孫丹丹 李軍國(guó) 秦玉昌 董穎超*
(1.中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院飼料研究所,北京 100081;2.農(nóng)業(yè)部食物與營(yíng)養(yǎng)發(fā)展研究所,北京 100081)
豆粕作為主要的植物性蛋白質(zhì)飼料原料,在畜禽、水產(chǎn)及特種動(dòng)物養(yǎng)殖中應(yīng)用廣泛。但是,由于利益的驅(qū)動(dòng),一些商家在豆粕中摻入一些含氮量高的化合物來(lái)提高粗蛋白質(zhì)含量,尤其在食品和飼料中檢出三聚氰胺后,虛增蛋白質(zhì)類物質(zhì)引起了廣泛關(guān)注。經(jīng)調(diào)查發(fā)現(xiàn),尿素聚合物是所添加的虛增蛋白質(zhì)類物質(zhì)之一,即以尿素為原料經(jīng)熱加工制得。使用尿素的原因是尿素廉價(jià)且含氮量高(46.7%),常規(guī)的檢測(cè)方法“凱氏定氮法”不能區(qū)別蛋白氮和非蛋白氮,但尿素吸濕性強(qiáng),直接添加容易被發(fā)現(xiàn),而將尿素?zé)峒庸ず?,可形成白色固體,其主要成分是縮二脲、縮三脲、三聚氰酸等縮合物[1],凱氏定氮法測(cè)得其含氮量約為40%??s二脲的檢測(cè)方法有分光光度法和高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[2-3],三聚氰酸的檢測(cè)方法為色譜法[4-5],但這些檢測(cè)方法需要化學(xué)試劑,對(duì)操作人員的要求高,耗時(shí)長(zhǎng)。
紅外光譜技術(shù)是一種快速有效的檢測(cè)技術(shù),在食品摻假中應(yīng)用廣泛[6-7]。在飼料摻假方面,Haughey等[8]利用近紅外(near infrared,NIR)光譜技術(shù)檢測(cè)豆粕中的三聚氰胺,最低測(cè)定質(zhì)量濃度達(dá)到0.1%;楊增玲等[9]應(yīng)用可見(jiàn) -NIR光譜技術(shù)結(jié)合偏最小二乘判別分析(PLS-DA)對(duì)摻有肉骨粉的魚粉進(jìn)行快速鑒別,摻入量≥5%時(shí)正確率為100%;劉星[10]采用主成分分析結(jié)合支持向量機(jī)(SVM)化學(xué)計(jì)量學(xué)算法,分別對(duì)摻入5% ~15%的三聚氰胺甲醛樹脂和脲醛樹脂的奶牛精補(bǔ)料正確識(shí)別率為100%;石光濤等[11]應(yīng)用可見(jiàn) -NIR光譜技術(shù)結(jié)合PLS-DA對(duì)摻有豆粕的魚粉進(jìn)行判別,摻入豆粕濃度為2%~50%時(shí),檢驗(yàn)集的正確判斷率為96.12%。應(yīng)用NIR光譜技術(shù)測(cè)定飼料中肉骨粉含量也有很多文獻(xiàn)報(bào)道[12-16]。中紅外(mid infrared,MIR)光譜技術(shù)在食品摻假如蜂蜜、果汁、巧克力、油脂等方面應(yīng)用較多[17],對(duì)于粉狀樣品的研究較少。Liu等[17]應(yīng)用MIR光譜技術(shù)結(jié)合PLSDA預(yù)測(cè)藕粉中摻假物質(zhì)的含量,外部驗(yàn)證決定系數(shù)為 0.98,標(biāo)準(zhǔn)偏差為 5.47;劉嘉等[19]對(duì)葛粉中分別摻入紅薯粉和馬鈴薯粉的MIR光譜進(jìn)行Fisher判別,交互驗(yàn)證準(zhǔn)確率分別為86.7%和92.0%。因此,紅外光譜法可作為一種快速高效可靠的方法用于檢測(cè)食品和飼料摻假。本研究目的是評(píng)價(jià)近紅外和中紅外光譜分析技術(shù)結(jié)合模式識(shí)別法對(duì)鑒別摻有尿素聚合物的豆粕的準(zhǔn)確性,探討其作為高效可靠分析技術(shù)的可行性和實(shí)用性。
豆粕采自中糧東海糧油工業(yè)有限公司,共30批次145個(gè)樣品,樣品于高速旋風(fēng)粉碎機(jī)粉碎30 s。尿素聚合物是由尿素(西隴化工股份有限公司)加熱成固態(tài)并粉碎成粉末狀。根據(jù)尿素聚合物對(duì)不同譜區(qū)吸收值的不同,NIR和MIR的樣品分別制備不同的質(zhì)量濃度(表1)。
表1 校正集和驗(yàn)證集豆粕樣品中尿素聚合物含量Table 1 Urea polymer concentration of calibration set and validation set in soybean meal samples
MATRIXTM-Ⅰ型傅立葉變換近紅外光譜儀(BRUKER,Germany),帶漫反射積分球附件、三維立體角鏡 RockSolidTM干涉儀,Pbs檢測(cè)器。OPUS 光譜采集軟件(version 7.0;Bruker,Germany)。TENSOR 37型傅立葉紅外光譜儀(BRUKER,Germany)。 Matlab(v2013b,MathWorks,USA)和 Unscrambler(version 9.8;CAMO,Norway)化學(xué)計(jì)量學(xué)分析軟件。
NIR光譜采集:掃描范圍為12 500~3 598 cm-1,分辨率為 8 cm-1,掃描次數(shù) 64 次;開啟旋轉(zhuǎn)樣品臺(tái),試驗(yàn)環(huán)境溫度為(25±2)℃;每次掃描樣品前,儀器預(yù)熱30 min以上;每個(gè)樣品重復(fù)裝樣掃描3次。為了減少隨機(jī)誤差,隨機(jī)抽取樣品進(jìn)行光譜數(shù)據(jù)采集。
MIR光譜采集:稱取溴化鉀(KBr)200 mg,KBr與樣品的比例為50∶1,將試驗(yàn)樣品與KBr研磨混勻,在壓力13 MPa下壓片1 min;光譜范圍4 000 ~400 cm-1,分辨率為 4 cm-1,掃描次數(shù) 64次;每次掃描樣品前,儀器預(yù)熱30 min以上;試驗(yàn)環(huán)境溫度為(25±2)℃;每個(gè)樣品重復(fù)掃描2次。
樣品光譜常因受到高頻隨機(jī)噪聲、光散射、樣品不均勻等因素的影響,而產(chǎn)生干擾信號(hào)。常用的預(yù)處理方法有多元散射校正(MSC)、變量標(biāo)準(zhǔn)化(SNV)、一階導(dǎo)數(shù)(1Der)、二階導(dǎo)數(shù)(2Der)等,這些數(shù)據(jù)處理方法可以提高分析信號(hào)的信噪比,校正樣品因散射而引起的光譜的誤差,消除基線漂移和背景。使用一種或多種組合處理方法能提高定性分析中樣品分類準(zhǔn)確率及定量分析中預(yù)測(cè)精度[19]。
本試驗(yàn)采用PLS-DA和SVM分類方法,識(shí)別率和檢測(cè)限為評(píng)價(jià)模型優(yōu)劣的指標(biāo)。在PLS-DA方法中,令純豆粕樣品值為0,摻假豆粕為1,閾值設(shè)置為0.5,即當(dāng)樣品預(yù)測(cè)值小于0.5時(shí)判為豆粕,否則判為摻假豆粕。
2.1.1 樣品NIR光譜分析
尿素聚合物的主要成分是縮二脲、縮三脲和三聚氰酸,其化學(xué)結(jié)構(gòu)如圖1所示。純豆粕和摻入5%尿素聚合物豆粕的NIR原始光譜,如圖2所示,在7 567~3 695 cm-1區(qū)間的差異,主要是由于聚合物中氨基(-NH2)和羥基(-OH)引起的。伯酰胺和仲酰胺的一級(jí)倍頻吸收帶在6 666 cm-1附近,合頻在5 000 cm-1附近,-OH的一級(jí)倍頻約在6 993 cm-1附近,合頻約在5 000 cm-1附近[20]。
圖1 縮二脲(a)、縮三脲(b)和三聚氰酸(c)的化學(xué)結(jié)構(gòu)式Fig.1 Chemical structural formula of biuret(a),triuret(b)and cyanuric(c)acid
圖2 純豆粕與摻假豆粕NIR光譜特征Fig.2 Near infrared reflectance spectroscopic characteristics of pure soybean meal and adulterated soybean meal
2.1.2 PLS-DA 模型的建立與驗(yàn)證
利用偏最小二乘回歸方法對(duì)校正集樣品的NIR光譜和樣品的分類變量進(jìn)行回歸分析,建立NIR光譜與分類變量間的分類模型。對(duì)光譜進(jìn)行無(wú)處理、平滑、變量標(biāo)準(zhǔn)化、求導(dǎo)等預(yù)處理后建立PLS-DA判別模型,其判別結(jié)果基本一致。圖3為原光譜經(jīng)變量標(biāo)準(zhǔn)化后,得到的校正集和驗(yàn)證集的結(jié)果,圖3(a)為校正集樣品交叉驗(yàn)證結(jié)果,尿素聚合物的含量為1%時(shí),預(yù)測(cè)值小于0.5,被誤判為純豆粕;圖3(b)為驗(yàn)證集樣品判別結(jié)果,當(dāng)尿素聚合物的含量為1%時(shí),預(yù)測(cè)值小于0.5,被誤判為純豆粕。因此,采用PLS-DA判別方法結(jié)合NIR光譜技術(shù)識(shí)別摻入尿素聚合物的豆粕的檢測(cè) 限大于1.0%。
圖3 校正集(a)和驗(yàn)證集(b)樣品PLS-DA模型的判別結(jié)果Fig.3 Discriminant results for samples in calibration set(a)and validation set(b)by PLS-DA models
2.1.3 SVM 模型的建立與驗(yàn)證
原始光譜經(jīng)變量標(biāo)準(zhǔn)化后,選擇6 688.3~3 606.4 cm-1之間的光譜數(shù)據(jù),輸入到SVM 分類器中,選擇徑向基作為核函數(shù),得到SVM分類結(jié)果,迭代次數(shù)673次,支持向量的個(gè)數(shù)208,邊界支持向量的個(gè)數(shù)16。圖4為訓(xùn)練集和測(cè)試集樣品判別結(jié)果,判斷準(zhǔn)確率分別99.80%和99.21%,即2個(gè)樣品集中各出現(xiàn)1個(gè)誤判樣品,其尿素聚合物的含量為1%,被誤判為純豆粕樣品。因此,采用SVM分類方法結(jié)合NIR光譜技術(shù)識(shí)別摻入尿素聚合物的豆粕的檢測(cè)限大于1.0%。
圖4 訓(xùn)練集和測(cè)試集樣品SVM模型的判別結(jié)果Fig.4 Discriminant results for samples in training set and testing set by SVM models
2.2.1 樣品 MIR光譜
尿素聚合物是縮二脲(圖1a)、縮三脲(圖1b)、三聚氰酸(圖1c)等的混合物。其中,縮二脲的酰亞胺中的羰基偶合裂分為雙峰在1 745~1 680 cm-1區(qū)域,伯胺N-H的伸縮振動(dòng)在3 500~3 300 cm-1之間有2個(gè)峰,剪式振動(dòng)在1 650~1 580 cm-1,仲胺N-H的伸縮振動(dòng)有1個(gè)峰,剪式振動(dòng)在1 650~1 515 cm-1附近,C-N的伸縮振動(dòng)在1 350~1 000 cm-1之間;三聚氰酸中的-OH形成氫鍵,吸收峰在3 500~3 200 cm-1處,內(nèi)酰胺因環(huán)的張力增加,羰基峰頻率升高,C=N的伸縮振動(dòng)在1 690~1 550 cm-1附近。在537 cm-1處有一個(gè)尖的強(qiáng)吸收峰無(wú)法辨認(rèn),可能是尿素中的雜質(zhì)在加熱過(guò)程中發(fā)生聚合反應(yīng),在摻假豆粕中此峰隨著尿素聚合物含量的增加而增強(qiáng),如圖5所示。
圖5 尿素聚合物(a)和摻假豆粕(b)的MIR光譜特征Fig.5 The mid infrared spectrum of urea polymer(a)and adulterated soybean meal(b)
2.2.2 PLS-DA 模型的建立與驗(yàn)證
除去水峰和二氧化碳峰后,對(duì)光譜進(jìn)行無(wú)處理、平滑、變量標(biāo)準(zhǔn)化、求導(dǎo)等預(yù)處理后建立PLS-DA判別模型,預(yù)處理方法對(duì)模型的影響較大,最終選擇最佳預(yù)處理方法為變量標(biāo)準(zhǔn)化和一階導(dǎo)數(shù)7點(diǎn)平滑的組合,圖6為原始光譜經(jīng)變量標(biāo)準(zhǔn)化和一階導(dǎo)數(shù)7點(diǎn)平滑組合處理后,得到的校正集和驗(yàn)證集樣品的判別結(jié)果。圖6(a)為校正集樣品交叉驗(yàn)證結(jié)果,豆粕中尿素聚合物的含量大于等于0.08%,預(yù)測(cè)值均大于0.5,偏差均小于0.5;圖6(b)為驗(yàn)證集樣品的判別結(jié)果,判斷正確率為100%。因此,采用PLSDA判別方法結(jié)合MIR光譜技術(shù)識(shí)別摻入尿素聚合物的豆粕的檢測(cè)限為0.08%。
2.2.3 SVM 模型的建立與驗(yàn)證
除去水峰和二氧化碳峰后,對(duì)光譜進(jìn)行變量標(biāo)準(zhǔn)化和一階導(dǎo)數(shù)7點(diǎn)平滑處理,將處理后的光譜數(shù)據(jù)輸入到SVM分類器中,選擇徑向基作為核函數(shù),得到SVM分類結(jié)果。迭代次數(shù)432次,支持向量的個(gè)數(shù)180,邊界支持向量的個(gè)數(shù)0,校正集準(zhǔn)確率為100%,驗(yàn)證集準(zhǔn)確率為100%。因此,使用SVM方法結(jié)合MIR光譜技術(shù)識(shí)別摻入尿素聚合物的豆粕的檢測(cè)限為0.08%。
預(yù)處理對(duì)MIR模型的影響較大。方法的種類、組合及組合順序直接影響MIR模型的預(yù)測(cè)準(zhǔn)確度,采用變量標(biāo)準(zhǔn)化和一階導(dǎo)數(shù)7點(diǎn)平滑組合處理后得到最優(yōu)結(jié)果;預(yù)處理對(duì)NIR模型的預(yù)測(cè)準(zhǔn)確度沒(méi)有影響,采用變量標(biāo)準(zhǔn)化處理時(shí),樣品預(yù)測(cè)偏差最小。Devos 等[20]處理 NIR 光譜數(shù)據(jù)用一步預(yù)處理方法,就可以產(chǎn)生一個(gè)預(yù)測(cè)能力較好的SVM模型,而在MIR區(qū),預(yù)處理方法及預(yù)處理方法的組合順序?qū)VM分類模型預(yù)測(cè)結(jié)果均具有很大影響。
圖6 校正集(a)和驗(yàn)證集(b)樣品PLS-DA模型的判別結(jié)果Fig.6 Discriminant results for samples in calibration set(a)and validation set(b)by PLS-DA models
PLS-DA算法是基于PLS方法建立的類別變量與光譜特征間的線性回歸模型,SVM可以將低維線性不可分的樣本變量映射到高位空間中,變成線性可分,主要用于解決小樣本、非線性問(wèn)題。本研究中SVM模型略優(yōu)于PLS-DA,PLS-DA模型得到的未知樣品分類結(jié)果有預(yù)測(cè)值偏差,而SVM模型可以直接判斷樣品分類。Teye等[21]比較了4種模式識(shí)別方法(線性判別、K-鄰近值、反向神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)、SVM),結(jié)果表明SVM模型準(zhǔn)確度高于其他3種模型,其訓(xùn)練集和預(yù)測(cè)集的正確識(shí)別率均為100%。
在NIR和MIR區(qū)建立的分類模型對(duì)摻入尿素聚合物的豆粕最低檢測(cè)含量分別為1.00%和0.08%,這是由于MIR光譜強(qiáng)度遠(yuǎn)大于NIR,對(duì)樣品化學(xué)組分的變化比NIR更靈敏,而且尿素聚合物在MIR區(qū)的吸光度相對(duì)于豆粕較高。Wang等[22]應(yīng)用NIR/MIR光譜技術(shù)鑒別摻假的八角,結(jié)果表明,MIR光譜技術(shù)準(zhǔn)確率優(yōu)于NIR光譜技術(shù),當(dāng)兩者光譜數(shù)據(jù)聯(lián)合建立分類模型時(shí),準(zhǔn)確率最高。但在本試驗(yàn)中,MIR光譜技術(shù)檢測(cè)需要用溴化鉀壓片,光譜采集時(shí)間相對(duì)于NIR光譜技術(shù)稍長(zhǎng),且光譜受到環(huán)境和樣品中水分的影響更大。
①在NIR光譜區(qū),建立的SVM分類模型對(duì)摻有1%~5%尿素聚合物的豆粕識(shí)別率大于99%;在MIR光譜區(qū),PLS-DA和SVM分類模型對(duì)摻假豆粕的識(shí)別率為100%,最低檢測(cè)濃度為0.08%。
②對(duì)于鑒別摻有尿素聚合物的豆粕,MIR光譜技術(shù)優(yōu)于NIR光譜技術(shù)。
[1] 劉功年,張學(xué)才,張德祥.縮二脲制備工藝的研究[J].安徽化工,1993(4):21 -25.
[2] 中華人民共和國(guó)國(guó)家質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)檢疫總局.GB/T 2441.2—2010尿素的測(cè)定方法:第2部分:縮二脲含量——分光光度法[S].北京:中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)出版社,2010.
[3] 王祖翔,蔣俊,孫莉,等.高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測(cè)定食品中的尿素、縮二脲與雙氰胺[J].分析測(cè)試學(xué)報(bào),2012,31(5):593 -599.
[4] 李鋒格,姚偉琴,蘇敏,等.氣相色譜-質(zhì)譜法快速測(cè)定牛奶中的三聚氰胺和三聚氰酸[J].色譜,2009,27(2):233-236.
[5] 云環(huán),嚴(yán)華,張朝暉,等.超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法同時(shí)測(cè)定牛奶和奶粉中的二氰二胺、三聚氰胺和三聚氰酸[J].色譜,2013,31(5):404 -409.
[6] DOWNEY G.Vibrational spectroscopy in studies of food origin[M]//BRERETON P.New analytical approaches for verifying the origin of food.UK:The Food and Environment Research Agency(FERA),2013:94-116.
[7] 王小燕,王錫昌,劉源,等.近紅外光譜技術(shù)在食品摻偽檢測(cè)應(yīng)用中的研究進(jìn)展[J].食品科學(xué),2011,32(1):265-269.
[8] HAUGHEY S A,GRAHAM S F,CANCOU?T E,et al.The application of near-infrared reflectance spectroscopy(NIRS)to detect melamine adulteration of soya bean meal[J].Food Chemistry,2013,136(3/4):1557-1561.
[9] 楊增玲,韓魯佳,劉賢,等.魚粉中肉骨粉的可見(jiàn)-近紅外光譜快速定性判別方法[J].農(nóng)業(yè)工程學(xué)報(bào),2009,25(7):308 -311.
[10] 劉星.奶牛飼料中氨基樹脂、土霉素及其鹽酸鹽的近紅外光譜識(shí)別研究[D].碩士學(xué)位論文.長(zhǎng)沙:中南大學(xué),2012.
[11] 石光濤,韓魯佳,楊增玲,等.魚粉中摻雜豆粕的可見(jiàn)和近紅外反射光譜分析研究[J].光譜學(xué)與光譜分析,2009,29(2):362 -366.
[12] 湛小梅,韓魯佳,劉賢,等.遺傳算法在魚粉中肉骨粉近紅外光譜檢測(cè)中的應(yīng)用[J].光學(xué)學(xué)報(bào),2009,29(10):2800-2803.
[13] 楊增玲,韓魯佳,李瓊飛,等.基于NIRS的反芻動(dòng)物飼料中肉骨粉判別[J].農(nóng)業(yè)機(jī)械學(xué)報(bào),2009,40(7):124-128.
[14] 楊增玲,韓魯佳,李瓊飛,等.反芻動(dòng)物精料補(bǔ)充料中肉骨粉快速檢測(cè)近紅外光譜法[J].光譜學(xué)與光譜分析,2008,28(6):1278 -1282.
[15] YANG Z L,HAN L J,LIU X,et al.Detecting and quantifying meat meal or meat and bone meal contamination in fishmeal by visible and near infrared reflectance spectra[J].Animal Feed Science and Technology,2008,147(4):357 -367.
[16] 牛智有,韓魯佳.飼料中肉骨粉含量的近紅外反射光譜檢測(cè)方法[J].農(nóng)業(yè)工程學(xué)報(bào),2008,24(4):271-274.
[17] LIU J,WEN Y,DONG N,et al.Authentication of lotus root powder adulterated with potato starch and/or sweet potato starch using fourier transform mid-infrared spectroscopy[J].Food Chemistry,2013,141(3):3103-3109.
[18] 劉嘉,李建超,陳嘉,等.葛粉摻假的傅里葉變換紅外光譜法鑒別研究[J].食品科學(xué),2011,32(8):226-230.
[19] 嚴(yán)衍祿.近紅外光譜分析基礎(chǔ)與應(yīng)用[M].北京:中國(guó)輕工業(yè)出版社,2005:30-39.
[20] DEVOS O,DOWNEY G,DUPONCHEL L.Simultaneous data pre-processing and SVM classification model selection based on a parallel genetic algorithm applied to spectroscopic data of olive oils[J].Food Chemistry,2014,148:124 -130.
[21] TEYE E,HUANG X Y,DAIH,et al.Rapid differentiation of Ghana cocoa beans by FT-NIR spectroscopy coupled with multivariate classification[J].Spectrochimica Acta Part A:Molecular and Biomolecular Spectroscopy,2013,114:183 -189.
[22] WANG Y,MEI M H,NI Y N,et al.Combined NIR/MIR analysis:a novel method for the classification of complex substances such as Illicium verum Hook.F.and its adulterants[J].Spectrochimica Acta Part A:Molecular and Biomolecular Spectroscopy,2014,130:539-545.