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      超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測定甜櫻桃果皮中花青苷類物質(zhì)

      2015-12-26 01:57:14魏海蓉易錫斌宗曉娟王甲威劉慶忠
      色譜 2015年6期
      關鍵詞:花青矢車菊類物質(zhì)

      魏海蓉, 易錫斌, 譚 鉞, 宗曉娟, 王甲威, 徐 麗, 劉慶忠*

      (1. 山東省果樹研究所,山東省果樹生物技術育種重點實驗室,山東 泰安271000;2. 山東農(nóng)業(yè)大學園藝科學與工程學院,山東 泰安271018)

      甜櫻桃果實色澤艷麗,營養(yǎng)豐富,且具有一定的醫(yī)療保健價值,因而備受消費者的青睞。甜櫻桃果實的紅色主要決定于花青苷類物質(zhì)的組成和含量[1]?;ㄇ嘬帐且环N廣泛存在于植物體中的水溶性天然色素,屬黃酮類化合物,在植物體內(nèi)主要呈現(xiàn)藍色、紫色和紅色[2]。甜櫻桃果皮中的花青苷不僅使果實具有艷麗的色澤,而且在抗氧化[3],抗腫瘤、防止冠狀動脈心臟疾病、抵御病原體[4]和紫外輻射[5]等方面有重要的營養(yǎng)和藥理作用。研究表明甜櫻桃的紅色品種比黃色品種的抗氧化能力強[6]。因此甜櫻桃中花青苷的含量是決定其品質(zhì)的重要因素之一。

      目前國內(nèi)外關于花青苷的研究主要集中在分離、鑒定、生物合成機理和保健功能等方面。關于花青苷的檢測方法,目前常用紫外-可見分光光度法[7]、高效液相色譜法[8,9]和高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[10,11]。其中高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法比其他方法在快速分離、準確定性和靈敏度等方面更具有優(yōu)勢。但到目前為止,有關甜櫻桃的超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(UPLC-MS/MS)檢測方法尚未見報道。本研究以甜櫻桃成熟果實為研究對象,建立了UPLC-MS/MS 測定方法,利用多反應監(jiān)測(MRM)模式對甜櫻桃果皮中的花青苷組分進行了定性和定量分析,旨在為甜櫻桃的品質(zhì)評價和優(yōu)異種質(zhì)挖掘提供科學依據(jù)。

      1 實驗部分

      1.1 儀器、試劑與試材

      Triple Quad 4500 液相色譜-三重四極桿串聯(lián)質(zhì)譜聯(lián)用儀,配電噴霧離子(ESI)源(美國AB SCIEX公司);ELGAPURELAB Ultra 超純水儀(英國ELGALabWater 公司);AB-135 型電子分析天平(梅特勒-托利多(上海)有限公司);JA 5003B 型電子分析天平(上海精密科學儀器有限公司);RE-52A旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(鞏義市予華儀器有限責任公司);Centrifuge 5430R 型離心機(德國Eppendorf 公司);TH-100BQX 型數(shù)控超聲波清洗機(濟寧天華超聲電子儀器有限公司)。

      乙腈、甲醇(色譜純)(德國Merck 公司);甲酸(色譜純)(天津科密歐化學試劑有限公司);7 種花青苷標準物質(zhì)為矢車菊素-3-葡萄糖苷(cyanidin-3-glucoside,CAS:7084-24-4)、矢車菊素-3-蕓香糖苷(cyanidin-3-rutinoside,CAS:18719-76-1)(Sigma公司);芍藥素-3-葡萄糖苷(peonidin-3-glucoside,CAS:6906-39-4)、芍藥素-3-蕓香糖苷(peonidin-3-rutinoside,CAS:27539-32-8)、天竺葵素-3-蕓香糖苷(pelargonidin-3-rutinoside,CAS:33978-17-5)、矢車菊素-3-木糖苷(cyanidin-3-xyloside,CAS:29761-24-8)和飛燕草素-3-葡萄糖苷(delphinidin-3-glucoside,CAS:6906-38-3)(法國Extrasynthese 公司)。

      甜櫻桃樣品:采自山東省果樹研究所實驗基地。

      1.2 標準溶液的配制

      精確稱取各標準物質(zhì)1.00 mg,分別用含0.1%(v/v,下同)甲酸的甲醇定容至10 mL,配成100 mg/L 的單標準儲備液。分別取各單標準儲備液100 μL 用含0.1% 甲酸的甲醇定容到10 mL,配成1 000 μg/L 的混合標準儲備液。依次取0、0.1、0.3、0.5 和1.0 mL 上述混合標準儲備液,用甲醇-0.1% 甲酸水溶液(2 ∶8,v/v)定容至10 mL,配成所需濃度的混合標準工作液,于4 ℃避光保存。

      1.3 樣品前處理

      1.3.1 提取

      取1 ~2 mm 厚甜櫻桃成熟果實的果皮0.5 g,加液氮研磨后,置于50 mL 離心管中,準確加入甲醇-0.1% 甲酸水溶液(2 ∶8,v/v)提取液15 mL,超聲波振蕩10 min,放入4 ℃冰箱中浸提24 h,然后于12 000 r/min 下離心15 min,收集上清液于50 mL 離心管中,待凈化。

      1.3.2 凈化

      AB-8 型大孔樹脂的活化方法:用95% 乙醇浸泡24 h,過濾后用蒸餾水洗至無味;再用5% 氫氧化鈉浸泡12 h,過濾后用蒸餾水洗至中性;最后用5%鹽酸溶液浸泡12 h,過濾后用蒸餾水洗至中性,用蒸餾水浸泡,備用。

      將活化完全的AB-8 型大孔樹脂裝入玻璃層析柱中,將待凈化液上柱,流速為1.2 mL/min,待大孔樹脂吸附飽和后,用蒸餾水淋洗去除水溶性維生素和可溶性糖類等極性小分子,然后用80% 乙醇水溶液洗脫,收集洗脫液,于35 ℃下旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至浸膏狀,用甲醇-0.1% 甲酸水溶液(2 ∶8,v/v)復溶并定容至2 mL,過0.22 μm 有機微孔濾膜,濾液壓入2 mL 進樣瓶,供UPLC-MS/MS 測定。

      1.3.3 空白基質(zhì)

      樣品被多次提取花青苷后其殘渣為空白基質(zhì)。

      1.4 UPLC-MS/MS 條件

      1.4.1 UPLC 條件

      色譜柱為Phenomenex Kinetex(100 mm×4.6 mm,2.6 μm),柱溫為35 ℃,進樣量為5 μL,流動相A為含0.1%甲酸的水溶液(含5 mmol/L 甲酸銨),流動相B 為100%甲醇,流速為0.3 mL/min。梯度洗脫程序:0 ~1.0 min,20% B;1.0 ~5.5 min,20% B ~70% B;5.5 ~7.8 min,70% B ~80% B;7.8 ~8.0 min,80% B ~20% B;8.0 ~9.0 min,20% B。

      1.4.2 MS/MS 條件

      電噴霧離子源,正離子電離,MRM 掃描模式,氣簾氣(curtain gas)壓力275.79 kPa,離子化電壓(ion spray voltage)+4 500 V,離子源溫度550 ℃,電噴霧氣(ion source gas 1)壓力344.74 kPa,輔助加熱氣(ion source gas 2)壓力379.21 kPa,碰撞氣(collision gas)壓力55.16 kPa,駐留時間(dwell time)40 ms。7 種化合物優(yōu)化后的母離子Q1、子離子Q3、解簇電壓(declustering potential,DP)、碰撞能(collision energy,CE)、出口電壓(collision cell exit potential,CXP)見表1。

      表1 MRM 模式下7 種花青苷類物質(zhì)的UPLC-MS/MS 優(yōu)化條件Table 1 Optimized UPLC-MS/MS parameters for the analysis of the seven anthocyanins in MRM mode

      2 結(jié)果與討論

      2.1 提取溶劑的選擇

      花青苷極性較強,當提取溶劑的極性和花青苷極性相近時,花青苷在提取溶劑中的溶解性最好,溶出率最大[12]。文獻[13]中采用的花青苷提取溶劑體系有鹽酸/甲醇/水、鹽酸/乙醇/水、甲酸/甲醇/水、甲酸/乙醇/水、酒石酸/乙醇/水和10% 檸檬酸水溶液等?;ㄇ嘬赵谳^強的酸性條件下相對穩(wěn)定并且呈色效果好[14]。因此,本實驗分別以甲醇、乙醇和丙酮分別與鹽酸、乙酸和甲酸組成的酸性混合溶液為提取劑進行提取,采用分光光度計測定總花青苷的相對含量,以比較以上9 種提取劑的提取效果。結(jié)果發(fā)現(xiàn),不同溶劑的提取效果差異較大,鹽酸與甲醇、乙醇和丙酮組成的酸性提取液的提取效果整體好于甲酸和乙酸與3 種有機溶劑組成的酸性提取液(見圖1)。其中,0.1% (v/v,下同)鹽酸甲醇的提取效果最好。因此,本實驗采用0.1% 鹽酸甲醇作為甜櫻桃果皮中花青苷的提取溶劑。

      2.2 凈化條件的優(yōu)化

      圖1 不同溶劑提取甜櫻桃中花青苷類物質(zhì)的效果Fig.1 Extraction efficiency of different solvents for the anthocyanins in sweet cherry

      目前,花青苷類物質(zhì)的純化方法多采用大孔樹脂法[15]。本實驗比較了AB-8、HPD-100A 和HPD-450A 3 種大孔樹脂對甜櫻桃果皮中花青苷的靜態(tài)吸附和解吸效果。結(jié)果表明,AB-8 對花青苷類物質(zhì)的吸附作用最強,吸附率為81.48%;HPD-450A 的吸附作用次之,吸附率為77.36%;HPD-100A 的吸附作用最弱,吸附率為62.76%。AB-8 和HPD-100A 對花青苷的解吸效果差異不明顯,分別為73.58% 和74.30%;HPD-450A 的解吸效果較差,僅為62.34%。綜合考慮3 種大孔樹脂的吸附和解吸效果,本實驗選擇AB-8 作為花青苷類物質(zhì)的凈化吸附劑。

      2.3 UPLC 條件的優(yōu)化

      花青苷類物質(zhì)的極性較大,文獻[16,17]中目標化合物在C18 柱上能夠很好地分離。本實驗采用Phenomenex Kinetex 色譜柱分離,比較了甲醇和乙腈、水和0.1% 甲酸水溶液作為流動相的分離效果。結(jié)果表明,甲醇的分離度優(yōu)于乙腈,0.1% 甲酸水溶液優(yōu)于水。實驗在0.1% 甲酸水溶液中加入5 mmol/L 甲酸銨后,峰形得到明顯改善,靈敏度提高。因此,流動相A 采用含5 mmol/L 甲酸銨的0.1% 甲酸水溶液,流動相B 采用甲醇,進行梯度洗脫。在此條件下,7 種化合物能夠得到較好的分離和檢測,總離子流圖見圖2a。

      2.4 MS/MS 條件的優(yōu)化

      本實驗根據(jù)花青苷類物質(zhì)的分子結(jié)構特征,在電噴霧正離子模式下,對毛細管電壓、錐孔電壓、脫溶劑溫度、脫溶劑氣壓力和錐孔氣壓力等質(zhì)譜參數(shù)進行了優(yōu)化。優(yōu)化后進行母離子Q1 掃描,7 種化合物的母離子均以[M+H]+形式存在,其m/z 分別為595.2、449.2、463.3、609.2、579.2、419.2 和465.1(見表1)。確定母離子后,再對母離子進行二級質(zhì)譜掃描,從而得到子離子信息和碰撞能量。每種物質(zhì)選擇3 個信號較強的子離子與母離子組成檢測離子對,采用MRM 檢測模式對待測物進行定性和定量檢測。7 種花青苷的選擇離子譜圖見圖2。

      2.5 線性范圍、檢出限和定量限

      用0.1% 甲酸甲醇溶液將7 種花青苷配制成質(zhì)量濃度分別為0、10、30、50 和100 μg/L 的混合標準溶液,在優(yōu)化的UPLC-MS/MS 條件下進行測定。以定量離子峰面積(y)對質(zhì)量濃度(x,μg/L)做標準曲線。結(jié)果顯示,7 種化合物的線性相關系數(shù)(r2)為0.996 4 ~0.999 3(見表2),表明各化合物在0 ~100 μg/L 范圍內(nèi)線性關系良好,能滿足檢測需求。采用在空白基質(zhì)中添加目標化合物的方法,依據(jù)色譜峰3 倍信噪比確定檢出限,以10 倍信噪比確定本方法的定量限,結(jié)果見表2。

      圖2 7 種花青苷類物質(zhì)標準溶液(10 μg/L)的總離子流圖和MRM 譜圖Fig.2 Total ion current chromatogram and select ion chromatograms of the seven anthocyanins (10 μg/L)

      表2 7 種化合物的線性方程、相關系數(shù)、檢出限和定量限Table 2 Linear equations,correlation coefficients (r2),limits of detection (LODs)and limits of quantification (LOQs)of the seven anthocyanins

      2.6 加標回收率

      以甜櫻桃果皮提取液為檢測試樣,根據(jù)各化合物的背景值,分別添加3 種不同濃度的7 種花青苷類物質(zhì)進行加標回收率實驗,每個添加水平重復測定6 次,結(jié)果見表3。7 種花青苷類物質(zhì)的加標回收率為97.2% ~105.4%,相對標準偏差(RSD)為1.9% ~5.8%,說明本方法重復性好,準確度高,符合檢測要求。

      表3 甜櫻桃品種“美早”果皮中7 種花青苷類物質(zhì)的加標回收率和相對標準偏差(n=6)Table 3 Recoveries and relative standard deviations(RSDs)for the seven anthocyanins spiked in the peel of“Tieton”sweet cherry fruits(n=6)

      2.7 實際樣品的測定

      采用本文建立的方法對甜櫻桃紅色品種“美早”和純黃色品種“13-33”的成熟果實樣品進行了定性和定量檢測。從紅色品種“美早”中共檢測出矢車菊素-3-蕓香糖苷、矢車菊素-3-葡萄糖苷、芍藥素-3-葡萄糖苷、芍藥素-3-蕓香糖苷、天竺葵素-3-蕓香糖苷、矢車菊素-3-木糖苷和飛燕草素-3-葡萄糖苷7 種花青苷類物質(zhì),其含量分別為742.5、582.5、10.1、14.8、34.2、4.3 和14.2 mg/kg。黃色品種“13-33”中僅檢測出矢車菊素-3-蕓香糖苷、矢車菊素-3-葡萄糖苷、飛燕草素-3-葡萄糖苷和矢車菊素-3-木糖苷4 種花青苷類物質(zhì),其含量僅分別為3.3、5.0、1.2 和1.1 mg/kg??梢姴煌贩N的甜櫻桃中花青苷類物質(zhì)的含量差異非常大。

      3 結(jié)論

      本研究建立了超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜多反應監(jiān)測模式對甜櫻桃果皮中的花青苷類物質(zhì)進行定性和定量分析的方法。實驗結(jié)果表明,該方法可以快速、準確地對甜櫻桃果皮中的花青苷類物質(zhì)進行定性及定量測定。通過樣品測定發(fā)現(xiàn),不同顏色的甜櫻桃品種中花青苷類物質(zhì)組分和含量差異很大,紅色甜櫻桃品種中含有豐富的花青苷類物質(zhì),而黃色品種中花青苷類物質(zhì)含量極少。

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