無花果蛋白酶酶解牡蠣肉的工藝優(yōu)化及其抗氧化活性研究

劉　　艷，段振華，2，*，羅　　偉，胡冰洋（.海南大學食品學院，海南?？?70228；2.海南大學熱帶生物資源教育部重點實驗室，海南?？?70228）

無花果蛋白酶酶解牡蠣肉的工藝優(yōu)化及其抗氧化活性研究

劉艷1，段振華1，2，*，羅偉1，胡冰洋1
（1.海南大學食品學院，海南海口570228；2.海南大學熱帶生物資源教育部重點實驗室，海南海口570228）

研究無花果蛋白酶酶解牡蠣肉的工藝優(yōu)化及其抗氧化活性，以氨基酸態(tài)氮含量和DPPH·清除率為指標進行單因素和正交實驗，研究酶解時間、酶解溫度、酶量、pH對氨基酸態(tài)氮含量和抗氧化活性的影響。正交實驗確定牡蠣酶解的最佳工藝條件為：酶量5.5%，酶解溫度50℃，pH6.0，酶解時間3.5 h。此工藝條件下，牡蠣酶解液氨基酸態(tài)氮的含量為0.181 g/100 mL，DPPH·清除率達71.80%，還原力為0.813，·OH清除率為16.19%，牡蠣酶解液具有較強的抗氧化活性。

牡蠣肉，抗氧化性，無花果蛋白酶，酶解

牡蠣（Oyster）在我國粵、閩稱蠔或蚵，江、浙稱蠣黃，山東以北稱蠣子或海蠣子。世界上已發(fā)現(xiàn)牡蠣有100種左右，是世界上第一大養(yǎng)殖貝類，也是我國四大養(yǎng)殖經(jīng)濟貝類之一。在我國沿海分布的牡蠣約有20多種，主要有近江牡蠣（Crassostrea rivularis）、褶牡蠣（Crossostrea plicatula）、太平洋牡蠣/長牡蠣（Crassostreagigas）、大連灣牡蠣（Crassostrea talienwhanensis）及密鱗牡蠣（Ostrea denselamellosa）［1］。牡蠣軟體含有豐富的糖原、蛋白質(zhì)、氨基酸、脂肪、微量元素和維生素等，現(xiàn)代醫(yī)學研究認為牡蠣具有如下功效：抑菌［2］、抗氧化［3］、抗腫瘤［4］、抗病毒［5］、抗高血壓［6］等作用。

牡蠣蛋白質(zhì)水解后生成許多小分子肽和氨基酸，不僅有利于人體吸收，提高蛋白質(zhì)的利用率，而且還能提取出豐富的營養(yǎng)成分和功能活性物質(zhì)。目前主要集中在牡蠣蛋白酶解制備ACE抑制肽［7］、抗腫瘤活性肽［8］、呈味肽［9］、抗菌肽［10］、抗氧化肽［11］、營養(yǎng)口服液［12］等方面的研究。文獻報道應用于牡蠣加工的蛋白酶主要有：胃蛋白酶、胰蛋白酶、中性蛋白酶、菠蘿蛋白酶［13］、枯草桿菌蛋白酶［14］等。無花果蛋白酶作為一種酶制劑，具有巰基蛋白酶的特性，有較強的蛋白水解能力，能作用于各種蛋白的純天然物質(zhì)，對豬肉、鯽魚肉、雞蛋白等食用蛋白都具有水解能力［15］。而無花果蛋白酶用于牡蠣肉酶解方面還未曾有過報道。本文用無花果蛋白酶酶解牡蠣肉，以酶解液的抗氧化性和氨基酸態(tài)氮含量為指標，研究牡蠣肉酶解的最佳工藝，以求獲得具有較高氨基酸態(tài)氮含量和抗氧化活性的牡蠣酶解液，為牡蠣抗氧化肽的開發(fā)利用和無花果蛋白酶的應用提供科學依據(jù)。

1　材料與方法

1.1材料與儀器

長牡蠣（Crassostrea gigas）?？谑醒亟髀忿r(nóng)貿(mào)市場，迅速運回實驗室，去殼后高速勻漿，并分裝置于-20℃冰箱中備用；無花果蛋白酶（8.0× 105U/g）河南百盛化工產(chǎn)品有限公司；1，1-二苯基-2-三硝基苯肼（DPPH） 上海源葉生物科技有限公司；氫氧化鈉、鹽酸、鐵氰化鉀、H2O2、三氯乙酸、三氯化鐵國產(chǎn)分析純。

HH-S26S電熱恒溫水浴鍋金壇市大地自動化儀器廠；101-2型電熱鼓風干燥箱常州市華普達教學儀器有限公司；85-1型恒溫磁力攪拌器金壇市富華儀器有限公司；EL204型電子天平梅特勒-托利多儀器（上海）有限公司；PHS-3C型實驗室pH計上海偉業(yè)儀器廠；TDZ5-WS型多管架自動平衡離心機湖南長沙湘儀離心機儀器有限公司；722型可見分光光度計上海奧譜勒儀器有限公司；JJ-2型組織搗碎機常州澳華儀器有限公司。

1.2實驗方法

1.2.1酶解方法稱取10.0 g牡蠣肉漿置于100 mL錐形瓶中，按比例1∶2（m/V）加入20.0 mL蒸餾水，調(diào)節(jié)pH，加入無花果蛋白酶后在一定溫度下對牡蠣肉漿進行酶解，并每隔20 min攪拌一次，酶解一段時間后，沸水浴滅酶10 min后冷卻，再以4000 r/min離心25 min后取上清液，測其氨基酸態(tài)氮含量和DPPH·清除率。

1.2.2單因素實驗用無花果蛋白酶酶解牡蠣肉制備牡蠣酶解液，分別以酶解溫度、酶解時間、酶量、pH為因素，每個因素取5個水平，單因素實驗設計為：酶量（3%、4%、5%、6%、7%）、溫度（45、50、55、60、65℃）、酶解時間（1、2、3、4、5 h）、pH（5.0、5.5、6.0、6.5、7.0），以氨基酸態(tài)氮含量和DPPH·清除率作為牡蠣酶解液的考察指標，以酶解時間3.0 h、pH6.0、酶解溫度55℃加酶量5%為基本條件，每次以一個因子為變量，進行單因素實驗。

1.2.3正交實驗以氨基酸態(tài)氮含量和DPPH·清除率為指標，以酶量、酶解溫度、pH、酶解時間為因素，采用四因素三水平的正交實驗L9（34），見表1。在正交實驗中，牡蠣酶解液稀釋10倍后進行DPPH·清除率測定，牡蠣酶解液稀釋5倍后進行·OH清除率和還原力測定。

表1　正交實驗因素與水平表Table 1　Orthogonal test factors and levels table

1.2.4氨基酸態(tài)氮測定采用中性甲醛電位滴定法［16-17］。

1.2.5DPPH·清除率的測定取牡蠣酶解液2 mL，加入2×10-4mol/L DPPH溶液2 mL，混勻后在室溫下避光反應30 min，在517 nm下測定吸光度Ai，空白組以等體積無水乙醇溶液代替DPPH溶液，對照組以等體積蒸餾水代替樣品溶液，并以等體積蒸餾水和無水乙醇混合液空白調(diào)零［18］，平行測3次取平均值。

清除率計算公式：

式中：A0為對照組吸光度；Ai為樣品組吸光度；Aj為空白組吸光度。

1.2.6 ·OH清除率的測定采用Fenton反應后遇水楊酸可生成有色物質(zhì)的特點來研究酶解液對·OH的清除能力。向不同試管中加入樣液和4.5 mmol/L水楊酸、4.5 mmol/L FeSO4、4.4 mmol/L H2O2各1.0 mL，37℃下恒溫反應30 min后，在510 nm處測其吸光度［19］，平行測3次取平均值。

清除率計算公式：

其中，A0為空白對照；Ai為含水楊酸時樣品液的吸光度值；Aj為不含水楊酸時樣品液的吸光度值。

1.2.7還原力的測定取酶解液1.0 mL，然后加入0.2 mol/L磷酸緩沖溶液（pH6.6）溶液1.0 mL和1%的鐵氰化鉀溶液1.0 mL于試管中混勻。混合物在50℃水浴中反應20 min后急速冷卻，并加入10%的三氯乙酸（TCA）1.0 mL，混勻后以4000 r/min離心10 min。取上清液2.5 mL，加入蒸餾水2.0 mL及0.1%的三氯化鐵溶液0.5 mL混勻靜置10 min，以蒸餾水為空白調(diào)零，在700 nm波長處測定吸光度［20-21］，以吸光度表示還原能力大小，吸光度越大，樣品的還原能力越強。

1.2.8數(shù)據(jù)處理所有實驗均設定三個平行，測定結果以平均值±標準偏差（SD）表示，并運用正交設計助手Ⅱ和Origin 8.0對實驗數(shù)據(jù)進行分析與處理。

2　結果與分析

2.1不同酶量對牡蠣酶解液的氨基酸態(tài)氮含量和DPPH·清除率的影響

不同酶量下無花果蛋白酶酶解牡蠣肉的效果見圖1。從圖1可知，隨著酶量的增加，氨基酸態(tài)氮含量增加較快，酶用量低于5%時，底物能被酶作用的位點過量，氨基態(tài)氮含量隨酶用量的增加而逐漸升高；而當酶量超過5%時，由于無花果蛋白酶與底物逐漸達到飽和，導致氨基態(tài)氮含量增幅很小。隨著酶量的增加，DPPH·清除率呈先升后降再趨于平穩(wěn)的趨勢。酶量在3%～5%的范圍內(nèi)，牡蠣肉酶解產(chǎn)生較多的抗氧化肽，DPPH·清除率增加最快；當加酶量大于5%，酶濃度已逐漸被底物飽和，DPPH·清除率稍有下降后趨于平穩(wěn)，清除率下降可能是水解過度導致肽的進一步轉(zhuǎn)變成游離氨基酸導致的。因此無花果蛋白酶添加量取5%為宜。

圖1　酶量對牡蠣酶解液的氨基酸態(tài)氮含量和DPPH·清除率的影響Fig.1　The effect of enzyme dosage on amino acid-nitrogen and DPPH radical scavenging activity

2.2酶解溫度對牡蠣酶解液的氨基酸態(tài)氮含量和DPPH·清除率的影響

采用無花果蛋白酶在不同溫度下酶解牡蠣肉，溫度對氨基酸態(tài)氮含量和DPPH·清除率的影響如圖2所示。由圖2可知，隨著溫度升高，氨基態(tài)氮含量呈先升后降的趨勢。溫度過低，不利于無花果蛋白酶的作用，溫度過高，無花果蛋白酶的活力下降甚至失活。在45～55℃時，隨著溫度的升高，酶對底物的水解能力增加，氨基酸態(tài)氮含量不斷增加；55℃時氨基態(tài)氮含量達到最大值；但酶是一種活性蛋白，當超過55℃時，無花果蛋白酶的活力不斷下降，致使水解能力下降，從而氨基酸態(tài)氮含量急劇下降。DPPH·清除率也呈先升后降的趨勢，45～55℃時，隨著溫度的升高，酶解產(chǎn)生更多的抗氧化肽；在55℃時產(chǎn)生的抗氧化肽最多，從而DPPH·清除率達到最大；當溫度進一步升高時，無花果蛋白酶活力下降，酶解產(chǎn)生抗氧化肽的量有限，且溫度較高，會降低抗氧化肽的活性，從而導致DPPH·清除率下降。因此，無花果蛋白酶的酶解最適溫度在55℃左右。

圖2　酶解溫度對牡蠣酶解液的氨基酸態(tài)氮含量和DPPH·清除率的影響Fig.2　The effect of temperature on amino acid-nitrogen and DPPH radical scavenging activity

2.3pH對牡蠣酶解液的氨基酸態(tài)氮含量和DPPH·清除率的影響

pH對無花果蛋白酶水解效果的影響見圖3。圖3表明，隨著酶解pH升高，氨基態(tài)氮含量呈先增后降的趨勢，當pH達到6.0左右時，酶解液中氨基態(tài)氮含量達到最大值，這是因為pH會直接影響酶及蛋白質(zhì)分子的某些解離基團的解離狀態(tài)。只有在特定pH條件下，酶及底物蛋白質(zhì)的解離基團才能處于易于結合并轉(zhuǎn)化成產(chǎn)物的解離狀態(tài)［22］。隨著pH的增加，DPPH·清除率呈先升后降的趨勢，pH影響酶的生物活性，pH也會直接影響蛋白質(zhì)分子的某些解離基團的解離狀態(tài)，酶解液中的抗氧化肽可能受pH影響，解離狀態(tài)發(fā)生變化，從而使其抗氧化活性降低。因此選擇pH6.0為單因素最適pH。

圖3　pH對牡蠣酶解液的氨基酸態(tài)氮含量和DPPH·清除率的影響Fig.3　The effect of pH on amino acid-nitrogen and DPPH radical scavenging activity

2.4酶解時間對牡蠣酶解液的氨基酸態(tài)氮含量和DPPH·清除率的影響

酶解時間對牡蠣肉無花果蛋白酶水解效果的影響見圖4。由圖4可看出，在初期的3 h內(nèi)酶解反應迅速，當水解進行3 h左右時氨基酸態(tài)氮含量達到最大值；隨著時間的增加，無花果蛋白酶逐漸消耗，酶解能力有限，氨基態(tài)氮含量變化不明顯。隨著時間的增加，DPPH·清除率呈先升后趨于穩(wěn)定的趨勢，當酶解時間為1～3 h時，DPPH·清除率上升最快；當酶解時間大于3 h，DPPH·清除率上升較少，酶解時間過長將增加多肽水解成氨基酸的可能，失去了清除自由基的能力［23］。因而酶解時間3 h最適宜。

圖4　酶解時間對牡蠣酶解液的氨基酸態(tài)氮含量和DPPH·清除率的影響Fig.4　The effect of time on amino acid-nitrogen and DPPH radical scavenging activity

2.5正交實驗數(shù)據(jù)及其分析

根據(jù)單因素實驗結果確定正交實驗的因素及水平值，以氨基酸態(tài)氮和DPPH·的清除率為檢測指標，設計4因素3水平正交實驗來優(yōu)化各因素組合。正交實驗因素水平與直觀分析表，見表2。

表2　正交實驗因素水平與直觀分析表Table 2　The orthogonal factors，level and intuitive analysis table

運用極差分析法對正交實驗的結果進行分析。由表2極差R1和R2可知，酶量、酶解溫度、時間、pH對牡蠣酶解液的氨基酸態(tài)氮和DPPH·清除率都有影響，但是影響程度不同。其中酶解時間對氨基酸態(tài)氮含量影響最大，其次是酶解溫度、酶量，pH影響最小，以氨基酸態(tài)氮含量為指標的最佳酶解工藝為A3B1C1D3。酶解溫度對DPPH·清除率的影響最大，其次是pH、酶解時間，酶量影響最小，以DPPH·清除率為指標的最佳工藝為A3B1C2D2。考慮氨基酸態(tài)氮含量和DPPH·清除率對牡蠣肉酶解效果的影響，根據(jù)各因素對各個指標的影響大小，pH對DPPH·清除率影響較大，而對氨基酸態(tài)氮含量影響最小，所以選擇pH為6.0；酶解時間對氨基酸態(tài)氮含量影響最大，而對DPPH·清除率影響較小，故選擇3.5 h。

因此，為達到具有較高氨基酸態(tài)氮含量和DPPH·清除率的牡蠣酶解液這一目標，綜合考慮這兩項指標，無花果蛋白酶酶解牡蠣肉的最佳工藝為：A3B1C2D3，即酶量為5.5%，酶解溫度50℃，pH6.0，酶解時間3.5 h。

2.6牡蠣肉酶解最佳條件驗證

按照正交實驗所得的最佳因素水平組合A3B1C2D3進行驗證實驗，測定酶解液的氨基酸態(tài)氮含量、DPPH·清除率、·OH清除率和還原力，結果見表3。

表3　牡蠣肉酶解液的各項指標Table 3　The indicators of oyster meat hydrolysates

由表3可知，所得酶解液氨基酸態(tài)氮的含量為0.181 g/100 mL、DPPH·清除率為71.80%，都明顯地高于正交組合所得到的數(shù)據(jù)，說明該正交優(yōu)化實驗具有可行性，能夠有效提高牡蠣酶解液的氨基酸態(tài)氮含量和DPPH·清除率。羥自由基是最活潑的一種活性分子，是已知最強的氧化劑，進攻性極強，它幾乎可以和所有細胞成分發(fā)生反應，對機體危害極大［24］，牡蠣酶解液能夠清除羥自由基，證明其具有抗氧化活性。牡蠣酶解液顯示出較強的還原能力，而還原能力與抗氧化能力呈正相關，也證明酶解液的抗氧化活性。

3　結論

無花果蛋白酶酶解牡蠣肉的最佳工藝條件為酶量5.5%，酶解溫度50℃，pH6.0，酶解時間3.5 h。驗證實驗得到在此條件下制備的酶解液，其氨基酸態(tài)氮的含量為0.181 g/100 mL、DPPH·清除率達到71.80%，·OH清除率為16.19%，還原力達0.813。對牡蠣酶解液的DPPH·清除率、·OH清除率和還原力的測定發(fā)現(xiàn)，牡蠣酶解液對DPPH·和·OH均有較好的清除能力，且還原性較強，具有良好的體外抗氧化活性，但由于酶解液成分較復雜，抗氧化肽的分離、提純及抗氧化肽的分子量大小和結構對抗氧化活性的影響還需要進一步研究。

運用無花果蛋白酶酶解牡蠣肉，制備牡蠣酶解液具有重要的意義，該酶解液呈亮黃色，澄清透明，味道鮮美，具有較高的抗氧化活性，這對無花果蛋白酶的應用、牡蠣抗氧化肽精深加工和功能性產(chǎn)品開發(fā)都具有重要的實際意義。

［1］段振華，劉小兵．牡蠣肉的加工利用研究進展［J］．肉類研究，2011，25（7）：29-31．

［2］盧學敏，王頎林，藍曉燕，等．牡蠣活性多肽的抑菌作用與抗氧化性能研究［J］．中國釀造，2013，32（2）：77-80．

［3］Xiu P D，Zhu B W，Zhao H X，et al．Preparation and in vitro antioxidantactivityofenzymatichydrolysatesfromoyster（Crassostrea talienwhannensis）meat［J］．International Journal of Food Science and Technology，2010，45：978-984．

［4］陳艷輝，李超柱，黎丹戎，等．動物蛋白酶酶解制備廣西產(chǎn)牡蠣肉抗腫瘤活性肽的實驗研究［J］．食品工業(yè)科技，2010，31（8）：167-169．

［5］Zeng M Y，Cui W X，Zhao Y H，et al．Antiviral active peptide from oyster［J］．Chinese Journal of Oceanology and Limnology，［6］Wang J P，Hu J E，Cui J Z，et al．Purification and identification of a ACE inhibitory peptide from oyster proteins hydro1ysate and the anti hypertensive effect of hydro1ysate in spontaneously hypertensive rats［J］．Food Chemistry，2008，111（2）：302-308．

2008，26（3）：307-312．

［7］苑園園，于宏偉，田益玲，等．酶法制備牡蠣ACE抑制肽的條件優(yōu)化［J］．中國食品學報，2013，13（3）：115-121．

［8］陳艷輝，李超柱，黎丹戎，等．動物蛋白酶酶解制備廣西產(chǎn)牡蠣肉抗腫瘤活性肽的實驗研究［J］．食品工業(yè)科技，2010，31（8）：167-169．

［9］侯清娥，秦小明，林華娟，等．基于神經(jīng)網(wǎng)絡法制備牡蠣呈味肽工藝優(yōu)化研究［J］．食品工業(yè)科技，2011，32（11）：301-304．

［10］盧學敏，王頎林，藍曉燕，等．牡蠣活性多肽的抑菌作用與抗氧化性能研究［J］．中國釀造，2013，32（2）：77-80．

［11］余杰，楊振國，鐘煉，等．酶法制備牡蠣抗氧化肽研究［J］．中國海洋藥物雜志，2012，31（3）：31-36．

［12］黨建章，寧超美，溫敏，等．酶法制備牡蠣營養(yǎng)口服液［J］．中藥材，2010，33（3）：445-448．

［13］苗艷麗，方富永，紀曉德，等．牡蠣肉雙酶復合水解和酸水解工藝［J］．食品研究與開發(fā)，2011，32（4）：21-24．

［14］Wang Q K，Li W，He Y H，et al．Novel antioxidative peptides fromtheproteinhydrolysateofoysters（Crassostrea talienwhanensis）［J］．Food Chemistry，2014，145（15）：991-996．

［15］郭冬青，紀付江，程紹杰，等．無花果蛋白酶的研究進展［J］．北方園藝，2010（7）：210-211．

［16］Zhou D Y，Zhu B W，Qiao L，et al．In vitro antioxidant activity of enzymatic hydrolysates prepared from abalone（Haliotis discus hannai Ino）viscera［J］．Food and Bioproducts Processing，2012，90（2）：148-154．

［17］Duan Z H，Wang J L，Yi M H，et al．Recovery of Proteins from Silver carp By-products with Enzymatic Hydrolysis and Reduction of Bitterness in Hydrolysate［J］．Journal of Food Process Engineering，2010，33（5）：962-978．

［18］雷丹青，周先果，張輝，等．牡蠣酶解液的抗氧化活性研究［J］．時珍國醫(yī)國藥，2008，19（11）：2674-2676．

［19］徐文匯，魏玉西，郭奇．劍麻花提取物的抗氧化活性研究［J］．食品科學，2009，30（9）：47-50．

［20］Zhu L J，Chen J，Tang X Y，et al．Reducing，radical scavenging，andchelationpropertiesofinvitrodigestsof alcalase-treated zein hydrolysate［J］．Journal of Agricultural and Food Chemistry，2008，56：2714-2721．

［21］馮金曉，薛長湖，徐瑩，等．響應面法優(yōu)化Protease M酶解牡蠣工藝的研究［J］．食品科技，2009，34（5）：184-188．

［22］羅偉，段振華，萬斌，等．貽貝煮汁液酶解工藝的研究［J］．食品研究與開發(fā)，2014，35（3）：39-43．

［23］韋海勝，常虹，段振華，等．牡蠣肉酶解液的抗氧化工藝研究［J］．食品科技，2012，37（6）：150-153．

［24］顏軍，茍小軍，鄒全付，等．分光光度法測定Fenton反應產(chǎn)生的羥基自由基［J］．成都大學學報：自然科學報，2009，28（2）：91-93．

Study on enzymatic hydrolysis technology of oyster meat by ficus and its antioxidant activity

LIU Yan1，DUAN Zhen-hua1，2，*，LUO Wei1，HU Bing-yang1
（1.College of Food Science and Technology，Hainan University，Haikou 570228，China；2.Key Laboratory of Tropical Biological Resources，Ministry of Education，Hainan University，Haikou 570228，China）

The enzymatic hydrolysis technology of oyster meat by ficus and its antioxidant activity were studied in this paper.The effects of pH，temperature，time and enzyme dosage on the hydrolysis were investigated by single-factor and orthogonal tests.The hydrolyzate indicators of single-factor tests and orthogonal tests were DPPH radical scavenging activity and the amino acid-nitrogen content.The optimal hydrolysis conditions of oyster meat by ficus were enzyme dosage 5.5%，hydrolysis temperature 50℃，pH6.0 and time 3.5 h.Under such conditions，the content of amino acid-nitrogen reached 0.181 g/100 mL，DPPH radical scavenging rate up to 71.80%，reducing power was 0.813 and hydroxyl radical scavenging rate reached 16.19%.The hydrolysates exhibited higher antioxidant activities.

oyster meat；antioxidant activity；ficus；enzymatic hydrolysis

TS254.4

A

1002-0306（2015）18-0182-05

10.13386/j.issn1002-0306.2015.18.028

2014－12－01

劉艷（1989-），女，在讀碩士研究生，研究方向：水產(chǎn)品食品科學技術，E-mail：liuyan130832@126.com。

段振華（1965-），男，博士，教授，研究方向：水產(chǎn)品食品科學技術，E-mail：dzh65@163.com。

國家“十二五”科技支撐計劃（2013BAB01B04）；海南省科技興海專項（XH201308）。