施文驍,顧雪迎,郭慶元*,王洪凱*
(1.浙江大學(xué) 生物技術(shù)研究所,浙江 杭州 310058;2.新疆農(nóng)業(yè)大學(xué) 農(nóng)學(xué)院,新疆 烏魯木齊 830052)
環(huán)介導(dǎo)擴(kuò)增快速檢測(cè)葡萄根癌病菌技術(shù)體系的建立
施文驍1,顧雪迎2,郭慶元2*,王洪凱1*
(1.浙江大學(xué) 生物技術(shù)研究所,浙江 杭州 310058;2.新疆農(nóng)業(yè)大學(xué) 農(nóng)學(xué)院,新疆 烏魯木齊 830052)
葡萄根癌病是葡萄上的重要病害之一。設(shè)計(jì)適用于葡萄根癌病菌環(huán)介導(dǎo)擴(kuò)增的特異性引物,并建立快速檢測(cè)葡萄根癌病菌的環(huán)介導(dǎo)擴(kuò)增檢測(cè)體系。
葡萄根癌??;環(huán)介導(dǎo)同溫?cái)U(kuò)增;快速檢測(cè)
文獻(xiàn)著錄格式:施文驍,顧雪迎,郭慶元,等.環(huán)介導(dǎo)擴(kuò)增快速檢測(cè)葡萄根癌病菌技術(shù)體系的建立 [J].浙江農(nóng)業(yè)科學(xué),2015,56(12):2015-2018.
葡萄根癌病是世界范圍內(nèi)葡萄種植區(qū)的一種嚴(yán)重病害,為害葡萄后,在葡萄的根莖部位形成粗大的癌腫是其典型的癥狀[1-2]。關(guān)于引起葡萄根癌病的病原,目前全世界報(bào)道有2種,Agrobacterium vitis和A.rhizogenes。來自分子和脂肪酸的研究表明,A.vitis和A.rhizogenes的親緣關(guān)系很近[3]。但大量試驗(yàn)確認(rèn),葡萄根癌病的主要病原菌是A. vitis[1]。在我國,葡萄根癌病菌是A.vitis,此種細(xì)菌主要生活在根冠及周圍的土壤中,可以在葡萄藤上存活并繁殖,能引起葡萄產(chǎn)量的下降甚至整株葡萄的枯死[1-2]。
快速準(zhǔn)確檢測(cè)是植物病害有效防治的基礎(chǔ)。以PCR技術(shù)為基礎(chǔ)的快速檢測(cè)方法,已經(jīng)廣泛應(yīng)用到植物病原菌的檢測(cè)中[1]。葡萄根癌病是土傳病害,因而對(duì)苗木、植株進(jìn)行早期檢測(cè),從源頭上減少帶菌植物,是防治此病害的最直接的方法。目前,基于PCR方法的快速檢測(cè)體系[4-5],如特異性引物PCR檢測(cè)、熒光定量PCR檢測(cè)體系,已經(jīng)相繼建立[6-8]。但這些方法一般需要比較昂貴的儀器設(shè)備,往往還需要電泳等輔助方法,費(fèi)時(shí)費(fèi)力[9]。環(huán)介導(dǎo)擴(kuò)增方法技術(shù)簡(jiǎn)單,擴(kuò)增過程溫度一致,不需要變溫,時(shí)間短,特異性高,容易成為普及的快速檢測(cè)方法[10-11]。本研究利用從新疆吐魯番地區(qū)分離到的Agrobacterium vitis菌株,建立了環(huán)介導(dǎo)擴(kuò)增快速檢測(cè)葡萄根癌病菌的技術(shù)體系。
1.1供試菌株
葡萄根癌病致病菌株A-1,A-2,A-3,A-4(由新疆農(nóng)業(yè)大學(xué),郭慶元教授提供),及標(biāo)準(zhǔn)菌株AV1.2555(中國科學(xué)院微生物研究所菌種保藏中心提供)。發(fā)根農(nóng)桿菌菌株AGL1由浙江大學(xué)生物技術(shù)研究所真菌研究室保藏,作為對(duì)照。
1.2葡萄根癌病菌的分子鑒定
根據(jù)國際上對(duì)葡萄根癌病的研究結(jié)果,獲得用于檢測(cè)葡萄根癌病的7對(duì)引物,引物序列見表1。
表1 用于PCR檢測(cè)的特異性引物
菌體培養(yǎng)、DNA的提取方法按照文獻(xiàn) [7]的方法進(jìn)行。PCR程序根據(jù)引物的不同,采用文獻(xiàn)中介紹的程序進(jìn)行。
1.3環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)
1.3.1環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增的引物設(shè)計(jì)
在 LAMP引物設(shè)計(jì)的網(wǎng)站 (http:// primerexplorer.jp/e/)上,將目的DNA片段序列按照提示上傳,設(shè)計(jì)引物,選取在特異性序列位置的LAMP引物作為合適的引物序列。
1.3.2環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增的體系建立
為了建立對(duì)葡萄根癌病最好的LAMP檢測(cè)反應(yīng)體系,在LAMP的一般檢測(cè)體系的基礎(chǔ)上分別對(duì)其引物濃度,Mg2+濃度,Bst酶量,反應(yīng)溫度,反應(yīng)時(shí)間等條件進(jìn)行優(yōu)化。具體試驗(yàn)如下:引物FIP/ BIP/F3/B3的加入量設(shè)為3/3/0.25/0.25,2.5/ 2.5/0.25/0.25,2/2/0.25/0.25,3/3/0.5/0.5(單位為μL),4個(gè)梯度;2.5 mmol.L-1Mg2+的加入量為4,5,6和 7μL;Bst酶加入量分別為1.2,1.0,0.8,0.6和0.5 U;將反應(yīng)中加入的DNA濃度分別稀釋至10-1,10-2,10-3,10-4倍;反應(yīng)溫度設(shè)置為55,58,60,63,65℃;反應(yīng)時(shí)間分別設(shè)置為30,45,60,90,120 min。通過上述6次試驗(yàn)來確定適用于葡萄根癌病菌的LAMP檢測(cè)反應(yīng)體系。
1.4田間樣品的快速檢測(cè)
將田間的病瘤組織切取3 mm×3 mm×3 mm的小塊,置入200μL無菌水中,浸泡10 min。然后去掉組織塊,將病菌浸出液在95℃加熱5 min,取2μL為模板,進(jìn)行環(huán)介導(dǎo)同溫?cái)U(kuò)增。以健康的葡萄組織為對(duì)照。
2.1葡萄根癌病菌的特異性DNA片段篩選
葡萄根癌病菌不同菌株之間存在遺傳分化。根據(jù)以前的研究,根據(jù)不同的DNA片段,已經(jīng)有7對(duì)特異性引物用于不同時(shí)間和地點(diǎn)的葡萄根癌病菌的分子鑒定。為了明確哪個(gè)DNA片段適合我們采集到的菌株的檢測(cè),我們分別以病原菌株A-1,A-2,A-3,A-4,及標(biāo)準(zhǔn)菌株AV1.2555的DNA為模板,用查閱到的7對(duì)PCR引物進(jìn)行PCR驗(yàn)證。其結(jié)果如圖1所示。僅VirFF1/VirFR2能夠擴(kuò)增出單一清晰的條帶,AVSP3-1F/AVSP3-1R和AVSNP-3F/AVSNP-3R均未能擴(kuò)增出條帶,PGF/PGR,NOPFa/NOPRa,Ab3-F3/Ab3-R4和VCF3/VCR3有部分不能擴(kuò)增出條帶,能擴(kuò)出的條帶也不清晰或單一。
圖1 葡萄根癌病病原菌鑒定引物篩選的結(jié)果
引物對(duì)VirFF1/VirFR2對(duì)應(yīng)的DNA片段是Agrobacterium vitis VirF(virF)gene(GenBank No. AF044200)。
2.1.1環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)
登錄 LAMP引物設(shè)計(jì)網(wǎng)站 (http:// primerexplorer.jp/e/),導(dǎo)入目的DNA片段序列,自動(dòng)生成引物組。挑選引物正好在病原菌的特異性序列處的引物組 (表2、圖2)。
表2 LAMP特異性引物的序列
圖2 LAMP引物擴(kuò)增序列及6個(gè)特異性區(qū)域
在LAMP檢測(cè)體系中,引物濃度是其主要的影響因素之一,外引物濃度過高會(huì)抑制內(nèi)引物結(jié)合到模板上的起始擴(kuò)增速率,而濃度過低則會(huì)導(dǎo)致反應(yīng)不完全。Mg2+是酶開始反應(yīng)的啟動(dòng)因子,影響LAMP整個(gè)反應(yīng)過程的效率。Bst DNA聚合酶是一種具有自主鏈置換活性的DNA聚合酶,該酶是使LAMP反應(yīng)能夠在恒溫條件下進(jìn)行的關(guān)鍵之一,而該酶的活性又直接決定反應(yīng)的效率。Bst DNA聚合酶的最適反應(yīng)溫度為60~65℃,因此LAMP的反應(yīng)溫度應(yīng)設(shè)置在此區(qū)間內(nèi)。
因此在本研究中對(duì)LAMP反應(yīng)條件的優(yōu)化實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,葡萄根癌病LAMP反應(yīng)的最佳體系為內(nèi)外引物比10∶1,即FIP/BIP/F3/B3為2.5/2.5/ 0.25/0.25,其余條件皆與文獻(xiàn)提供一致。電泳結(jié)果如圖3所示。
圖3 LAMP最佳反應(yīng)體系的電泳圖
LAMP利用4個(gè)特殊設(shè)計(jì)的引物和具有鏈置換活性的DNA聚合酶,在恒溫條件下能夠特異、高效、快速地?cái)U(kuò)增DNA,能夠在極低的目的片段拷貝數(shù)下發(fā)生擴(kuò)增反應(yīng)。為了檢測(cè)LAMP技術(shù)的靈敏度,本研究將病原菌DNA按10的倍數(shù)稀釋5個(gè)梯度進(jìn)行反應(yīng),反應(yīng)結(jié)果顯示,LAMP體系的檢測(cè)靈敏度可達(dá)20 pg。
因此,我們建立的LAMP檢測(cè)體系為 (25μL):10×Bst緩沖液2.5μL,Mg2+(2.5 mmol.L-1)6μL,F(xiàn)3/B3(20μmol.L-1)各0.25μL,F(xiàn)IP/ BIP(20μmol.L-1)各3μL,dNTP(10 mmol. L-1)3.5μL,ddH2O 4.5μL,1 U.μL-1Bst DNA聚合酶1μL,DNA 1μL。62℃反應(yīng)1 h。
2.1.2田間樣品的快速檢測(cè)
將田間樣品進(jìn)行LAMP反應(yīng),通過電泳觀察,在病組織樣品中檢測(cè)到病菌,而在健康組織中,沒有擴(kuò)增出產(chǎn)物,得到如下結(jié)果 (圖4)。
將擴(kuò)增以后的離心管進(jìn)行10 000 r.min-1離心,可觀察到離心管底部有白色沉淀產(chǎn)生。取5μL LAMP反應(yīng)液,加入45μL的稀釋10倍SYBR?GREENⅠ熒光染液,可以觀察到陽性反應(yīng)液變成綠色,而陰性反應(yīng)液只起到稀釋熒光染液的作用 (圖5)。
圖4 LAMP田間樣品檢測(cè)的電泳圖
圖5 LAMP田間樣品熒光染色圖
葡萄根癌病是威脅葡萄安全生產(chǎn)的嚴(yán)重病害[2],建立快速高效的檢測(cè)體系有利于對(duì)該病害的有效防控。
葡萄根癌病菌還可以侵染其他植物,如長(zhǎng)壽花、向日葵、番茄、曼陀羅、煙草、灰藜等,但不同菌株的寄主范圍有差別,對(duì)檢測(cè)引物的反應(yīng)也有不同,說明種內(nèi)存在明顯的遺傳分化[12]。因此,需建立適合于葡萄栽培地的病菌菌株檢測(cè)體系。本研究根據(jù)田間采集到的菌株,建立了適合當(dāng)?shù)鼐甑牡葴丨h(huán)介導(dǎo)擴(kuò)增的方法,該方法體系不需要復(fù)雜的儀器設(shè)備,只要一個(gè)62℃的保溫器皿及一個(gè)簡(jiǎn)單的紫外燈,即可在60~90 min內(nèi)完成整個(gè)檢測(cè)過程。目前LAMP技術(shù)檢測(cè)葡萄根癌病的體系雖然已經(jīng)建立,但是田間試驗(yàn)還相對(duì)偏少,今后應(yīng)結(jié)合實(shí)際應(yīng)用進(jìn)一步優(yōu)化,從而使其能更有效、更可靠地運(yùn)用于實(shí)際檢測(cè)中。
[1] 施文驍,王洪凱,郭慶元.葡萄根癌病研究進(jìn)展 [J].浙江農(nóng)業(yè)科學(xué),2013(11):1418-1421.
[2] Ophel K,Kerr A.Agrobacterium vitis sp.nov.for strains of Agrobacterium biovar 3 from grapevines[J].International Journal of Systematic Bacteriology,1990,40:236-241.
[3] Kawaguchi A,Sawada H,Inoue K,et al.Multiplex PCR for the identification of Agrobacterium biovar 3 strains[J].Journal of General Plant Pathology,2005,71:54-59.
[4] Szegedi E,Bottka S.Detection of Agrobacterium vitis by polymerase chain reaction in grapevine bleeding sap after isolation on a sem iselective medium[J].Vitis,2002,41:37-42.
[5] Kawaguchi A,Inoue K.Grapevine crown gall caused by Rhizobium radiobacter(Ti)in Japan[J].Journal of General Plan t Pathology,2009,75:205-212.
[6] Suzaki K,Yoshida K,Sawada H.Detection of tumorigenic Agrobacterium strains from infected apple saplings by colony PCR with improved PCR primers[J].Journal of General Plant Pathology,2004,70:342-347.
[7] Bini F,Kuczmog A,Putnoky P,et al.Novel pathogen-specific primers for the detection of Agrobacterium vitis and Agrobacterium tumefaciens[J].Vitis,2008,47(3):181-189.
[8] Lim S H,Kim J G,Kang H W.Novel SCAR primers for specific and sensitive detection of Agrobacterium vitis strains[J].M icrobiological Research,2007,164(4):451-460.
[9] Seetang-Nun Y,Jaroenram W,Sriurairatana S,et al.Visual detection of white spot syndrome virus using DNA-functionalized gold nanoparticles as probes combined with loop-mediated isothermal amplification[J].Molecular and Cellular Probes,2013,27:71-79.
[10] Notom i T H,Okayama H,Masubuchi T,et al.Loop-mediated isothermal amplification of DNA[J].Nucleic Acids Research,2000,28(12):e63.
[11] Ahmadi S,Almasi M A,F(xiàn)atehi F,et al.Visual detection of potato leaf roll virus by one-step reverse transcription loop-mediated isothermal amplification of DNA with hydroxynaphthol blue dye [J].Journal of Phytopathology,2013,161:120-124.
[12] Tolba I H,Zaki M F.Characterization of Agrobacterium vitis isolates obtained from galled grapevine plants in Egypt[J]. Annals of Agricultural Science,2011,56(2):113-119.
(責(zé)任編輯:張 韻)
S 436.631
A
0528-9017(2015)12-2015-03
10.16178/j.issn.0528-9017.20151231
2015-07-01
新疆維吾爾自治區(qū)重大項(xiàng)目 (201130102)
施文驍(1990-),女,浙江杭州人,碩士研究生。E-mail:Zjwxshi@gmail.com。
郭慶元。E-mail:guoqingyuan3009@sina.com;王洪凱。E-mail:hkwang@zju.edu.cn。