譚普芳(綜述),南月敏,王榮琦(審校)
(河北醫(yī)科大學(xué)第三醫(yī)院中西醫(yī)結(jié)合肝病科,河北 石家莊 050051)
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·綜述·
血管內(nèi)皮生成因子與肝纖維化
譚普芳(綜述),南月敏*,王榮琦(審校)
(河北醫(yī)科大學(xué)第三醫(yī)院中西醫(yī)結(jié)合肝病科,河北 石家莊 050051)
[關(guān)鍵詞]肝硬化;血管內(nèi)皮生成因子;綜述文獻(xiàn)
doi:10.3969/j.issn.1007-3205.2016.06.033
肝纖維化是指肝細(xì)胞發(fā)生壞死及炎癥刺激時(shí)肝內(nèi)結(jié)締組織異常增生,彌漫性細(xì)胞外基質(zhì)過度沉積,導(dǎo)致肝組織結(jié)構(gòu)紊亂及功能受損的病理過程,是慢性肝炎進(jìn)展為肝硬化的重要階段。纖維化相關(guān)細(xì)胞因子表達(dá)失調(diào)是肝纖維化形成的重要機(jī)制。血管內(nèi)皮生成因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)及其相關(guān)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路在肝臟炎癥、纖維化發(fā)生發(fā)展過程中發(fā)揮著重要作用,包括促進(jìn)血管生成、肝星狀細(xì)胞(hepatic stellate cell,HSC)活化與遷移以及促進(jìn)炎癥、纖維化因子釋放,闡明其靶向調(diào)節(jié)作用可為肝纖維化基因治療及藥物的研發(fā)提供理論依據(jù)?,F(xiàn)就VEGF與肝纖維化關(guān)系的研究進(jìn)展綜述如下。
VEGF是血小板衍生生長因子家族中的一個(gè)成員,由2個(gè)相同亞單位通過二硫鍵結(jié)合形成的高度保守型二聚體糖蛋白,相對(duì)分子質(zhì)量約為45 000,能刺激內(nèi)皮細(xì)胞分裂、增殖和抑制內(nèi)皮細(xì)胞凋亡,同時(shí)可增加血管通透性,促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞遷移,誘導(dǎo)血管生成。其廣泛分布于人和動(dòng)物體內(nèi)的肝臟、心臟、骨骼、大腦和視網(wǎng)膜等組織中。VEGF作為一種促有絲分裂原,可通過與特異性受體結(jié)合,激活一系列的細(xì)胞信號(hào)通路而實(shí)現(xiàn)其生物學(xué)作用。VEGF可促進(jìn)肝臟內(nèi)皮細(xì)胞的分裂、增殖以及肝臟血管形成,亦可刺激HSC活化及遷移,從而促進(jìn)肝纖維化的發(fā)生發(fā)展。
VEGF具有普遍的致纖維化效應(yīng),對(duì)各種原因造成的肝纖維化和肝硬化的進(jìn)展均有促進(jìn)作用,其中包括病毒性肝炎、非酒精性脂肪性肝炎、膽汁淤積及藥物/毒物等導(dǎo)致的肝纖維化及肝硬化[1-2]。當(dāng)發(fā)生肝損傷肝纖維化時(shí),肝臟組織中VEGF及其受體的表達(dá)增加。Kwon 等[1]應(yīng)用免疫組織化學(xué)方法對(duì)慢性肝炎、肝硬化、原發(fā)性肝癌患者肝組織VEGF表達(dá)水平進(jìn)行研究,結(jié)果發(fā)現(xiàn)VEGF在肝硬化、原發(fā)性肝癌患者中的表達(dá)較慢性肝炎患者顯著增高;VEGF的表達(dá)水平與纖維化的程度呈正相關(guān),隨著纖維化的加重,肝臟VEGF的表達(dá)增高,并證實(shí)VEGF呈低表達(dá)患者的生存期較高表達(dá)患者明顯延長,VEGF可作為評(píng)價(jià)慢性肝臟疾病預(yù)后的預(yù)測(cè)因子。Coulon等[2]研究發(fā)現(xiàn),與正常對(duì)照組小鼠相比,膽堿蛋氨酸缺乏飲食小鼠,造模4周伴隨非酒精性脂肪性肝炎發(fā)生肝內(nèi)VEGF表達(dá)顯著上調(diào),至8周肝纖維化形成仍呈高水平表達(dá),通過血管鑄型證實(shí)肝纖維化小鼠肝臟新生血管增加,并伴有明顯肝內(nèi)血管床紊亂;應(yīng)用血管內(nèi)皮生成因子受體2(vascular endothelial growth factor receptor-2,VEGFR-2)阻滯劑治療6周后,肝臟脂肪變、炎癥、纖維化程度明顯減輕,從而阻止了非酒精性脂肪性肝炎/肝纖維化的進(jìn)程。
3.1VEGF促進(jìn)肝臟血管生成血管生成是促血管形成和抑制因子相互協(xié)調(diào)作用的復(fù)雜過程,正常情況下二者處于平衡狀態(tài),一旦此平衡打破則可能導(dǎo)致血管生成過度或血管退化加速。在肝組織修復(fù)和某些病理、生理情況下血管生成均發(fā)揮關(guān)鍵作用。肝臟新血管的生成和異常血管構(gòu)建與肝纖維化的形成以及肝硬化、肝癌的發(fā)生密切相關(guān)。形態(tài)學(xué)研究證實(shí),遭受慢性損傷后愈合的肝組織中血管形成的特點(diǎn)是,從已有的血管出芽形成新血管,大量的新生血管來源于門靜脈分支,在門靜脈系統(tǒng)和肝靜脈之間建立連接,導(dǎo)致再生肝細(xì)胞團(tuán)周圍形成血管叢和分流,不能建立正常的門脈分支,使血竇和肝細(xì)胞物質(zhì)交換障礙,并且由于VEGF誘導(dǎo)的新生血管不成熟、滲透率低,無法糾正組織缺氧,因而加劇肝臟損傷[3]。以膽堿蛋氨酸缺乏飲食誘導(dǎo)的非酒精性脂肪性肝纖維化小鼠肝組織中存在明顯的血管紊亂,肝細(xì)胞再生不伴隨正常的門脈血管恢復(fù)是肝纖維化難以逆轉(zhuǎn)的原因[2]。研究證實(shí),血管生長相關(guān)因子表達(dá)異常及病理性血管生成可顯著促進(jìn)肝纖維化的發(fā)展,肝纖維化程度和組織微血管形態(tài)改變呈正相關(guān)[4]。
VEGF促進(jìn)血管生成的機(jī)制主要有以下幾個(gè)方面:①VEGF與VEGFR-1結(jié)合,引發(fā)細(xì)胞表面活性蛋白酶的表達(dá),增加血管通透性,導(dǎo)致血管外基質(zhì)蛋白的積累,如纖維蛋白原和黏連蛋白,形成內(nèi)皮細(xì)胞遷移的支架和血管生成的臨時(shí)基質(zhì),從而引起內(nèi)皮細(xì)胞增殖和遷移;②通過VEGFR-2和磷脂酰肌醇-3-激酶(phosphoinositide-3 kinase,PI3K)誘導(dǎo)β1整合素失活,促使1型跨膜金屬蛋白酶激活基質(zhì)金屬蛋白酶2(matrix metalloproteinase-2,MMP-2),進(jìn)一步激活尿激酶型纖溶酶原激活物前體,使蛋白分解增加而引起血管外基質(zhì)成分改變,促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞的增殖和遷移并侵入基質(zhì)層[5];③VEGF與VEGFR-2胞外區(qū)的免疫球蛋白結(jié)構(gòu)域結(jié)合,引起VEGFR-2包內(nèi)激酶區(qū)特定酪氨酸殘基交叉磷酸化而活化,進(jìn)而激活蛋白激酶C(protein kinase C,PKC)-Ca2+-c-Raf-有絲分裂原活化蛋白激酶激酶 (mitogen activated protein kinase kinase,MEK)-有絲分裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)途徑,誘導(dǎo)血管內(nèi)皮細(xì)胞的分裂和增殖;④VEGF抑制內(nèi)皮細(xì)胞的凋亡。
3.2VEGF促進(jìn)HSC活化及遷移HSC激活并轉(zhuǎn)化為肌成纖維樣細(xì)胞是肝纖維化形成的中心環(huán)節(jié)。肝損傷時(shí),HSC活化并表達(dá)α平滑肌肌動(dòng)蛋白(α-smooth muscle actin,α-SMA),分泌Ⅰ型膠原,導(dǎo)致細(xì)胞外基質(zhì)的過度沉積,促進(jìn)肝纖維化的發(fā)生和發(fā)展。VEGF可通過直接影響HSC的非方向性遷移和趨化性,在肝纖維化形成過程中發(fā)揮重要作用。同時(shí),急性和慢性肝損傷導(dǎo)致缺氧時(shí),HSC是VEGF的重要來源。Copple等[6]研究證實(shí),HSC暴露于0.5%氧1 h,能顯著促進(jìn)HSC核內(nèi)缺氧誘導(dǎo)因子1α(hypoxia-inducible factor-1α,HIF-1α)蛋白表達(dá),并增加細(xì)胞核內(nèi)VEGF mRNA水平。研究表明,缺氧可顯著上調(diào)HSC內(nèi)VEGF和VEGFR2的表達(dá),VEGF刺激HSC 18 h,可呈劑量依賴性地增加入侵切口的HSC[7]。VEGF與VEGFR2結(jié)合激活Ras/細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(extracellular regulated protein kinases,ERK)信號(hào)通路,促進(jìn)HSC非方向性遷移和趨化性,招募HSC進(jìn)入慢性肝損傷、炎癥和組織重塑區(qū)域,亦可促進(jìn)HSC內(nèi)Ⅰ型膠原蛋白的合成及分泌,促進(jìn)肝纖維的形成。Nakamura等[8]研究發(fā)現(xiàn),VEGF促進(jìn)人HSC遷移,而應(yīng)用VEGFR抑制劑布立尼布后,VEGF促進(jìn)人HSC遷移的作用受到顯著抑制。
3.3VEGF促進(jìn)炎癥、纖維化因子釋放VEGF不僅可激活內(nèi)皮細(xì)胞和HSC,也可促進(jìn)多種炎癥及纖維化細(xì)胞因子的釋放。研究表明,慢性肝病患者血清白細(xì)胞介素6(interleukin-6,IL-6)、白細(xì)胞介素8(interleukin-8,IL-8)和結(jié)締組織生長因子(connective tissue growth factor,CTGF)水平顯著高于健康對(duì)照組,肝臟IL-6、IL-8、CTGF的表達(dá)與炎癥和纖維化的程度呈正相關(guān)[9-11]。體外研究表明,VEGF與VEGFR結(jié)合刺激IL-6、IL-8、CTGF的表達(dá)及單核細(xì)胞趨化蛋白1(monocytech emoattractant protein 1,MCP-1)的分泌,IL-6、IL-8、CTGF及MCP-1均可促進(jìn)HSC活化、黏附、增殖及遷移,導(dǎo)致細(xì)胞外基質(zhì)合成增多、降解減少,加速肝纖維化的發(fā)生發(fā)展[12]。
4.1缺氧上調(diào)VEGF表達(dá)肝損傷或炎癥時(shí),肝血竇內(nèi)皮細(xì)胞的去窗口化和基底膜形成,破壞了肝竇壁正常結(jié)構(gòu),致使肝內(nèi)微循環(huán)障礙,影響氧擴(kuò)散及肝細(xì)胞與循環(huán)血液間的物質(zhì)交換;HSC能動(dòng)性遷移促進(jìn)HSC進(jìn)入血竇,使血竇收縮,導(dǎo)致肝內(nèi)阻力增加;竇周間隙膠原的沉積加劇血竇腔隙的狹窄;肝小葉結(jié)節(jié)和纖維間隔的重建和異常血管網(wǎng)的形成進(jìn)一步限制了微血管血流量[13]。因此,組織缺氧貫穿于肝纖維化發(fā)生和發(fā)展的始終。
缺氧在慢性肝損傷、纖維化進(jìn)展中起著至關(guān)重要的作用。有研究發(fā)現(xiàn),缺氧大鼠肝臟廣泛纖維化和小葉結(jié)節(jié)形成,肝硬化發(fā)生率顯著高于正常大鼠肝臟,膽管結(jié)扎所致大鼠肝纖維化早期,缺氧主要發(fā)生在膽汁淤積的邊緣,隨著肝損傷加重,缺氧區(qū)域擴(kuò)大,伴有HIF-1α表達(dá)上調(diào),VEGF轉(zhuǎn)錄增多,促進(jìn)肝內(nèi)血管生成[13]。在四氯化碳誘導(dǎo)的小鼠肝纖維化模型中,VEGF、HIF-1α的表達(dá)與微血管密度增加,肝纖維化形成與肝細(xì)胞缺氧和血管形成有關(guān)[4]。因此,在肝損傷和修復(fù)中缺氧是誘導(dǎo)血管生成的重要因素,缺氧啟動(dòng)胞內(nèi)信號(hào)通路,激活轉(zhuǎn)錄因子HIF-1,HIF-1主要由HIF-1α和HIF-1β亞基組成的異二聚體。HIF-1結(jié)合到VEGF基因5′端上游基因序列的缺氧誘導(dǎo)因子反應(yīng)元件,上調(diào)VEGF的表達(dá)。VEGFR,尤其是VEGFR-2,在缺氧時(shí)表達(dá)上調(diào)。VEGF通過與VEGFR 結(jié)合,促進(jìn)血管內(nèi)皮細(xì)胞的增殖,提高血管通透性,從而促進(jìn)血管形成。
4.2瘦素促進(jìn)VEGF表達(dá)及VEGFR-2活化瘦素是由肥胖基因(位于人類染色體7q32)所編碼的含有146個(gè)氨基酸的蛋白質(zhì)類激素,主要來源于脂肪細(xì)胞,部分來源于HSC。研究發(fā)現(xiàn),慢性丙型肝炎、肝纖維化患者血清瘦素水平較健康對(duì)照組明顯升高[14];血清瘦素水平與肝炎活動(dòng)指數(shù)、肝纖維化程度呈顯著正相關(guān)[15];瘦素可促進(jìn)肝損傷后HSC的增殖與活化,上調(diào)α-SMA和Ⅰ型膠原的表達(dá),加速肝纖維化進(jìn)展[16]。瘦素調(diào)節(jié)VEGF、促進(jìn)肝纖維化的可能作用機(jī)制主要有以下方面。①瘦素促進(jìn)VEGF表達(dá):瘦素水平的上調(diào)可促進(jìn)HSC的活化和增殖,活化的HSC通過自分泌或旁分泌方式上調(diào)VEGF mRNA和蛋白的表達(dá)[17]。②瘦素上調(diào)HIF-1α表達(dá):Aleffi等[17]研究報(bào)道,瘦素和缺氧均可顯著增加HSC核內(nèi)HIF-1α表達(dá);MEK和PI3K/絲氨酸蛋白激酶 (serine-threonine kinase,Akt)信號(hào)通路上調(diào)HIF-1α的表達(dá)。預(yù)先應(yīng)用MEK抑制劑PD98059或PI3K/ Akt信號(hào)傳導(dǎo)通路抑制劑LY294002孵育HSC,可消除瘦素上調(diào)HIF-1α的作用。③瘦素促進(jìn)VEGFR2磷酸化:體外研究證實(shí),瘦素與瘦素受體b結(jié)合可促使VEGFR2迅速磷酸化,激活p38MAPK和Akt,上調(diào)環(huán)氧化酶2表達(dá),增加內(nèi)皮細(xì)胞擴(kuò)增、遷移和分化,促進(jìn)血管形成[18]。④瘦素與VEGF協(xié)調(diào)作用促進(jìn)血管形成:研究證實(shí),聯(lián)合應(yīng)用VEGF和瘦素較單用VEGF或瘦素具有更強(qiáng)的促血管形成作用,預(yù)防性應(yīng)用中和VEGF的單克隆抗體可消除瘦素和VEGF的聯(lián)合效應(yīng)。在四氯化碳誘導(dǎo)的肝纖維化模型中,肝臟瘦素受體與VEGF、α-SMA表達(dá)趨勢(shì)一致,提示對(duì)瘦素應(yīng)答的細(xì)胞同時(shí)表達(dá)VEGF[17]。
由此可見,瘦素介導(dǎo)的新血管形成對(duì)肝纖維化形成具有重要作用,瘦素通過調(diào)節(jié)VEGF表達(dá)及VEGFR-2活化促進(jìn)肝臟新血管形成。
VEGF在肝纖維化發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮重要作用,VEGF靶向調(diào)節(jié)可能為抗肝纖維化治療的策略之一。近來有研究報(bào)道,貝伐單抗(重組人類單克隆IgG1抗體,可以與VEGF結(jié)合阻斷其生物學(xué)活性)能顯著降低四氯化碳誘導(dǎo)的肝纖維化大鼠血清中天冬氨酸轉(zhuǎn)氨酶、丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶、總膽紅素的含量,下調(diào)肝組織中α-SMA、轉(zhuǎn)化生長因子β的表達(dá),亦可抑制HSC的活化和遷移,從而阻止或延緩肝臟纖維化進(jìn)展。應(yīng)用大鼠非酒精性脂肪性肝纖維化模型研究發(fā)現(xiàn),索拉菲尼(酪氨酸激酶抑制劑可抑制VEGFR-2、VEGFR-3)干預(yù)后大鼠肝臟膠原沉積及肝纖維化程度較模型組明顯改善,同時(shí),肝組織基質(zhì)金屬蛋白酶9的表達(dá)增加,基質(zhì)金屬蛋白酶組織抑制因子1(tissue inhibitor of metal protease-1,TIMP-1)、TIMP-2、IL-6、IL-10的表達(dá)顯著減少,提示VEGF靶向調(diào)節(jié)藥物可阻止或逆轉(zhuǎn)肝纖維化的進(jìn)程。
VEGF可通過促進(jìn)血管生成和HSC的遷移等作用促進(jìn)肝纖維的發(fā)生發(fā)展;缺氧、肝脂肪變及相關(guān)細(xì)胞因子表達(dá)異??纱龠M(jìn)VEGF的表達(dá),其靶向調(diào)節(jié)及其受體活性的抑制可能為阻止肝纖維化發(fā)生發(fā)展的重要策略之一。
[參考文獻(xiàn)]
[1]Kwon SH,Jeong SW,Jang JY,et al. Cyclooxygenase-2 and vascular endothelial growth factor in chronic hepatitis,cirrhosis and hepatocellular carcinoma[J]. Clin Mol Hepatol,2012,18(3):287-294.
[2]Coulon S,Legry V,Heindryckx F,et al. Role of vascular endothelial growth factor in the pathophysiology of nonalcoholic steatohepatitis in two rodent models[J]. Hepatology,2013,57(5):1793-1805.
[3]Elpek G?,Unal B,Bozova S. H-ras oncogene expression and angiogenesis in experimental liver cirrhosis[J]. Gastroenterol Res Pract,2013,2013:868916.
[4]Zhou YN,Sun MY,Mu YP,et al. Xuefuzhuyu decoction inhibition of angiogenesis attenua-tes liver fibrosis induced by CCl4 in mice[J]. J Ethnopharmacol,2014,153(3):659-666.
[5]Alexander RA,Prager GW,Mihaly-Bison J,et al. VEGF-induced endothelial cell migration requires urokinase receptor (uPAR)-dependent integrin redistribution[J]. Cardiovasc Res,2012,94(1):125-135.
[6]Copple BL,Bai S,Burgoon LD,et al. Hypoxia-inducible factor-1α regulates the expression of genes in hypoxic hepatic stellate cells important for collagen deposition and angiogenesis[J]. Liver Int,2011,31(2):230-244.
[7]Novo E,Povero D,Busletta C,et al. The biphasic nature of hypoxia-induced directional migration of activated human hepatic stellate cells[J]. J Pathol,2012,226(4):588-597.
[8]Nakamura I,Zakharia K,Banini BA,et al. Brivanib attenuats hepatic fibrosis in vivo and stellate cell activation in vitro by inhibition of FGF,VEGF and PDGF signaling[J]. PLoS One,2014,9(4):e92273.
[9]D?cke S,Lock JF,Birkenfeld AL,et al. Elevated hepatic chemerin mRNA expression in human non-alcoholic fatty liver disease[J]. Eur J Endocrinol,2013,169(5):547-557.
[10]Bi HJ,Wang J,Huang HS,et al. Influence of IFN on expression of chemokine receptor CXCR1,CXCR2 and their ligand IL-8 in the patients with chronic hepatitis B[J]. Xi Bao Yu Fen Zi Mian Yi Xue Za Zhi,2012,28(4):422-425.
[11]Gressner OA,Fang M,Li H,et al. Connective tissue growth factor (CTGF/CCN2) in serum is an indicator of fibrogenic progression and malignant transformation in patients with chronic hepatitis B infection[J]. Clin Chim Acta,2013,421:126-131.
[12]Liu C,Yuan X,Tao L,et al. Xia-yu-xue decoction (XYXD) reduces carbon tetrachloride (CCl4)-induced liver fibrosis through inhibition hepatic stellate cell activation by targeting NF-κB and TGF-β1 signaling pathways[J]. BMC Complement Altern Med,2015,15:201.
[13]Lee SH,Do SI,Kim HS. Hyperoxia accelerates progression of hepatic fibrosis by up-regulation of transforming growth factor-β expression[J]. World J Gastroenterol,2014,20(11):3011-3017.
[14]Korah TE,El-Sayed S,Elshafie MK,et al. Significance of serum leptin and adiponectin levels in Egyptian patients with chronic hepatitis C virus associated hepatic steatosis and fibrosis[J]. World J Hepatol,2013,5(2):74-81.
[15]Aksu HS,Kurtaran B,Onlen Y,et al. Association of insulin resistance,viral load,and adipokine levels with liver histology in patients with chronic hepatitis C:an observational,multicenter study in Turkey[J]. Eur J Gastroenterol Hepatol,2012,24(12):1393-1399.
[16]Zhang W,Niu M,Yan K,et al. Stat3 pathway correlates with the roles of leptin in mouse liver fibrosis and sterol regulatory element binding protein-1c expression of rat hepatic stellate cells[J]. Int J Biochem Cell Biol,2013,45(3):736-744.
[17]Aleffi S,Petral I,Bertolani C,et al. Upregulation of proinflammatory and proangiogenic cytokines by leptin in human hepatic stellate cells[J]. Hepatology,2005,42(6):1339-1348.
[18]Garonna E,Botham KM,Birdsey GM,et al. Vascular endothelial growth factor receptor-2 couples cyclo-oxygenase-2 with pro-angiogenic actions of leptin on human endothelial cells[J]. PLoS One,2011,6(4):e18823.
(本文編輯:趙麗潔)
[收稿日期]2015-07-08;[修回日期]2015-08-24
[基金項(xiàng)目]河北省自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(H2013206276)
[作者簡(jiǎn)介]譚普芳(1989-),女,湖南株洲人,河北醫(yī)科大學(xué)第三醫(yī)院醫(yī)學(xué)碩士研究生,從事慢性肝病診治研究。 *通訊作者。E-mail:nanyuemin@163.com
[中圖分類號(hào)]R575.2
[文獻(xiàn)標(biāo)志碼]A
[文章編號(hào)]1007-3205(2016)07-0862-04