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    酵母多糖影響人朗格漢斯細胞C型凝集素受體的研究

    2015-12-27 01:31:35傅方潔葛安興孔令明王雪蓮
    微生物學雜志 2015年6期
    關鍵詞:倍數酵母多糖

    傅方潔, 葛安興, 孔令明, 徐 琪, 王雪蓮*

    (1.中國醫(yī)科大學 臨床三系,遼寧 沈陽 110122;2.中國醫(yī)科大學基礎醫(yī)學院 病原生物學教研室,遼寧 沈陽 110122;3.中國醫(yī)科大學 臨床二系,遼寧 沈陽 110122)

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    酵母多糖影響人朗格漢斯細胞C型凝集素受體的研究

    傅方潔1, 葛安興2, 孔令明3, 徐 琪1, 王雪蓮2*

    (1.中國醫(yī)科大學 臨床三系,遼寧 沈陽 110122;2.中國醫(yī)科大學基礎醫(yī)學院 病原生物學教研室,遼寧 沈陽 110122;3.中國醫(yī)科大學 臨床二系,遼寧 沈陽 110122)

    探究酵母多糖(Zymosan)對人朗格漢斯細胞(Langerhans cells, LCs)C型凝集素受體(C-type lectin receptors, CLRs)的影響。收集健康志愿者血液樣本,Ficoll淋巴細胞分離液分離外周血單個核細胞,CD14磁珠分選CD14+細胞,用含有GM-CSF(1 000 U/mL)、IL-4(1 000 U/mL)、TGFβ-1(10 ng/mL)的培養(yǎng)液誘導培養(yǎng)LCs, Zymosan刺激LCs,8、24 h后收集細胞。提取Zymosan實驗組和對照組細胞RNA,實時RT-PCR分析5種CLRs(Dectin-1、Dectin-2、DC-SIGN、Mincle、MRC-2) mRNA的水平,擴增產物測序鑒定。共檢測10個個體來源LCs在酵母多糖刺激后其CLRs mRNA變化的情況。在10組樣本中,有6組Dectin-2受體mRNA較對照組增加(變化倍數≥2),其中3組增加明顯(變化倍數≥5),最大增加倍數為20.91;有5組Mincle受體mRNA較對照組增加(變化倍數≥2),其中4組增加明顯(變化倍數≥5),最大增加倍數為19.98;有1組MRC-2受體mRNA較對照組明顯增加(變化倍數≥5)。Dectin-1和DC-SIGN受體mRNA沒有增加。Zymosan能增加部分個體來源LCs內Dectin-2、Mincle和MRC-2受體mRNA的水平,而對Dectin-1和DC-SIGN受體mRNA的水平沒有影響。本研究結果完善了Zymosan調節(jié)機體免疫功能的作用機制。

    酵母多糖;朗格漢斯細胞;C型凝集素受體

    酵母多糖(Zymosan)是從酵母的細胞壁中提取出來的一類大分子糖類聚合物,其主要成分是葡聚糖、甘露聚糖和幾丁質[1-2]。近年研究發(fā)現Zymosan是一種有效的機體免疫調節(jié)劑,具有多種免疫調節(jié)功能,包括抗感染、抗腫瘤及免疫增強作用等[3-4]。朗格漢斯細胞(Langerhans cells,LCs)是一種廣泛存在于人體皮下組織中的樹突細胞(dendritic cells,DCs)[5]。在人體固有免疫中,LCs作為抗原提呈細胞,通過位于細胞上的模式識別受體(pattern recognition receptors, PRRs)識別病原相關分子模式(pathogen-associated molecular patterns, PAMPs)[6-8],在機體抗感染過程中發(fā)揮重要作用。C型凝集素受體(C-type lectin receptors, CLRs)是重要的PRRs之一,包括Dectin-1、Dectin-2、DC-SIGN、Mincle、MRC-2等,主要通過識別碳水化合物結構域(CRD),激發(fā)人體非特異性免疫系統的防御功能[9]。已有研究表明Dectin-1能夠識別β-(1,3)-葡聚糖結構,啟動Syk/CARD9-Bcl-10-MALT1級聯途徑和非典型 NF-κB信號途徑[10],促進DCs成熟和Th1、Th17細胞的分化,從而加強機體免疫應答[11]; DC-SIGN則通過結合多種抗原表面的甘露糖、巖藻糖結構,參與DCs遷移與抗原呈遞過程等,誘導T細胞活化,進而增強機體的免疫反應最終清除病原體[12];而MRC-2屬于甘露糖受體(mannose receptor,MR),可參與抗原捕獲,是一種抗原遞呈相關受體[13]。Dectin-2和Mincle是近年來新發(fā)現的CLRs,主要在多種巨噬細胞和DCs表面表達[14]。其中Dectin-2具有甘露糖結構結合位點,能夠識別白假絲酵母菌、結核分枝桿菌等多種微生物表面的甘露聚糖結構,活化下游Syk、PKCδ和CARD9-Bcl10-Malt1信號通路,釋放TNF、IL-2、IL-10等多種細胞因子,并促進炎性小體激活,從而有效促進人體固有免疫功能[15]。Mincle除具有甘露糖結構識別位點外,還受脂多糖等炎性因子刺激,壞死細胞產生的SAP130同樣可激活Mincle受體,從而減少炎癥損傷[16]。表明Mincle除具有激發(fā)自身免疫的作用外,還有一定的免疫監(jiān)視功能。本研究通過qRT-PCR方法檢測Zymosan體外刺激的LCs內包括Dectin-1、Dectin-2、MRC-2、DC-SIGN和Mincle在內的5種CLRs mRNA變化的情況,探究Zymosan參與免疫調節(jié)的可能機制。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    RPMI-1640培養(yǎng)基、小牛血清、Ficoll購自Fisher Inc.;CD14磁珠購自MiltenyiBiotec Co. Ltd.;rhGM-CSF、rhIL-4、TGF-β1購自PeproTech Inc.;Zymosan購自InvivoGen;RNA提取試劑盒購自Qiagen;DNase I購自Promega;引物由Beacon Design軟件設計;SuperScript?III First-Strand Synthesis System購自Life Technologies。

    1.2 方法

    1.2.1 外周血CD14+單核細胞分離 收集健康志愿者血液樣本10份,依次記為k1~k10組。應用Ficoll淋巴細胞分離液分離外周血單核細胞(PBMCs)。應用CD14 Isolation Kit分離CD14+細胞。細胞計數后備用。

    1.2.2 LCs誘導培養(yǎng)及Zymosan處理 用含有GM-CSF(1 000 U/mL)、IL-4(1 000 U/mL)、TGFβ-1(10 ng/mL)的RPMI-1640培養(yǎng)液誘導培養(yǎng)CD14+細胞(106個/mL),第3天補加細胞因子,7 d后獲得LCs。應用酵母多糖(10 μg/mL)刺激LCs,8和24 h后收集細胞備用。同時設陰性對照組。

    1.2.3 RNA提取 用RNeasy kit提取Zymosan實驗組和陰性對照組細胞的RNA,最后溶于30 μL無RNase水中。分光光度計測定RNA濃度。

    1.2.4 實時RT-PCR分析CLRs的mRNA ①cDNA構建:應用SuperScript?III First-Strand Synthesis System去除RNA樣品中RNase、DNA,構建cDNA。反應體系為20 μL,包括:10×buffer 2 μL,dNTP (10 mmol/L) 2 μL,MgCl2(25 mmol/L) 2.8 μL,Oligodt (50 mmol/L) 0.25 μL,R hex (50 μmol/L) 0.5 μL,RNase OUT (40 U/μL) 0.2 μL,DNase (1 U/μL) 0.75 μL,雙蒸水1.5 μL,RNA 10 μL(0.1 μg)。反應條件:37 ℃ 15 min;70 ℃ 12 min。每個反應體系加入0.5 μL SuperScript III反轉錄酶(200 U/μL),逆轉錄反應條件:25 ℃ 10 min;50 ℃ 50 min;70 ℃ 15 min。②引物序列的設計及PCR擴增:應用Beacon Design軟件設計所需引物,其序列見表1。PCR擴增反應按試劑盒說明書進行。以管家基因3-磷酸甘油醛脫氫酶(GAPDH)為內參照,所有樣本同時對目的基因和內參照GAPDH進行擴增,實時PCR結果以閾值循環(huán)數(cycle threshold,Ct)形式體現。反應體系體積12.5 μL:RNA free H2O 3.25 μL, SYBR Green 6.25 μL, 正向引物0.25 μL, 反向引物0.25 μL。在對應的孔中加入10倍稀釋的2.5 μL cDNA。反應條件:95 ℃ 3 min;95 ℃ 10 s, 60 ℃ 30 s,40個循環(huán)。③數據計算及分析:共檢測10個個體來源LCs在酵母多糖刺激后其受體mRNA變化的情況。以GAPDH為內參照,比較相同RNA樣品中目的基因的量。采用Ct相對定量法,即表達量倍數的變化用目的基因量=2-ΔΔCt法計算。ΔΔCt=(Ct目的基因-CtGAPDH)實驗組-(Ct目的基因- CtGAPDH)對照組。目的基因量表示樣本中目標cDNA表達量相對于相應的空白對照組的變化倍數。設定空白對照ΔΔCt=0, 空白對照組相應的基因量=1。

    表1 qRT-PCR引物序列

    1.2.5 擴增產物的鑒定 配制瓊脂糖凝膠,取PCR擴增產物加樣于瓊脂糖凝膠孔道中,電泳后回收,測序鑒定。

    2 結果與分析

    2.1 Zymosan對Dectin-2受體mRNA的影響

    在檢測的10組樣本中,有6組Dectin-2 mRNA在8或24 h時較對照組增加(增加倍數≥2),刺激24 h的樣本Dectin-2 mRNA均高于刺激8 h的樣本,其中k3、k5、k10三組增加明顯(增加倍數≥5),最大增加倍數為K10組刺激24 h時,可達20.91倍(圖1)。結果提示Zymosan可增加部分個體來源的LCs表面Dectin-2受體mRNA水平,推測Zymosan可能通過上調Dectin-2受體的表達,增強機體的免疫應答。

    2.2 Zymosan對Mincle受體mRNA的影響

    在檢測的10組樣本中,有5組Mincle受體mRNA在8或24 h時較對照組增加(變化倍數≥

    圖1 Zymosan對LCs Dectin-2受體mRNA的影響Fig.1 The Dectin-2mRNA in LCs stimulated by Zymosan

    2倍),刺激24 h時Mincle受體mRNA均高于刺激8 h時,其中k6、k8、k9、k10四組增加明顯(變化倍數≥5倍),最大增加倍數為K8組刺激24 h時,可達19.98倍(圖2)。結果提示Zymosan可增加部分個體來源的LCs表面Mincle受體mRNA水平,推測上調Mincle受體的表達可能是Zymosan增強機體免疫應答的機制之一。

    圖2 Zymosan對LCs Mincle受體mRNA的影響

    2.3 Zymosan對MRC-2受體mRNA的影響

    在檢測的9組樣本中,有1組MRC-2受體mRNA在8 h時較對照組明顯增加(變化倍數≥5倍,圖3),24 h時各組表達均無明顯變化。結果提示Zymosan可刺激部分個體來源LCs表面MRC-2受體表達上調,還提示MRC-2可能在Zymosan調節(jié)機體免疫反應的早期階段發(fā)揮作用。

    圖3 Zymosan對LCs MRC-2受體mRNA的影響

    2.4 Zymosan對Dectin-1和DC-SIGN受體mRNA的影響

    檢測的10組樣本在刺激8和24 h后,Dectin-1和 DC-SIGN受體mRNA的水平均無增加(圖4、圖5)。提示Zymosan可能不通過改變這兩種受體的表達數量參與免疫應答。

    圖5 Zymosan對LCs DC-SIGN受體mRNA的影響Fig.5 TheDC-SIGNmRNA in LCs stimulated by Zymosan

    3 討 論

    近年來,Zymosan對免疫系統的多種活性作用成為研究熱點。Zimmermann等[17]通過Zymosan體外刺激培養(yǎng)的小鼠胸腺細胞和脾淋巴細胞發(fā)現:Zymosan與αCD3、PLPp等聯合使用,能夠有效促進這些固有免疫細胞分泌促炎細胞因子、IL-6、IFN-γ等。Wei等[18]應用人體細胞的實驗研究發(fā)現Zymosan可通過刺激DCs產生大量GM-CSF、TNF-α等細胞因子促進Th1 和Th17細胞的激活,從而有效增強人體免疫應答。在進一步的免疫機制研究中,Yang等[19]發(fā)現Zymosan體外刺激小鼠肥大細胞,其細胞表面Dectin-1表達在刺激3 h時顯著增加,而6 h時下降,提示Zymosan可能通過改變免疫細胞表面受體數量參與免疫調節(jié)。Gonzalo等[20]發(fā)現DC-SIGN受體在Zymosan刺激后的DCs表面重排并介導細胞間黏附,提示DC-SIGN重排可能是Zymosan調節(jié)免疫反應的機制。

    由此推測,Zymosan可能通過與免疫細胞表面多種CLRs作用,改變CLRs表達情況,如數量或分布方式,或者改變其與細胞CLRs結合的能力,達到免疫調節(jié)的目的。Mincle和Dectin-2是近年來新發(fā)現且研究較多的CLRs,在DCs表面表達,能夠識別甘露糖結構并促進多種細胞因子的分泌[21-22]。因此,Mincle和Dectin-2很可能作為Zymosan作用的受體參與人體非特異性免疫應答。本研究結果顯示,Zymosan增加部分個體來源LCs內Mincle、Dectin-2 和MRC-2 mRNA的水平,提示細胞表面多種受體的表達增加,利于識別并結合更多抗原,開啟下游信號通路,促進多種細胞因子產生,增強機體的免疫應答。這可能是Zymosan發(fā)揮免疫調節(jié)作用的機制之一。

    本研究檢測了Zymosan刺激LCs后8和24 h這兩個時間點細胞內Dectin-1 mRNA的水平,結果顯示Dectin-1無明顯增加(圖4),結合Marshall[18]等對小鼠肥大細胞的實驗結果分析,即Dectin-1表達在Zymosan作用后3 h增加,而6 h下降,推測Dectin-1可能參與Zymosan刺激早期的免疫反應(0~6 h),而在后期(8~24 h)無明顯反應。也可能是LCs和肥大細胞兩種不同的免疫細胞對Zymosan的反應不同。同時在檢測中發(fā)現,Zymosan刺激LCs后,其表面MRC-2表達在8 h時明顯高于24 h,推測MRC-2可能也參與早期免疫反應。Zymosan不能刺激DC-SIGN的水平增加(圖5),間接佐證了Zymosan通過刺激免疫細胞表面DC-SIGN重排而非數量增加參與免疫反應。

    本研究證實Zymosan能夠明顯增加部分個體來源LCs內Dectin-2、Mincle和MRC-2的水平,且間接佐證了其對Dectin-1和DC-SIGN的刺激作用,本研究結果進一步完善了Zymosan調節(jié)機體免疫反應的機制,即通過改變免疫細胞表面CLRs的受體數量或分布方式達到免疫調節(jié)的目的。研究結果也提示Zymosan可能作為臨床輔助治療藥物或免疫佐劑的發(fā)展方向。

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    The Impact of Zymosan on C-Type Lectin Receptors on Human Langerhans Cells

    FU Fang-jie1, GE An-xing2, KONG Ling-ming3, XU Qi1, WANG Xue-lian2

    (1.ThirdDept.ofClinic.Med. 98K, 2.Teach. &Res.Div.ofPathog.Organism,Coll.ofBasicMed.Sci.,3.SecondDept.ofClinic.Med. 98K,ChinaMed.Uni.,Shenyang110122)

    The impact of zymosan on C-type lectin receptors (CLRs) on human Langerhans cells (LCs) was investigated. Blood samples from healthy volunteers were collected, and PBMCs were isolated using Ficoll lymphocyte isolating liquid, and CD14+cells were isolated using CD14 microbeads. The LCs were induce-cultured in medium liquid containing GM-CSF (1 000 U/mL), IL-4 (1 000 U/mL), TGFβ-1 (10 ng/mL); LCs were stimulated with zymosan and collected the cells after 8 h and 24 h. RNA was extracted from zymosan group and control group, then the levels of 5 CLRs (Dectin-1, Dectin-2, DC-SIGN, Mincle, MRC-2) mRNA were analyzed by real-time RT-PCR, the amplified products were identified by sequencing. The variances of CLRs mRNA of a total 10 individuals LCs after stimulated with zymosan were determined and tested. The results showed that among the 10 samples, 6 groups Dectin-2 receptor mRNA increased as compared with the control group (variance times ≥2), among them 3 groups significantly increased (variance times ≥5), the largest increasing times was 20.91; 5 groups Mincle receptor mRNA increased as compared with the control group (variance times ≥2), among them 4 groups significantly increased (variance times ≥5), the largest increasing times was 19.98; 1 group MRC-2 receptor mRNA significantly increased as compared with the control group (variance times ≥5). Dectin-1 and DC-SIGN receptor mRNA were not increased. Therefore, zymosan can increase part of individual mRNA levels of Dectin-2, Mincle and MRC-2 receptor mRNA in LCs and has no effect on mRNA levels of the Dectin-1 and DC-SIGN receptor. This study perfected the mechanism of zymosan on regulating immune response.

    zymosan; Langerhans cells; C-type lectin receptor

    國家自然科學基金項目(81472439,81101989)

    傅方潔 女,七年制本科在讀。研究方向為人乳頭瘤病毒相關疾病的生物治療。E-mail: ffj0324@hotmail.com

    * 通訊作者。女,副教授。研究方向為人乳頭瘤病毒相關疾病的生物治療。E-mail:wxlcmu@hotmail.com

    2015-04-29;

    2015-06-07

    Q539

    A

    1005-7021(2015)06-0069-05

    10.3969/j.issn.1005-7021.2015.06.013

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