陳紹淳 綜述,張 娟 審校
(汕頭大學(xué)醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院檢驗科,廣東汕頭 515000)
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·綜 述·
產(chǎn)碳青霉烯酶的肺炎克雷伯菌耐藥機制及流行病學(xué)研究進展*
陳紹淳 綜述,張 娟△審校
(汕頭大學(xué)醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院檢驗科,廣東汕頭 515000)
肺炎克雷伯菌; 碳青霉烯酶; 耐藥機制; 流行病學(xué)
自2009年報道產(chǎn)NDM-1的腸桿菌后,“超級細菌”這一概念為公眾所熟知,這一類耐碳青霉烯類抗生素的腸桿菌常表現(xiàn)為多重耐藥菌(MDR),甚至泛耐藥菌(PDR),對幾乎所有β-內(nèi)酰胺類抗生素耐藥,并使酶抑制劑(克拉維酸等)失效,使臨床治療陷入被動。腸桿菌主要耐藥機制為產(chǎn)碳青霉烯酶,水解β-內(nèi)酰胺類抗生素而表現(xiàn)耐藥性狀。肺炎克雷伯菌(CPKP)常見于人體呼吸道、消化道,是一種條件致病的腸桿菌科細菌,臨床檢出率高。近年來產(chǎn)碳青霉烯酶類CPKP報道日漸增多,盡管總體上檢出率并不高(除了南亞大陸,均<7%)[1-2]。但CPKP已在世界多地出現(xiàn)暴發(fā)流行,同時也有在自然環(huán)境中發(fā)現(xiàn)CPKP的報道[3]。表明其播散趨勢不容樂觀,研究CPKP的耐藥機制及其流行病學(xué)規(guī)律,對此類感染的防控具有重要意義。
碳青霉烯酶是一類能廣譜水解β-內(nèi)酰胺環(huán)的水解酶??梢允购笑?內(nèi)酰胺環(huán)的抗生素失效。是CRKP最常見的耐藥機制。編碼酶的基因既可位于基因組DNA上,也可位于質(zhì)粒上,因為水平基因轉(zhuǎn)移元件的存在,可以對各種耐藥基因進行整合,并通過質(zhì)粒進行傳播,使耐藥基因的傳播跨越生殖隔離,耐藥性更加具有傳播性。根據(jù)Ambler分子分類法,可以把碳青霉烯酶分為A、D、B 3類。
1.1 A類碳青霉烯酶 A類碳青霉烯酶是一類絲氨酸蛋白酶,包括KPC、IMI、SME、GES、NMC、SHV 6種。其中NMC、IMI和SME位于染色體上,而KPC、GES則常見于質(zhì)粒上,其余染色體和質(zhì)粒均可見。此類碳青霉烯酶可水解包括碳青霉烯類、頭孢菌素類、青霉素類和氨曲南。
對于CPKP,以KPC酶最為常見。KPC族酶自1996年于美國第1次報道以來,已經(jīng)發(fā)現(xiàn)KPC-1至KPC-11 11種亞型[4]。KPC酶對β-內(nèi)酰胺類抗生素水解能力強,應(yīng)用β-內(nèi)酰胺酶抑制劑(克拉維酸等)對其效果不佳。有報道稱應(yīng)用3倍藥物濃度的美羅培南、替加環(huán)素和克林霉素可以提高產(chǎn)KPC酶的CPKP感染患者生存率[5]。但對于這種用藥組合是否會對患者帶來不良反應(yīng),持續(xù)使用高濃度的碳青霉烯類藥物是否會進一步推高CPKP的最小抑菌濃度(MIC)值等問題有待進一步研究。KPC酶常位于IncA/C型和IncFIIK+FIBK型質(zhì)粒的Tn4401轉(zhuǎn)座子上,該質(zhì)粒具有宿主種類多、分布范圍廣的特點,更加速了KPC基因的傳播。KPC基因最初在相鄰的地域間傳播,自美國第1次報道,現(xiàn)已經(jīng)在亞洲、歐洲、中東地區(qū)普遍報道[6]。以往認(rèn)為CPKP多為院內(nèi)感染常見的普通型,極少對身體健康的人致病,近期中國大陸地區(qū)發(fā)現(xiàn)了攜帶KPC-2基因的莢膜K1型高致病性CPKP,此類病原菌對人有強致病性,高致病性的CPKP感染會給臨床用藥帶來很大挑戰(zhàn)[7]。
相對于KPC,其他幾種A類碳青霉烯酶報道較少,位于染色體上NMC、IMI和SME其擴散能力較差,并未呈現(xiàn)大規(guī)模流行的趨勢。GES屬于弱水解性的碳青霉烯酶,很多單表達GES的菌表現(xiàn)型常為對碳青霉烯類抗生素敏感性降低或者中介,根據(jù)耐藥性初篩易導(dǎo)致漏檢,在GES家族中,GES-5基因的水解能力最強,最初于韓國報道此酶在CPKP中的存在[8]。
1.2 B類碳青霉烯酶 B類碳青霉烯酶屬于金屬酶類,包括NDM、IMP、VIM、GIM、SPM。與其他兩類不同,其活性位點上包含金屬離子,對亞胺培南、厄他培南等常見碳青霉烯類抗生素有很強的水解活性。多位于可接合質(zhì)粒上,并與整合子、插入序列等可移動性基因元件結(jié)合,使其具有很強的傳播能力[9]。金屬酶活性可被乙二胺四乙酸(EDTA)所抑制,據(jù)此原理,亞胺培南藥敏紙片添加0.5 mmol/L的EDTA制成的組合紙片和單純亞胺培南紙片聯(lián)合應(yīng)用可用于檢測腸桿菌科的金屬酶表型。
B類酶中檢出率呈現(xiàn)地域分布特點,其中NDM酶自2009年在印度新德里檢出并因此得名,成為南亞地區(qū)檢出率最高的B類碳青霉烯酶,在印度某些城市,檢出率甚至超過60%,并且成為重要的輸出地區(qū)[10-11]。其最常見NDM-1型,多次在該地區(qū)暴發(fā)流行,現(xiàn)在攜帶NDM酶的CPKP在中國、韓國、日本等東亞國家檢出率也呈逐年升高。中國上海報道1次產(chǎn)NDM-1型的CPKP在新生兒科的暴發(fā)流行[12]。同時在歐洲、美洲大陸等與南亞并無接壤的地區(qū)也相繼報道,歐洲表達NDM-1酶的CPKP報道,多為輸入性病例,其余NDM型報道較少,西班牙、菲律賓相繼發(fā)現(xiàn)攜帶NDM-7型基因的CPKP,較于NDM-1,NDM-7型酶對碳青霉烯類水解效率更高,應(yīng)引起重視。VIM和IMP酶的水解效率更高,其多在歐洲及美洲大陸出現(xiàn)流行[13-14]。希臘發(fā)現(xiàn)攜帶VIM-19的CPKP,并確認(rèn)為本土案例,所幸的是,VIM和IMP酶檢出率并不高,其并未如NDM型酶迅速擴散。
1.3 D類碳青霉烯酶 D類碳青霉烯酶是一類苯唑西林酶,多位于染色體上,目前已發(fā)現(xiàn)超過400種OXA家族基因,其中232種對常見碳青霉烯類抗生素均有低水解活性,且不被克拉維酸等β-內(nèi)酰胺酶抑制劑抑制[15]。多見于鮑曼不動桿菌,CPKP偶見報道,主要為OXA-48型[16]。產(chǎn)OXA-48型酶的CPKP常見于土耳其、約旦、伊朗等中東、中亞地區(qū)報道,歐洲病例多以輸入性病例為主,一項法國的研究表明,納入研究的病例中,53%的OXA-48陽性CPKP感染患者均有國外旅游史[17]。近期西班牙的相關(guān)研究發(fā)現(xiàn),攜帶OXA-245的CPKP[18]。與其他幾種廣泛報道的碳青霉烯酶一樣,OXA也常與各種基因元件結(jié)合,并通過基因元件在不同菌株之間擴散。對一株分離自土耳其的OXA-48攜帶的CPKP的研究表明,其位于可接合的質(zhì)粒上,但并未與Ⅰ類整合子相結(jié)合[19]。攜帶OXA基因的CPKP常在用藥后出現(xiàn)耐藥性增強,據(jù)Lunha等[20]研究,當(dāng)攜帶OXA-48酶的CPKP孔蛋白Ompk36變異時,或合并表達其他碳青霉烯酶時,可表現(xiàn)出較原來更高水平的耐藥,這也是此類CRKP治療過程中耐藥性變化的主要原因。
2.1 分型技術(shù)的研究進展 克隆分型技術(shù)可以了解特定時間、空間內(nèi)細菌的分布情況,追蹤其傳播途徑,并通過分析不同克隆型之間情緣關(guān)系遠近來研究其演變規(guī)律。目前,用于細菌分型的技術(shù)主要有多位點序列分型(MLST)、脈沖電場凝膠電泳(PFGE)、利用隨機引物的腸桿菌基因間共有多重序列的ERIC-PCR分型和全基因組測序分型技術(shù)。其中PFGE技術(shù)具有分辨率高的特點,是公認(rèn)的細菌分型的金標(biāo)準(zhǔn)[21]。但操作繁瑣耗時,且目前尚未形成通用的標(biāo)準(zhǔn)化操作,各實驗室之間的分型結(jié)果可重復(fù)性差;ERIC-PCR法簡便易行,但分辨率較低[22];全基因組測序精度高,方便易行但其高昂費用阻礙了大規(guī)模應(yīng)用,MLST技術(shù)是基于全球菌株數(shù)據(jù)庫[23]。通過菌株比對進行分型,其優(yōu)點在于可以與數(shù)據(jù)庫中克隆型進行比對,分析其傳播規(guī)律,由于是建立在比對基礎(chǔ)上的技術(shù),其不足之處在于數(shù)據(jù)庫中沒有的克隆型無法進行分析,但隨著提交新克隆型的研究者增多,MLST的數(shù)據(jù)庫也正趨于完善,其在研究細菌傳播、演變上的價值愈加受到研究者的重視。
2.2 CPKP的MLST數(shù)據(jù)研究 把本地區(qū)的臨床菌株與MLST數(shù)據(jù)庫進行比對,可以了解本地區(qū)流行的主要克隆型,克隆型的流行同樣具有地域分布特性。由于KPC、NDM這兩型碳青霉烯酶傳播廣,受到關(guān)注高,以下主要介紹這兩型碳青霉烯酶攜帶菌株的克隆型流行情況。
由于KPC主要在CPKP上檢出,MLST數(shù)據(jù)庫中有記錄的相關(guān)克隆型達57種,未計入數(shù)據(jù)庫中的克隆型也呈多樣性。攜帶KPC基因中ST258的CPKP占46.3%,系統(tǒng)發(fā)育樹分析提示該型可能為攜帶KPC的CPKP的祖先型。通過全基因組測序技術(shù),對ST258的CPKP分析表明,該克隆型已經(jīng)成為美國醫(yī)療機構(gòu)常見的克隆型[24]。隨著KPC的擴散,越來越多的克隆型在各地發(fā)現(xiàn),在保加利亞大學(xué)附屬醫(yī)院,ST15型的產(chǎn)KPC-2酶的CPKP是其主要克隆型[25]。意大利的瓦萊達奧斯塔地區(qū)CPKP主要流行ST101、ST1789、ST512和ST405這4種型[26]。這些報道表明KPC攜帶的菌株正在增加,表明KPC基因的擴散趨勢不容樂觀。
表達NDM酶的CPKP最初發(fā)現(xiàn)于南亞,在2009年在臨床上第1次檢出之前,已于2006年在印度新德里的自然水體中檢出攜帶NDM-1基因的腸桿菌[3],并發(fā)現(xiàn)其屬于多個克隆型,表明早在NDM基因流行之前,在流行地環(huán)境中就已存在一個數(shù)量相當(dāng)?shù)姆N群,加之其與多種水平基因轉(zhuǎn)移元件相結(jié)合[27],具有播散能力強,短短幾年間便在世界范圍內(nèi)擴散,但因發(fā)現(xiàn)時間較短,收入MLST數(shù)據(jù)庫的產(chǎn)NDM型CPKP克隆型只有17個克隆型。但近年來發(fā)表的文獻表明,攜帶NDM的CPKP克隆型正在不斷增多,印證了此基因不斷播散的趨勢,在中國長沙報道了1次產(chǎn)NDM-1的CPKP暴發(fā),其主要克隆型為ST17[28]。在希臘,報道了兩次產(chǎn)NDM-1酶的ST11型CPKP暴發(fā)流行除了院內(nèi)監(jiān)測發(fā)現(xiàn)攜帶NDM基因的克隆型在增加,自然環(huán)境中的帶有NDM基因的種群也在不斷地發(fā)現(xiàn),在西班牙,3所醫(yī)院內(nèi)流行的產(chǎn)NDM-7酶的CPKP同屬ST437型,流行病學(xué)調(diào)查發(fā)現(xiàn),此型CPKP在當(dāng)?shù)丨h(huán)境中屬于優(yōu)勢種群,這也促成了此次流行[29-30]。這表明以往院內(nèi)流行的產(chǎn)NDM的CPKP開始在當(dāng)?shù)丨h(huán)境中出現(xiàn)。
自從抗生素問世,抗生素與細菌的“軍備競賽”就愈演愈烈,隨著碳青霉烯類抗生素應(yīng)用廣泛,細菌對其耐藥率也逐年攀升,CPKP作為院內(nèi)感染的常見菌種,表達碳青霉烯酶意味著其幾乎對所有的β-內(nèi)酰胺類抗生素耐藥,加之各種水平基因轉(zhuǎn)移元件的存在,使碳青霉烯酶耐藥基因具有易于擴散的特點,使其可通過水平傳播,擴散耐藥基因,目前發(fā)現(xiàn)越來越多的產(chǎn)碳青霉烯酶的CPKP克隆型,意味著攜帶碳青霉烯酶基因的CPKP種群正在不斷擴大,同時在多地自然環(huán)境中也發(fā)現(xiàn)種群數(shù)目可觀的環(huán)境庫,由此增加了相關(guān)菌株暴發(fā)流行的風(fēng)險,給臨床治療帶來極大挑戰(zhàn)。
通過使用PCR等分子生物學(xué)技術(shù)對碳青霉烯酶耐藥基因進行研究可以了解其耐藥機制,對研制針對性的新型抗生素具有啟迪意義,通過各種分型技術(shù)進行流行病學(xué)研究,有助于掌握各地CPKP的流行情況,研究其流行規(guī)律,并通過規(guī)范用藥、加強院感監(jiān)測等手段控制其流行。
[1]胡付品,朱德妹,汪復(fù),等.2012年中國CHINET碳青霉烯類耐藥腸桿菌科細菌的分布特點和耐藥性分析[J].中國感染與化療雜志,2014,14(5):382-386.
[2]胡付品,朱德妹,汪復(fù),等.2013年中國CHINET細菌耐藥性監(jiān)測[J].中國感染與化療雜志,2014,14(5):365-374.
[3]Castanheira M,Deshpande LM,Mathai D,et al.Early dissemination of NDM-1-and OXA-181-producing Enterobacteriaceae in Indian hospitals:report from the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program,2006-2007[J].Antimicrob Agents Chemother,2011,55(3):1274-1278.
[4]Yigit H,Queenan AM,Anderson GJ,et al.Novel carbapenem-hydrolyzing beta-lactamase,KPC-1,from a carbapenem-resistant strain of Klebsiella pneumoniae[J].Antimicrob Agents Chemother,2001,45(4):1151-1161.
[5]Tumbarello M,Viale P,Viscoli C,et al.Predictors of mortality in bloodstream infections caused by Klebsiella pneumoniae carbapenemase-producing K.pneumoniae:importance of combination therapy[J].Clin Infect Dis,2012,55(7):943-950.
[6]Kocsis E,Lo Cascio G,Piccoli M,et al.KPC-3 carbapenemase harbored in FIIk plasmid from Klebsiella pneumoniae ST512 and Escherichia coli ST43 in the same patient[J].Microb Drug Resist,2014,20(5):377-382.
[7]Wei DD,Wan LG,Deng Q,et al.Emergence of KPC-producing Klebsiella pneumoniae hypervirulent clone of capsular serotype K1 that belongs to sequence type 11 in Mainland China[J].Diagn Microbiol Infect Dis,2016,85(2):192-194.
[8]Bae IK,Lee YN,Jeong SH,et al.Genetic and biochemical characterization of GES-5,an extended-spectrum class A beta-lactamase from Klebsiella pneumoniae[J].Diagn Microbiol Infect Dis,2007,58(4):465-468.
[9]Wang X,Chen G,Wu X,et al.Increased prevalence of carbapenem resistant Enterobacteriaceae in hospital setting due to cross-species transmission of the bla NDM-1 element and clonal spread of progenitor resistant strains[J].Front Microbiol,2015,16(6):595.
[10]Kumarasamy KK,Toleman MA,Walsh TR,et al.Emergence of a new antibiotic resistance mechanism in India,Pakistan,and the UK:a molecular,biological,and epidemiological study[J].Lancet Infect Dis,2010,10(9):597-602.
[11]Jean SS,Hsueh PR.High burden of antimicrobial resistance in Asia[J].Int J Antimicrob Agents,2011,37(4):291-295.
[12]Zhu J,Sun L,Ding B,et al.Outbreak of NDM-1-producing Klebsiella pneumoniae ST76 and ST37 isolates in neonates[J].Eur J Clin Microbiol Infect Dis,2016,35(4):611-618.
[13]Papagiannitsis CC,Dolejska M,Izdebski R,et al.Characterisation of IncA/C2 plasmids carrying an In416-like integron with the blaVIM-19 gene from Klebsiella pneumoniae ST383 of Greek origin[J].Int J Antimicrob Agents,2016,47(2):158-162.
[14]Spyropoulou A,Papadimitriou-Olivgeris M,Bartzavali C,et al.Α ten year surveillance study of carbapenemase-producing Klebsiella pneumoniae in a tertiary care Greek University hospital:predominance of KPC over VIM or NDM-producing isolates[J].J Med Microbiol,2015,65(3):151-175.
[15]Djahmi N,Dunyach-Remy C,Pantel A,et al.Epidemiology of carbapenemase-producing Enterobacteriaceae and Acinetobacter baumannii in Mediterranean countries[J].Biomed Res Int,2014,2014(1):305784.
[16]Cetinkol Y,Yildirim AA,Telli M,et al.The investigation of oxacillinase/metallo-beta-lactamase genes and clonal analysis in carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae[J].Infez Med,2016,24(1):48-53.
[17]Liapis E,Pantel A,Robert J,et al.Molecular epidemiology of OXA-48-producing Klebsiella pneumoniae in France[J].Clin Microbiol Infect,2014,20(12):1121-1123.
[18]Pérez-Vázquez M,Oteo J,García-Cobos S,et al.Phylogeny,resistome and Mobile genetic elements of emergent OXA-48 and OXA-245 Klebsiella pneumoniae clones circulating in Spain[J].J Antimicrob Chemother,2016,71(4):887-896.
[19]Poirel L,Héritier C,Nordmann P.Chromosome-encoded ambler class D beta-lactamase of Shewanella oneidensis as a progenitor of carbapenem-hydrolyzing oxacillinase[J].Antimicrob Agents Chemother,2004,48(1):348-351.
[20]Lunha K,Chanawong A,Lulitanond A,et al.High-level carbapenem-resistant OXA-48-producing Klebsiella pneumoniae with a novel OmpK36 variant and low-level,carbapenem-resistant,non-porin-deficient,OXA-181-producing Escherichia coli from Thailand[J].Diagn Microbiol Infect Dis,2016,85(2):221-226.
[21]Vimont S,Mnif B,Fevre C,et al.Comparison of PFGE and multilocus sequence typing for analysis of Klebsiella pneumoniae isolates[J].J Med Microbiol,2008,57(10):1308-1310.
[22]Hulton CS,Higgins CF,Sharp PM.ERIC sequences:a novel family of repetitive elements in the genomes of Escherichia coli,Salmonella typhimurium and other enterobacteria[J].Mol Microbiol,1991,5(4):825-834.
[23]Bilhère E,Lucas PM,Claisse O,et al.Multilocus sequence typing of Oenococcus oeni:detection of two subpopulations shaped by intergenic recombination[J].Appl Environ Microbiol,2009,75(5):1291-1300.
[24]Mathers AJ,Stoesser N,Sheppard AE,et al.Klebsiella pneumoniae carbapenemase(KPC)-producing K.pneumoniae at a single institution:insights into endemicity from whole-genome sequencing[J].Antimicrob Agents Chemother,2015,59(3):1656-1663.
[25]Markovska R,Stoeva T,Schneider I,et al.Clonal dissemination of multilocus sequence type ST15 KPC-2-producing Klebsiella pneumoniae in Bulgaria[J].APMIS,2015,123(10):887-894.
[26]Del Franco M,Paone L,Novati R,et al.Molecular epidemiology of carbapenem resistant Enterobacteriaceae in Valle d′Aosta region,Italy,shows the emergence of KPC-2 producing Klebsiella pneumoniae clonal complex 101(ST101 and ST1789)[J].BMC Microbiol,2015,15(1):260.
[27]Thomas CM,Nielsen KM.Mechanisms of,and barriers to,horizontal gene transfer between bacteria[J].Nat Rev Microbiol,2005,3(9):711-721.
[28]Zhang X,Li X,Wang M,et al.Outbreak of NDM-1-producing Klebsiella pneumoniae causing neonatal infection in a teaching hospital in mainland China[J].Antimicrob Agents Chemother,2015,59(7):4349-4351.
[29]Voulgari E,Gartzonika C,Vrioni G,et al.The balkan region:NDM-1-producing klebsiella pneumoniae ST11 clonal strain causing outbreaks in Greece[J].J Antimicrob Chemother,2014,69(8):2091-2097.
[30]Seara N,Oteo J,Carrillo R,et al.Interhospital spread of NDM-7-producing Klebsiella pneumoniae belonging to ST437 in Spain[J].Int J Antimicrob Agents,2015,46(2):169-173.
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