程力,張獻(xiàn)梅,顧正彪,3,洪雁,3,李兆豐,3,李才明
1(江南大學(xué) 食品學(xué)院,江蘇無(wú)錫,214122)
2(江南大學(xué)食品科學(xué)與技術(shù)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇無(wú)錫,214122)
3(食品安全與營(yíng)養(yǎng)協(xié)同創(chuàng)新中心,江蘇無(wú)錫,214122)
膳食纖維被稱為是繼水、蛋白質(zhì)、脂肪、碳水化合物、礦物質(zhì)、維生素之外的“第七大營(yíng)養(yǎng)素”,是指在人體小腸內(nèi)不能被消化吸收,而在人體大腸能部分或全部發(fā)酵的植物性成分、非淀粉類碳水化合物,包括多糖、寡糖、木質(zhì)素以及相關(guān)的植物物質(zhì)[1]。根據(jù)膳食纖維溶解性的不同,可將其分為可溶性膳食纖維(soluble dietary fiber,SDF)和不溶性膳食纖維(insoluble dietary fiber,IDF)兩大類[2]。研究證實(shí),IDF 主要作用在于使腸道產(chǎn)生機(jī)械蠕動(dòng),加速腸道排空,生理活性較弱,沒有明顯的保健作用;而SDF則更多的是發(fā)揮新陳代謝的功能,比如參與和影響碳水化合物和脂類代謝[3]。
馬鈴薯渣含有淀粉、纖維素、果膠及少量蛋白質(zhì)等可利用組分,是一種富含膳食纖維的馬鈴薯淀粉加工副產(chǎn)物,且其中的SDF含量較高,具有很高的開發(fā)應(yīng)用價(jià)值。傳統(tǒng)的酶法制備的馬鈴薯渣膳食纖維(potato pulp dietary fiber,PDF)中淀粉殘存量高,影響了PDF的品質(zhì),限制了其應(yīng)用范圍,而利用馬鈴薯渣直接制備SDF并對(duì)其理化功能性質(zhì)的研究極為有限。
研究團(tuán)隊(duì)的前期工作表明,馬鈴薯渣中的纖維素易被纖維素酶降解,且淀粉由于纖維素組分的包裹和阻隔較難被酶水解利用。因此,本研究通過(guò)采用纖維素酶改性馬鈴薯渣,提高SDF含量,解除其對(duì)淀粉的包裹作用,再利用酶法去除淀粉制備了可溶性膳食纖維(C-SDF)。在此基礎(chǔ)上,對(duì)C-SDF的理化及功能性質(zhì)進(jìn)行表征,并與市售的可溶性膳食纖維(S-SDF)和傳統(tǒng)酶法制備PDF進(jìn)行對(duì)比分析。
濕馬鈴薯渣,內(nèi)蒙古奈倫集團(tuán)股份有限公司提供;α-高溫淀粉酶(酶活力2 000 U/mL)、葡萄糖苷淀粉酶(酶活力100 000 U/mL)、纖維素酶(酶活力70 U/mL),購(gòu)于 Sigma-Aldrich集團(tuán);胰脂肪酶(酶活3 000 U/g),購(gòu)于上海沃凱藥業(yè)有限公司;葡萄糖試劑盒,購(gòu)于北京利德曼生化股份有限公司;其他試劑均為分析純,購(gòu)于國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。
SHZ-B水浴恒溫振蕩器,上海博泰實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;Nicolet iS10傅立葉變換紅外光譜儀,美國(guó)Thermo Scientific公司;AR-G2型流變儀,美國(guó)TA公司;ICS-5000型高效陰離子交換色譜,美國(guó)Dionex公司;Waters 1525型高效液相色譜儀,美國(guó)Waters公司。
1.2.1 纖維素酶制取馬鈴薯渣可溶性膳食纖維的工藝
[4]的方法,并綜合考慮SDF的得率和質(zhì)量,調(diào)整傳統(tǒng)制備工藝,以濕馬鈴薯渣為原料,首先采用纖維素酶對(duì)馬鈴薯渣進(jìn)行改性,一定程度的破壞纖維素的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),降低其對(duì)淀粉溶出糊化的阻礙,然后再去除淀粉。傳統(tǒng)制備工藝首先去除淀粉,再用纖維素酶、木聚糖酶改性,根據(jù)馬鈴薯渣組分酶解特性的研究結(jié)果,未經(jīng)處理的馬鈴薯渣淀粉酶法降解率低,殘存量大,在經(jīng)纖維素酶、木聚糖酶處理后被束縛的未降解的淀粉會(huì)進(jìn)一步溶出糊化,經(jīng)后續(xù)醇沉工序?qū)⒒斓絊DF中,影響SDF的品質(zhì)。因此,調(diào)整傳統(tǒng)制備工藝,旨在既有利于淀粉的去除又避免了傳統(tǒng)工藝后續(xù)流程中淀粉的進(jìn)一步溶出,影響SDF的品質(zhì)。具體工藝及條件如下:
稱量一定量的濕馬鈴薯渣,按薯渣∶水=1∶5混勻,1 mol/L HCl調(diào)節(jié)pH至4.5,纖維素酶酶添加量為20 U/g、溫度50℃,酶解時(shí)間4 h,反應(yīng)結(jié)束后沸水浴中滅酶10 min;1 mol/L NaOH調(diào)節(jié)pH至5.0,加入α-高溫淀粉酶,95℃反應(yīng)1 h;1 mol/L鹽酸調(diào)節(jié)pH至5.0,加入葡萄糖苷淀粉酶,60℃反應(yīng)30 min,沸水浴中滅酶10 min;真空抽濾后得到的濾液,用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀濃縮;濃縮后的濾液,加4倍體積沉淀SDF,室溫下放置過(guò)夜;4 500 r/min離心5 min分離,95%乙醇洗滌3次;置于電熱鼓風(fēng)干燥箱中50℃干燥12 h,即得 SDF。采用此條件制得的 C-SDF得率達(dá)31.94%(質(zhì)量分?jǐn)?shù)),占總膳食纖維(total dietary fiber,TDF)含量的62.93%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))。
1.2.2 單糖及半乳糖醛酸的測(cè)定
分別稱取樣品C-SDF和S-SDF各(100±10)mg于2支試管中,每支試管加入(1.00±0.10)mL 72%的H2SO4,攪拌1 min,在30℃水浴中水浴(60±5)min,每隔5~10 min攪拌1次,使其充分水解;然后加入(28.00±0.04)mL去離子水,使H2SO4稀釋到4%,混合均勻,密封好后置于壓力鍋中,于121℃反應(yīng)60 min,反應(yīng)結(jié)束后冷卻至室溫;然后取100 μl的水解液于小試管中,加去離子水稀釋,最后定容到10 mL采用ICS-5000離子色譜儀測(cè)定[5]。色譜柱:CarboPac PA20;檢測(cè)器:脈沖安培檢測(cè)器,流速 0.5 mL/min。
1.2.3 紅外光譜測(cè)定
取適量的KBr和樣品,研磨充分,壓片法制備薄片,使用傅立葉紅外光譜儀測(cè)試。條件如下:以空氣為參比,掃描波數(shù)范圍為4 000~500 cm-1,掃描次數(shù)為32次,通過(guò)Omnic8.0軟件分析結(jié)果[5]。
1.2.4 分子質(zhì)量分布測(cè)定
分別準(zhǔn)確稱取0.100 0 g C-SDF和S-SDF,溶于去離子水中并定容至25 mL,過(guò)0.45 μm尼龍微孔膜,濾液采用Waters 1525高效液相色譜儀測(cè)定。色譜柱:UltrahydrogelTMLinear 300 mm×7.8 mmin×2;流動(dòng)相:0.1 mol/L NaNO3;流速:0.9 mL/min;柱溫45℃。
1.2.5 黏度測(cè)定
樣品制備方法:使用去離子水溶解C-SDF和SSDF樣品,質(zhì)量分?jǐn)?shù)為5%(以干基計(jì)),攪拌均勻使其充分溶解。
取上述方法制成的樣品溶液置于流變儀上,測(cè)試條件如下:2.0 cm平板,間隙1 mm,溫度設(shè)為25℃,測(cè)定樣品在剪切速率(γ)為0~100 s-1內(nèi)黏度及剪切應(yīng)力的變化[6]。
1.2.6 葡萄糖透析延遲指數(shù)的測(cè)定
測(cè)定方法參考 Cheickna Daou[7]和黃清霞等[8]的方法,分別在30、60、90 min時(shí)測(cè)定透析液中葡萄糖含量。葡萄糖透析延遲指數(shù)(GDRI)的計(jì)算[公式(1)]:
1.2.7 α-淀粉酶活力抑制力的測(cè)定
測(cè)定方法參照文獻(xiàn)[9],淀粉酶活力抑制力以還原糖減少量的百分比計(jì),計(jì)算公式(2):
式中:A—空白樣中未添加樣品時(shí)反應(yīng)所測(cè)得的還原糖的含量,g/100g;A1—添加樣品反應(yīng)后所測(cè)得的還原糖的含量,g/100g。
1.2.8 膽酸鈉的體外吸附測(cè)定
測(cè)定方法參照文獻(xiàn)[10]。
1.2.9 胰脂肪酶活力抑制力的測(cè)定
測(cè)定方法參照文獻(xiàn)[9],脂肪酶活力的抑制力定義為自由脂肪酸產(chǎn)生量與對(duì)照相比降低的百分率;計(jì)算公式(3):
式中:V0—不加樣品時(shí),所消耗的NaOH體積,做為對(duì)照,mL;V—滴定所消耗的NaOH溶液的體積,mL。
1.2.10 數(shù)據(jù)處理
實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用Origin 8.5進(jìn)行圖形處理;采用SPSS 19.0進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析,顯著性分析采用Ducan’多重檢驗(yàn)(P<0.05);數(shù)值均以(均值±標(biāo)準(zhǔn)差)表示,實(shí)驗(yàn)中所涉及數(shù)據(jù)平行測(cè)定至少3次。
2.1.1 單糖組成分析
由表1可知,C-SDF中半乳糖醛酸含量最高,葡萄糖和半乳糖次之,其次是阿拉伯糖和鼠李糖,木糖含量極低,初步分析C-SDF中主要成分為果膠和聚葡萄糖;S-SDF中僅含有葡萄糖和半乳糖,且葡萄糖含量高達(dá)83.43%,初步分析S-SDF屬于聚葡萄糖類可溶性膳食纖維[10]。
表1 C-SDF和S-SDF的單糖組成及半乳糖醛酸含量Table 1 The neutral monosaccharide content ratio and Gal A of SDF
2.1.2 紅外光譜掃描分析
由圖1可知,C-SDF、S-SDF和PDF都具有糖的特征吸收峰。1 600~1 800 cm-1處的吸收峰是C=O的吸收峰,說(shuō)明樣品中都存在糖醛酸;1 739 cm-1處為半纖維素羰基(C=O)的伸縮振動(dòng),說(shuō)明在C-SDF中存在可溶性的半纖維素成分,但吸收峰很弱說(shuō)明可溶性的半纖維素含量極少,PDF中此處吸收峰很強(qiáng),說(shuō)明半纖維素含量相對(duì)較高;895~899 cm-1處的吸收峰是由β-吡喃糖C-H變角振動(dòng)引起的,說(shuō)明SDF中存在 β-吡喃糖[11]。
圖1 馬鈴薯渣中各組分傅里葉紅外光譜圖Fig.1 FTIR spectra of potato pulp’s composition
2.1.3 分子質(zhì)量分布分析
由表2可知,C-SDF的重均分子質(zhì)量(Mw)分布集中在266~137 687 Da,其中最大Mw為137 687 Da,與果膠的Mw 125 111 ~146 841 Da基本相符[12-13],進(jìn)一步證明C-SDF中含有果膠,可能還含有可溶性的纖維素或半纖維素片段;而S-SDF的Mw分布集中在445 Da和1 695 Da,其中 Mw為445 Da的部分所占比例為52.87%,Mw為1 695的部分占47.13%。
表2 C-SDF和S-SDF相對(duì)分子質(zhì)量分布Table 2 Relative molecular weight distribution of C-SDF and S-SDF
2.1.4 黏度分析
SDF的黏度對(duì)其生理功能有重要影響,相對(duì)較大的黏度有利于延緩和降低消化道中其他食物成分的消化吸收,有利于SDF發(fā)揮其降血糖和降血脂作用,有研究表明只有高黏度的SDF才對(duì)預(yù)防或治療高膽固醇病有預(yù)防作用[14]。C-SDF和S-SDF的靜態(tài)流變曲線如圖2所示。
圖2 C-SDF和S-SDF的黏度Fig.2 The viscosity of C-SDF and S-SDF
采用Herschel–Bulkley方程對(duì)曲線進(jìn)行擬合,結(jié)果如表3所示。由表中擬合參數(shù)可知,C-SDF的屈服應(yīng)力σ0和稠度系數(shù)K值均大于S-SDF的σ0和K。這主要是由SDF分子質(zhì)量大小導(dǎo)致的,C-SDF相對(duì)較高的黏度性質(zhì),將賦予其較好的降血糖、降血脂的功能性質(zhì)。
表3 C-SDF和S-SDF的Herschel–Bulkley擬合參數(shù)Table 3 Rheological parameters of C-SDF and S-SDF
2.2.1 葡萄糖透析延遲指數(shù)分析
葡萄糖透析延遲指數(shù)(GDRI)可以有效反映葡萄糖在胃腸道被延遲吸收的情況,通過(guò)測(cè)定糖透析延遲指數(shù)可以評(píng)價(jià)膳食纖維降低餐后血糖的能力[15]。
從圖3可以看出C-SDF的葡萄糖延遲擴(kuò)散能力均顯著高于S-SDF和PDF(P<0.05),這可能是經(jīng)纖維素酶作用得到的SDF中由于酶對(duì)細(xì)胞壁的部分降解作用,使得部分纖維素可溶的同時(shí)纖維結(jié)構(gòu)變得較疏松,比表面積增大,暴露出來(lái)的功能基團(tuán)增多,CSDF與葡萄糖分子間的相互作用增強(qiáng),并且C-SDF較好的溶解性使它與葡萄糖之間的接觸吸附更加充分;PDF結(jié)構(gòu)致密,錯(cuò)綜復(fù)雜的纖維結(jié)構(gòu)阻礙了功能基團(tuán)與酶的接觸,無(wú)法發(fā)揮作用;Adiotomre等[16]報(bào)道多糖黏度對(duì)葡萄糖在腸道吸收的延遲程度具有很大影響,S-SDF則由于黏度較小及功能成分的不同,葡萄糖延遲擴(kuò)散能力低于C-SDF。
圖3 C-SDF、S-SDF和PDF的葡萄糖透析延遲指數(shù)Fig.3 GDRI of C-SDF,S-SDF and PDF
2.2.2 α-淀粉酶活力抑制力
膳食纖維對(duì)α-淀粉酶活力的抑制作用是其降血糖功能的另一作用機(jī)理。淀粉酶活力受到抑制后淀粉的酶解受到限制,被水解成小分子糖的量變小,使得血糖水平降低。綜合分析C-SDF對(duì)α-淀粉酶活力的抑制作用和它的葡萄糖延遲擴(kuò)散能力有助于進(jìn)一步從機(jī)理上解釋其降血糖原因。
由圖4可知,C-SDF對(duì)α-淀粉酶活力的抑制力高于PDF和S-SDF,但三者之間無(wú)顯著差異(P≥0.05)。研究報(bào)道顯示膳食纖維對(duì)淀粉酶活力抑制作用的機(jī)理包括:膳食纖維對(duì)淀粉酶或淀粉的束縛作用阻礙了底物對(duì)酶的可及性,以及膳食纖維的表面基團(tuán)對(duì)淀粉酶活力的抑制作用[17]。PDF表現(xiàn)出了較大的α-淀粉酶活力抑制力,可能是其中復(fù)雜的纖維素和半纖維素結(jié)構(gòu),對(duì)淀粉或淀粉酶的束縛作用大于C-SDF增加的活性基團(tuán)對(duì)淀粉酶活力的抑制作用;S-SDF的組成結(jié)構(gòu)簡(jiǎn)單黏度較小,具有最小的淀粉酶活力抑制力[18]。
圖4 C-SDF、S-SDF和PDF的淀粉酶活力抑制力Fig.4 α-Amylase inhibitory activity of C-SDF,S-SDF and PDF
2.2.3 膽酸鈉的體外吸附分析
膳食纖維對(duì)膽酸鈉的吸附能力可以用來(lái)衡量其降血脂的功能特性,膳食纖維通過(guò)在小腸中束縛膽酸鹽及促進(jìn)膽酸鹽的排出來(lái)降低膽固醇,間接發(fā)揮降血脂功效[19]。膳食纖維可以通過(guò)疏水相互作用、范德華力和氫鍵等與膽酸鹽發(fā)生相互作用,或以其中一種作用力為主,實(shí)現(xiàn)對(duì)膽酸鹽的吸附、促進(jìn)膽酸鹽的排出,發(fā)揮降血脂的作用[20]。
由圖5可知,溶液中膽酸鈉濃度隨時(shí)間的推移而不斷減小,說(shuō)明溶液中的膳食纖維持續(xù)的發(fā)揮著吸附膽酸鈉的作用。C-SDF在最開始的30 min內(nèi),膽酸鈉濃度變化較為顯著,30~45 min時(shí)略微減慢,而后則趨于平緩;S-SDF在最開始的15 min內(nèi),膽酸鈉濃度變化較為顯著,15~60 min變化緩慢,之后區(qū)域平緩;PDF在最開始的15 min內(nèi),膽酸鈉濃度變化較為顯著,15~30 min內(nèi)略微減慢,而后則趨于平緩。CSDF趨于平緩的極限值低且趨于平緩所用時(shí)間長(zhǎng),說(shuō)明C-SDF可以較長(zhǎng)時(shí)間發(fā)揮吸附膽酸鈉的作用且吸附能力較強(qiáng)。
圖5 C-SDF、S-SDF和PDF的膽酸鈉吸附力Fig.5 The bile sodium adsorbility of C-SDF,S-SDF and PDF
2.2.4 胰脂肪酶活力抑制力分析
膳食纖維對(duì)胰脂酶活力的抑制作用可作為它降血脂的另一表征。由膳食纖維引起的脂肪水解率的降低是非常有利的,脂肪水解率降低會(huì)延長(zhǎng)餐后飽腹感的時(shí)間并且減輕脂肪消化系統(tǒng)的負(fù)擔(dān)[21]。
由圖6可知,C-SDF的胰脂肪酶活力抑制力顯著高于S-SDF和PDF。推測(cè)其原因C-SDF中因酶的作用纖維片段變小,比表面積增大,功能集團(tuán)更多地暴露出來(lái),使其對(duì)油或酶的包囊作用增大,限制了油對(duì)酶的可及性,從而降低了胰脂酶的活力。而PDF因結(jié)構(gòu)致密,大部分功能集團(tuán)被束縛在纖維結(jié)構(gòu)內(nèi)部,阻礙了其與油或酶的接觸,限制了其對(duì)胰脂肪酶活力的抑制作用[22]。
圖6 C-SDF、S-SDF和PDF的胰脂酶活力抑制力Fig.6 Pancreatic lipase inhibitory activity of C-SDF,S-SDF and PDF
C-SDF的單糖組成中半乳糖醛酸含量最高,其次是葡萄糖和半乳糖,紅外光譜顯示它屬于多糖類物質(zhì)且有明顯的糖醛酸類物質(zhì)吸收峰,分子質(zhì)量分布顯示其最高M(jìn)w與果膠的分子質(zhì)量分布基本一致,C-SDF的主要成分為果膠和β-葡聚糖;C-SDF因含有果膠,分子質(zhì)量和黏度值均高于S-SDF;C-SDF的葡萄糖延遲擴(kuò)散能力、α-淀粉酶活力抑制力、膽酸鈉的吸附能力和胰脂肪酶活力抑制力均高于PDF和S-SDF,在降血糖、降血脂方面將具有廣泛的用途。
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