natural antioxidants and functional food ingredients, and offer a huge potential used in food industry.

      Key wordschia seeds; antioxidants; free radicals; ferric reducing antioxidant power

      DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.201606035

      基金項(xiàng)目:河南省高等學(xué)校重點(diǎn)科研項(xiàng)目(No.15A550024);鄭州輕工業(yè)學(xué)院博士科研基金資助項(xiàng)目(No.2013BSJJ079)

      收稿日期:2015-07-31,改回日期:2015-12-03

      第一作者:博士,講師(申瑞玲教授為通訊作者,E-mail: shenrl1967@163.com)。

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