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    類風(fēng)濕因子對免疫測定干擾的研究進(jìn)展

    2015-12-09 16:35:21謝良才劉天春綜述審校
    醫(yī)學(xué)綜述 2015年19期
    關(guān)鍵詞:免疫檢測夾心假性

    謝良才,劉天春(綜述),范 文※,許 蓉(審校)

    (長江大學(xué)附屬第一醫(yī)院 a.檢驗(yàn)科,b.骨外科,湖北荊州434000)

    類風(fēng)濕因子(rheumatoid factors,RF)是一種臨床常見的自身抗體,常作為類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎的重要診斷指標(biāo)之一[1],但同樣出現(xiàn)在其他自身免疫性疾?。?-3]、感染性疾?。?-4],甚至健康人血液中[5]。RF是常見的免疫測定干擾物之一[3],盡管RF對免疫檢測的干擾發(fā)生率并不高,但RF干擾的潛在性和嚴(yán)重危害性應(yīng)引起實(shí)驗(yàn)室工作人員和臨床醫(yī)師的足夠重視和警覺。目前相關(guān)研究多限于臨床個案的分析和報道,現(xiàn)主要闡述RF對各類不同種類的免疫測定干擾產(chǎn)生的機(jī)制及不同的干擾類型,同時闡述干擾的發(fā)現(xiàn)、鑒別、處理及減少RF干擾發(fā)生的措施,為消除或減少RF對免疫檢測的干擾提供參考。

    1 RF對免疫測定的干擾

    1.1 RF干擾的檢測項(xiàng)目 RF對許多免疫測定項(xiàng)目存在干擾。內(nèi)分泌類:甲狀腺激素[6]、甲狀旁腺激素[7];腫瘤標(biāo)志物:糖類抗原 19.9[8]、糖類抗原 125[9];心肌標(biāo)志物:腦鈉肽[10]、肌鈣蛋白Ⅰ[11];特異性微生物標(biāo)志物:乙型肝炎表面抗原[12]、丙型肝炎病毒抗體[13]、風(fēng)疹特異性免疫球蛋白(immunoglobulin,Ig)M 抗體[14]、結(jié)核分枝桿菌抗體[15];其他:細(xì)胞因子[16]、C 反應(yīng)蛋白[17]及一些藥物[18]等。

    1.2 對雙抗體夾心法免疫檢測的干擾

    1.2.1 正干擾(假性增高/假陽性) 雙抗體夾心法用于大部分抗原、蛋白、激素及藥物的檢測。研究證實(shí),RF對基于雙抗體夾心法的酶聯(lián)免疫吸附法[12,19]、固相放射免疫[14]、化學(xué)發(fā)光法[10,20-21]、微粒子免疫分析[22]等檢查系統(tǒng),均存在不同程度的正性干擾。RF對雙抗體夾心法檢測系統(tǒng)干擾的可能機(jī)制為:雙抗體夾心法檢測系統(tǒng)中的捕獲抗體和信號抗體一般均為IgG,當(dāng)樣本中的RF能同時與這兩種抗體Fc段結(jié)合時,便會將捕獲抗體與信號抗體橋接,形成捕獲抗體-RF-信號抗體的復(fù)合物,從而產(chǎn)生非特異性的檢測信號,造成檢測結(jié)果的假性增高或假陽性[16,19],引起這種干擾的可能是IgM-RF、IgG-RF或者其他型別。

    1.2.2 負(fù)干擾(假性降低/假陰性)RF對雙抗體夾心法的免疫分析系統(tǒng)的負(fù)干擾在一些文獻(xiàn)中被提出[23],但被試驗(yàn)或臨床證實(shí)的報道較少[19,24-25]。RF對免疫測定系統(tǒng)負(fù)干擾的機(jī)制,主要是空間位阻(屏蔽)假說[25],即當(dāng)RF只能與捕獲或信號抗體中的某一種抗體結(jié)合時,會形成空間位阻(屏蔽),阻礙捕獲抗體-抗原-信號抗體復(fù)合物的形成,造成檢測信號的減弱或缺失,引起假性降低或假陰性的檢測結(jié)果[24-25]。對于一些三位點(diǎn)免疫檢測法,其干擾發(fā)生的機(jī)制與雙抗體夾心法是相似的。由于同時使用兩種捕獲抗體(或兩種信號抗體),雖然增加了檢測的敏感性,但同時也增加了干擾發(fā)生率。

    1.3 RF對捕獲法檢測IgM類抗體的干擾 捕獲法檢測IgM的干擾目前僅見假性增高的報道[13-14],是否有假性降低的可能尚有待進(jìn)一步研究。RF對捕獲法干擾有兩種可能的機(jī)制,一種是由IgM-RF引起,由于第一步IgM的捕獲是非特異性的,IgM-RF同樣被捕獲,被捕獲的IgM-RF最后與信號抗體(IgG或IgG的抗原抗體復(fù)合物)結(jié)合,產(chǎn)生檢測信號;另一種機(jī)制則與雙抗體夾心法類似,由RF直接將捕獲抗體和信號抗體橋接,同樣會引起假性增高或假陽性。這兩種機(jī)制由哪一種主導(dǎo)目前尚缺乏相關(guān)研究和報道。

    1.4 RF對其他免疫測定的干擾 RF干擾免疫比濁法和乳膠光度免疫分析法也有報道,RF對免疫比濁法干擾機(jī)制主要是發(fā)生在反應(yīng)的第二步,增加抗原抗體復(fù)合物聚集形成多聚體,引起檢測結(jié)果的假性增高[17]。

    2 RF對免疫測定系統(tǒng)的干擾特點(diǎn)

    2.1 干擾的發(fā)生具有隨機(jī)性 RF對免疫測定系統(tǒng)的干擾是由RF與檢測系統(tǒng)中抗體(主要是IgG)Fc段的非特異性結(jié)合引起的,但這種非特異性的結(jié)合并不是絕對的。某一個體,RF的干擾沒有規(guī)律可循。而其中的原因可能與RF自身的特異性和同系的特異性有關(guān),一種RF不能與所有的IgG分子Fc部分的抗原結(jié)合,只有當(dāng)RF抗原的決定簇與IgG分子上Fc段對應(yīng)的空間結(jié)構(gòu)有互補(bǔ)性時才有可能結(jié)合,所以RF與IgG Fc段的結(jié)合是隨機(jī)的,沒有結(jié)合規(guī)律可循。因此,某一標(biāo)本中的RF是否能夠引起檢測系統(tǒng)的干擾,事前無法預(yù)料到[26]。

    2.2 干擾程度與RF濃度的劑量效應(yīng)不明確 無論高濃度還是低濃度的RF均會對免疫檢測引起干擾。盡管某些研究證實(shí)高濃度的RF較低濃度的RF更易引起干擾,但干擾發(fā)生與RF濃度的量效關(guān)系目前尚不明確[24-26]。一方面是由于RF本身有IgM、IgG、IgA、IgD、IgE等多種成分,干擾是由哪種或哪幾種成分引起,各種成分的干擾效果等均有待進(jìn)一步研究;另一方面是由于RF能夠自身發(fā)生聚集,而形成多聚體;另外,RF可與天然IgG反應(yīng),但與凝集IgG及免疫復(fù)合物中變性IgG親和力更強(qiáng)[24]。因此,干擾程度可能與分析物濃度也有一定的相關(guān)性(因?yàn)檫@些分析物會與檢測系統(tǒng)抗體形成抗原抗體復(fù)合物)[26]。

    3 干擾的發(fā)現(xiàn)和確認(rèn)

    3.1 追溯用于檢測干擾抗體的存在 結(jié)果追溯是指當(dāng)化驗(yàn)結(jié)果受到質(zhì)疑(因與臨床結(jié)果不符或超過極端限制的分析結(jié)果)時,在發(fā)出報告結(jié)果之前,依據(jù)完善的機(jī)制或程序,追索確認(rèn)干擾的存在[27]。干擾的可能性應(yīng)始終考慮,即使在管理最好的實(shí)驗(yàn)室,尤其當(dāng)結(jié)果出現(xiàn)與臨床表現(xiàn)不符合時,早期的調(diào)查始終是可取的[28]。追溯方法有明顯的缺點(diǎn),比如很多檢測結(jié)果本身病理、生理下會出現(xiàn)大的生物學(xué)差異,缺乏充分的臨床資料及臨床表現(xiàn)的復(fù)雜性。因此,利用生理學(xué)上不合理的閾值做判斷,提醒技術(shù)人員所有免疫檢測的潛在干擾是不實(shí)際的。

    3.2 積極的用于確認(rèn)干擾抗體存在的方法

    3.2.1 樣本連續(xù)稀釋法 通過對分析樣本進(jìn)行連續(xù)稀釋,分析稀釋系數(shù)與濃度梯度改變的線性關(guān)系,是較為簡單、可行的用于干擾發(fā)現(xiàn)和鑒別的方法[10,29]。例如,有報道,利用稀釋法可較好地消除由于異嗜性抗體引起的雅培化學(xué)發(fā)光檢測系統(tǒng)測定血清人絨毛膜促性腺激素的干擾[30]。

    3.2.2 加標(biāo)或加樣回收實(shí)驗(yàn) 加標(biāo)或加樣回收實(shí)驗(yàn)也可鑒定和確認(rèn)干擾的存在與否[29]。通過向檢測樣本中加入已知量的分析物,計算回收率,如果回收率在檢測系統(tǒng)預(yù)定回收率范圍內(nèi),可排除干擾的存在;如果回收率遠(yuǎn)高于檢測系統(tǒng)正?;厥章?,提示檢測結(jié)果偏高,樣本檢測結(jié)果可能存在假性增高;如果回收率遠(yuǎn)低于檢測系統(tǒng)正?;厥章剩崾緳z測結(jié)果偏低,樣本檢測結(jié)果可能存在假性降低[10]。

    3.2.3 使用不同方法學(xué)或不同廠商的檢測系統(tǒng)復(fù)查 使用不同方法學(xué)或不同廠商的檢測系統(tǒng)復(fù)查,尋找與測量的替代方法之間的差異[27,31]。由于RF對檢測系統(tǒng)的干擾是偶然的,不同檢查系統(tǒng)試劑中使用的抗體有一定的差異,因此同一樣本對一種檢測系統(tǒng)有干擾,但對另一檢測系統(tǒng)干擾不一定存在。所以對于一些樣本,尤其是當(dāng)初次檢測結(jié)果與臨床不符時,可采取更換檢測系統(tǒng)的方法復(fù)查樣本,以發(fā)現(xiàn)和確認(rèn)干擾。

    3.3 其他發(fā)現(xiàn)鑒別干擾存在的方法 對于在生理、病理、臨床上有相關(guān)性的項(xiàng)目(如肌酸激酶及其同工酶與肌鈣蛋白、乙型肝炎e抗原與乙型肝炎表面抗原等),比較相關(guān)檢測項(xiàng)目結(jié)果之間的一致性也是發(fā)現(xiàn)干擾的方法之一。另一種積極的做法是要求提供相關(guān)病史(如風(fēng)濕病史)。實(shí)施這一方法也較為困難,且很可能是無效的,因?yàn)樵谖粗蓴_發(fā)生率、程度及干擾物量效關(guān)系等信息時,很難預(yù)測干擾發(fā)生與否。對所有待檢樣本進(jìn)行盲篩也是不可取的。實(shí)驗(yàn)室和臨床工作人員之間應(yīng)建立良好的溝通,以最大限度地減少因意料之外的干擾而造成錯誤檢測結(jié)果的風(fēng)險。

    4 干擾的處理

    4.1 樣本前處理 在檢測和分析前對樣本進(jìn)行預(yù)處理以消除或盡可能降低樣本中的RF,以達(dá)到消除或降低RF對檢測系統(tǒng)的干擾。常用的樣本預(yù)處理方法包括:分析前在樣本中加入動物血清或 IgG[7,19]或加入封閉阻斷試劑[32];用包被IgG 的 固 體 顆 粒 吸 附[10,26];使 用 阻 斷 試 管 采 集 檢 測 樣本[23,33];使用聚乙二醇 6000[34]處理樣本,這樣的選擇有一個很好的理由,因?yàn)榕cIgG結(jié)合形成復(fù)合物而干擾免疫檢測的RF主要成分被認(rèn)為是多克隆IgM型RF,而與聚乙二醇6000沉淀的主要是此類較大的復(fù)合物,而對其他小分子單體RF沉淀很少;用蛋白L沉淀[16,35],但價格較高,使得L蛋白不可能用于臨床試驗(yàn)。盡管這些方法在減少或消除RF干擾方面被證實(shí)是有效的,且其中一些方法也較為簡單實(shí)用,但這些預(yù)處理方法已被證實(shí)并不是對所有RF樣本都有效[19,26,36]。

    4.2 改進(jìn)檢測系統(tǒng) 利用抗體工程,在免疫測定中截斷Fc部分(RF的結(jié)合位點(diǎn)),僅保留Fab段的抗體作為檢測試劑,或使用活體的生物素單鏈?zhǔn)且粋€較為理想的解決RF干擾的方法[37-39]。但檢測系統(tǒng)中,無論是捕獲抗體的包被固化,還是信號抗體的標(biāo)記,多在抗體的Fc段,這樣的修改可能增加抗體的包被和標(biāo)記的難度,在工程上依然有一定的困難,因此,目前市場上也無此類檢測系統(tǒng),但其可能成為今后抗體免疫檢測抗干擾研究的方向之一[37]。也有報道,RF不與卵黃抗體反應(yīng),如果將捕獲抗體或信號抗體(或兩者)使用卵黃抗體,能夠避免 RF 的干擾[40]。

    5 小結(jié)

    盡管對RF免疫檢測干擾的研究有了很大的進(jìn)步,并提出很多干擾鑒定和解決的方法,但到目前為止還沒有一種方法可徹底消除RF的干擾。當(dāng)出現(xiàn)與臨床不符的可疑結(jié)果時,檢驗(yàn)人員應(yīng)立即告知實(shí)驗(yàn)室負(fù)責(zé)人,及時與臨床聯(lián)系,尋找干擾原因,運(yùn)用多種檢驗(yàn)技術(shù)進(jìn)行檢驗(yàn),力求得出較為準(zhǔn)確的結(jié)果。相信隨著RF相關(guān)干擾的進(jìn)一步研究及免疫檢測技術(shù)、抗體工程技術(shù)的發(fā)展,在不久的將來能徹底解決由此帶來的困擾。

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