李天芝,于新友,沈志強(qiáng)(.山東綠都生物科技有限公司,山東 濱州 56600;.山東省濱州畜牧獸醫(yī)研究院,山東 濱州 56600)
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一步法RT-PCR快速檢測豬瘟活疫苗中BVDV外源病毒方法的建立
李天芝1,于新友1,沈志強(qiáng)2
(1.山東綠都生物科技有限公司,山東 濱州 256600;2.山東省濱州畜牧獸醫(yī)研究院,山東 濱州 256600)
摘 要:為檢測商品化豬瘟細(xì)胞毒活疫苗中牛病毒性腹瀉病毒污染,根據(jù)牛病毒性腹瀉病毒5′端非編碼區(qū)基因保守序列設(shè)計引物,建立了檢測牛病毒性腹瀉病毒一步法反轉(zhuǎn)錄—聚合酶鏈(RT-PCR)方法,并對其特異性、敏感性進(jìn)行了研究。該一步法RT-PCR對牛病毒性腹瀉病毒擴(kuò)增結(jié)果為陽性,對照毒株擴(kuò)增結(jié)果均為陰性,對牛病毒性腹瀉病毒檢測的靈敏性為1pg總RNA量,應(yīng)用該方法,檢測了32批豬瘟細(xì)胞毒活疫苗樣品,以上結(jié)果表明該一步法RT-PCR方法檢測速度快、特異性強(qiáng)、敏感性高,可用于豬瘟細(xì)胞毒活疫苗中污染的牛病毒性腹瀉病毒外源病毒檢測。
關(guān)鍵詞:豬瘟;牛病毒性腹瀉病毒;檢測
豬瘟(CSF)由豬瘟病毒(CSFV)引起的一種豬高度傳染、致死性疾病,我國將豬瘟列為一類動物疫病[1]。牛病毒性腹瀉病(BVD)是由牛病毒性腹瀉病毒(BVDV)引起的以發(fā)熱、黏膜糜爛潰瘍、腹瀉、咳嗽、持續(xù)性感染與免疫耐受以及懷孕母牛流產(chǎn)、畸胎甚至死胎等為主要特征的牛傳染病[2],我國將牛病毒性腹瀉病列為禁止入境的二類檢疫對象。BVDV和CSFV同屬于黃病毒科瘟病毒屬中的成員,BVDV還可引起豬、駱駝、羊、鹿等多種動物感染發(fā)病[3],給各國養(yǎng)殖業(yè)造成了嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失。豬感染BVDV后可產(chǎn)生類似慢性豬瘟的臨床癥狀和病理變化,懷孕母豬可致發(fā)生流產(chǎn),產(chǎn)出畸形胎兒,免疫BVDV污染的豬瘟細(xì)胞毒活疫苗是豬感染BVDV一種重要途徑。BVDV主要通過生產(chǎn)過程中使用的牛血清、胰酶、牛睪丸等材料以及容器、設(shè)備污染豬瘟細(xì)胞活疫苗。對豬感染BVDV的現(xiàn)狀必須有清醒的認(rèn)識和必要的防控措施。本研究根據(jù)GenBank公布BVDV基因序列,針對具有很高保守性的5′端非編碼區(qū)基因設(shè)計1對特異性引物,建立了一種特異、敏感的BVDV檢測方法,以確保疫苗的安全、有效,為商品化豬瘟細(xì)胞毒活疫苗中BVDV污染提供一種有效的分子生物學(xué)檢測方法。
1.1病毒株與病料
牛病毒性腹瀉病毒、豬瘟病毒、豬繁殖與呼吸綜合征病毒、豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒、豬圓環(huán)病毒2型等均由本實驗室保存,32批豬瘟細(xì)胞毒活疫苗樣品購買自不同廠家。
1.2工具酶及試劑盒
AxyPrep體液病毒DNA/RNA小量試劑盒購自愛思進(jìn)生物技術(shù)(杭州)有限公司、DNA Marker、PCR相關(guān)試劑、限制性內(nèi)切酶、MD18-T載體、DNA凝膠回收試劑盒購自大連寶生物公司。
1.3RT-PCR引物設(shè)計與合成
參照GenBank中登錄的BVDV 5′端非編碼區(qū)序列,設(shè)計1對引物,上游引物:5′-AGGCTAG CCATGCCCTTAGT-3′,下游引物:5′-TCTGCAGCACCCTAT CAGG-3′,擴(kuò)增BVDV 5′端非編碼區(qū)序列244 bp,引物由上海生工生物工程股份有限公司合成。
1.4病毒基因組RNA的提取
按AxyPrep體液病毒DNA/RNA小量試劑盒使用說明書提取BVDV的RNA,并提取其他幾種病毒的RNA。
1.5一步法 RT-PCR擴(kuò)增及條件優(yōu)化
以RNA為模板進(jìn)行一步法RTPCR擴(kuò)增,反應(yīng)體系為20 μL。各參數(shù)為50℃逆轉(zhuǎn)錄30 min,95℃預(yù)變性3 min,然后進(jìn)入95 ℃ 20 S、56 ℃20 S、72 ℃ 20 S,共35個循環(huán),最后72 ℃延伸8 min。取5 μL產(chǎn)物,1.5%瓊脂糖凝膠電泳,觀察結(jié)果。同時對各擴(kuò)增條件進(jìn)行優(yōu)化,包括退火溫度(50~60 ℃梯度溫度,每2 ℃為1個梯度)、引物濃度(0.1~1.1μmol/L,每0.2μmol/L為1個梯度)等,反應(yīng)體系均為20μL。
1.6擴(kuò)增產(chǎn)物的檢測及鑒定
首先取擴(kuò)增產(chǎn)物5μL在1.5%的瓊脂糖凝膠上電泳,用DNA凝膠回收試劑盒回收目的片段。將目的片段與pMD18-T克隆載體在16 ℃恒溫金屬浴中過夜連接,轉(zhuǎn)化感受態(tài)菌株DH5α。挑取單個的轉(zhuǎn)化菌落,加LB溶液培養(yǎng)18 h后用質(zhì)粒提取試劑盒抽提質(zhì)粒,用PCR方法進(jìn)行鑒定,將陽性克隆送上海生工生物工程股份有限公司進(jìn)行測序鑒定,將測序結(jié)果與參照的BVDV序列同源性比較。
1.7特異性試驗
分別提取牛病毒性腹瀉病毒、豬瘟病毒、豬繁殖與呼吸綜合征病毒、豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒、豬圓環(huán)病毒2型的RNA,用已建立的方法進(jìn)行擴(kuò)增。
1.8敏感性試驗
BVDV 病毒提取RNA后定量,然后10倍梯度稀釋提取的病毒基因組RNA,使其分別相當(dāng)于含有10 ng RNA、1 ng RNA、100 pg RNA、10 pg RNA、1 pg RNA、0.1 pg RNA的含量,分別進(jìn)行一步法RT-PCR檢測,確定其敏感性。
1.9重復(fù)性試驗
用建立的一步法RT-PCR檢測方法,檢測3份牛病毒性腹瀉病毒、豬瘟病毒、豬繁殖與呼吸綜合征病毒、豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒、豬圓環(huán)病毒2型,重復(fù)檢測3次,以驗證本方法的重復(fù)性和穩(wěn)定性。
1.10豬瘟細(xì)胞毒活疫苗中BVDV外源病毒的檢測
將購買的32批豬瘟細(xì)胞毒活疫苗樣品稀釋為含有1頭份/200μL作為檢測樣品進(jìn)行一步法RT-PCR擴(kuò)增BVDV,同時設(shè)立陽性對照和陰性對照。并同時參照相關(guān)規(guī)程用細(xì)胞培養(yǎng)法檢驗并比較二者的符合性。
2.1擴(kuò)增產(chǎn)物的檢測及鑒定
PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)過1.5%瓊脂糖凝膠電泳,在244 bp處可見特異性擴(kuò)增帶,與預(yù)期大小相符(圖1)。挑取PCR鑒定陽性的菌液送上海生工生物工程股份有限公司測序。測序結(jié)果顯示,插入到T載體的基因片段的核苷酸序列與BVDV(登錄號:KJ620017)的序列相似性為100%。
圖1 牛病毒性腹瀉病毒擴(kuò)增結(jié)果
2.2特異性試驗
利用設(shè)計的引物和確定的最佳擴(kuò)增條件分別對牛病毒性腹瀉病毒、豬瘟病毒、豬繁殖與呼吸綜合征病毒、豬偽狂犬病毒、豬細(xì)小病毒、豬圓環(huán)病毒2型的核酸進(jìn)行一步法RT-PCR。結(jié)果6個樣品中只有BVDV能擴(kuò)增出大小為244 bp目的片段,而其他均未擴(kuò)增出相應(yīng)的片段(圖2),表明本試驗建立的方法有很好的特異性。
圖2 特異性試驗
2.3敏感性試驗
取5μ L PCR產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳分析,分別在約244 bp附近出現(xiàn)特異性條帶,與預(yù)期產(chǎn)物大小相符。從結(jié)果可以看出,引物的一步法RT-PCR檢測靈敏度可以達(dá)到1 pg RNA(圖3)。
圖3 敏感性試驗
2.4重復(fù)性試驗經(jīng)過3次重復(fù)操作,結(jié)果一致,說明建立的方法是穩(wěn)定、可靠的。
2.5豬瘟細(xì)胞毒活疫苗中BVDV外源病毒的檢測
用建立的BVDV 一步法 RT-PCR檢測方法,共檢測了32批商品化豬瘟細(xì)胞毒活疫苗樣品,其中有2批有BVDV污染。細(xì)胞培養(yǎng)法的檢測結(jié)果與一步法 RT-PCR檢測方法的結(jié)果相同。
范學(xué)政等[4]用RT-PCR方法對23批次的豬瘟疫苗進(jìn)行BVDV檢測,結(jié)果顯示,5批次豬瘟疫苗被BVDV污染,污染率達(dá)21.74%。范仲鑫等[5]用RTPCR方法對湖南省內(nèi)銷售的10個廠家48個批次的豬瘟細(xì)胞苗進(jìn)行BVDV病毒核酸檢測,結(jié)果:10個廠家的豬瘟細(xì)胞苗中有5個廠家檢出BVDV核酸陽性,48個批次中有9批次檢出BVDV核酸陽性,陽性率為18.75%。因此,必須對豬瘟活疫苗中的BVDV進(jìn)行嚴(yán)格檢驗,禁止接種BVDV污染的豬瘟活疫苗,按照《中華人民共和國獸藥典》(2010年版3部)外源病毒檢驗方法,對豬瘟細(xì)胞毒活疫苗中BVDV外源病毒的檢驗主要采取細(xì)胞培養(yǎng)法,該法操作復(fù)雜,耗時間長,傳統(tǒng)的兩部法RT-PCR檢測方法時間長,操作繁瑣,需要先反轉(zhuǎn)錄成cDNA再進(jìn)行PCR擴(kuò)增,本試驗建立的BVDV一步法RTPCR檢測方法操作簡單,不需要單獨做反轉(zhuǎn)錄,反轉(zhuǎn)錄與PCR擴(kuò)增一步完成,能在3 h內(nèi)檢出BVDV,不僅節(jié)省了時間,而且減少了操作步驟,可方便快捷地擴(kuò)增出目的片段,適合于大規(guī)模推廣應(yīng)用。本試驗建立的BVDV一步法RT-PCR檢測方法,共檢測了32批商品化豬瘟細(xì)胞毒活疫苗樣品,其中有2批有BVDV污染,與細(xì)胞培養(yǎng)法檢測結(jié)果一致。本試驗所建立的方法為豬場基層獸醫(yī)工作者開展豬瘟細(xì)胞毒活疫苗樣品BVDV污染的檢測提供了一種簡單、有效的分子生物學(xué)檢測方法。
參考文獻(xiàn)
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[2]殷震,劉景華.動物病毒學(xué)[M].2版.北京:科學(xué)出版社,1997:538-548.
[3]王新平,周緒斌.豬感染牛病毒性腹瀉病毒的研究進(jìn)展[J].動物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,1998,19(1):1-3.
[4]范學(xué)政,寧宜寶,王琴,等.用RTPCR方法檢測豬瘟細(xì)胞苗中污染牛病毒性腹瀉病毒[J].中國獸醫(yī)雜志,2010,46(1):8-10.
[5]范仲鑫,張朝陽,劉道新,等.豬瘟細(xì)胞苗污染牛病毒性腹瀉病毒情況調(diào)查[J].畜牧與獸醫(yī),2011,43(7):84-86.
(收稿日期:2015-11-09)
作者簡介:李天芝(1985-),女,助理研究員,碩士,主要從事動物傳染病診斷技術(shù)研究.
基金項目:山東省現(xiàn)代農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系生豬產(chǎn)業(yè)創(chuàng)新團(tuán)隊項目(SDAIT-06-011-14);濱州市科技發(fā)展計劃項目(2013GG0304)