唐照,張葉敏,李明欣,汪長華(武漢大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院病理生理學(xué)教研室,湖北武漢430071)
泛素蛋白酶系統(tǒng)通過穩(wěn)定PPARγ調(diào)節(jié)脂肪細胞分化*
唐照,張葉敏,李明欣,汪長華△
(武漢大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院病理生理學(xué)教研室,湖北武漢430071)
目的:探討泛素蛋白酶系統(tǒng)(ubiquitin-proteasome system,UPS)在體外脂肪細胞分化中的作用。方法:常規(guī)方法誘導(dǎo)前脂肪細胞分化為脂肪細胞,Western blot檢測蛋白質(zhì)表達,免疫共沉淀檢查蛋白質(zhì)間結(jié)合,油紅O染色檢測脂肪細胞中的脂質(zhì),RT-PCR檢測mRNA表達。結(jié)果:UPS抑制劑硼替佐米可抑制3T3-L1前脂肪細胞分化為脂肪細胞,表現(xiàn)為細胞內(nèi)脂質(zhì)含量降低以及脂肪細胞標志蛋白mRNA表達的降低。蛋白激酶G激動劑西地那非可激活UPS,并增強脂肪細胞的分化。抑制UPS可降低熱休克蛋白90(HSP90)和過氧化物酶體增殖物活化受體γ(PPARγ)間的結(jié)合;同時降低細胞可溶性組分中HSP90和PPARγ的表達,增強其在不可溶性組分中的表達。HSP90特異性的N末端抑制劑格爾德霉素可抑制西地那非促進的PPARγ表達和脂肪細胞的分化。結(jié)論:泛素蛋白酶系統(tǒng)通過HSP90調(diào)節(jié)PPARγ的表達,從而影響脂肪細胞的分化。
泛素蛋白酶系統(tǒng);過氧化物酶體增殖物活化受體γ;熱休克蛋白90;脂肪細胞;細胞分化
[ABSTRACT]AIM:To investigate the role of ubiquitin-proteasome system(UPS)in adipocyte differentiation.METHODS:Differentiation of3T3-L1 preadipocytes into adipocytes was induced by treatmentwith insulin,3-isobutyl-1-methylxanthine and dexamethasone.Western blotand immunoprecipitation were performed to detect the protein abundances and association,respectively.Oil red O staining was used to determine the intracellular lipid of 3T3-L1 adipocytes.The levels ofmRNA weremeasured by reverse transcription polymerase chain reaction(RT-PCR).RESULTS:UPS inhibitor bortezomib(BZM)suppressed the differentiation of 3T3-L1 pre-adipocytes,evidenced by reduced intracellular content of triglyceride,and decreased mRNA expression of adipogenicmarker proteins such as adiponectin and adipocyte protein 2.In contrast,administration of sildenafil(SDN),an activator of protein kinase G which was also found to activate UPS,promoted adipocyte differentiation.In addition,BZM treatment decreased the expression of heat shock protein 90(HSP90)and peroxisome proliferator-activated receptor gamma(PPARγ)in the soluble fraction and reduced association of HSP90 and PPARγ.Furthermore,HSP90-specific N-terminal inhibitor geldanamic mitigated SDN-induced increase in PPARγlevel and 3T3-L1 cell differentiation.CONCLUSION:UPSmodulates HSP90-dependent PPARγstability,thus leading to promotion of adipocyte differentiation.
[KEY WORDS]Ubiquitin-proteasome system;Peroxisome proliferator-activated receptor gamma;Heat shock protein 90;Adipocytes;Cell differentiation
脂肪細胞一般分為白色脂肪細胞和棕色脂肪細胞,前者的主要功能是以甘油三酯(triglyceride,TG)的形式儲存能量,而棕色脂肪的主要功能是消耗能量[1]。近年研究表明:白色脂肪細胞還具有重要的內(nèi)分泌功能,可以分泌多種激素或者脂質(zhì)因子(adipokines),調(diào)節(jié)體內(nèi)眾多的生理或病理活動[2]。白色脂肪細胞的結(jié)構(gòu)和功能紊亂可引發(fā)肥胖、胰島素抵抗、炎癥,并與多種疾病如糖尿病、腫瘤、心腦血管疾病等的發(fā)生、發(fā)展有關(guān)[3]。脂肪細胞的分化對脂肪細胞的結(jié)構(gòu)和功能變化具有重大影響[4]。因此,探討脂肪細胞分化的詳細機制、研究其調(diào)節(jié)因素,尤其是白色脂肪向棕色脂肪的轉(zhuǎn)化機制已成為具有廣闊應(yīng)用前景的研究新領(lǐng)域[4]。
泛素蛋白酶系統(tǒng)(ubiquitin-proteasome system,UPS)和細胞自噬是細胞內(nèi)蛋白質(zhì)降解的2種主要方式,參與了脂肪細胞分化的調(diào)節(jié)。研究已經(jīng)證實,白色脂肪細胞的分化早期有細胞自噬的參與[5],而脂肪細胞的衰老與UPS活性的變化和脂肪細胞的分化具有密切關(guān)系[6]。然而,UPS在調(diào)節(jié)白色脂肪細胞分化中的具體作用和詳細機制仍不清楚。本研究發(fā)現(xiàn),UPS是白色脂肪細胞分化所必需的,UPS通過調(diào)節(jié)熱休克蛋白90(heat shock protein 90,HSP90)與過氧化物酶體增殖物活化受體γ(peroxisome proliferator-activated receptor gamma,PPARγ)結(jié)合,從而影響PPARγ的表達水平,并由此調(diào)節(jié)脂肪細胞的分化。
1材料與試劑
抗綠色熒光蛋白(green fluorescent protein,GFP)、PPARγ和HSP90的抗體(CST);抗tubulin抗體、堿性磷酸酶和辣根過氧化物酶標記的Ⅱ抗(Santa Cruz);胰島素、地塞米松和3-異丁基-1-甲基黃嘌呤(3-isobutyl-1-methylxanthine,IBMX)為Sigma產(chǎn)品;泛素蛋白酶系統(tǒng)抑制劑硼替佐米(bortezomib)、HSP90特異性的N末端抑制劑格爾德霉素(geldanamycin,GA)和蛋白激酶G(protein kinase G,PKG)激動劑西地那非(sildenafil,SDN)均購自Calbiochem;蛋白A瓊脂糖珠(Protein-A Agarose)為Amersham-Pharmacia Biotech產(chǎn)品。
2細胞培養(yǎng)與脂肪細胞分化
3T3-L1前脂肪細胞購自ATCC,并按要求培養(yǎng)于含10%胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)、1%青霉素/鏈霉素(penicillin/streptomycin,P/S)的DMEM中。脂肪細胞的分化按文獻方法進行[7-8],基本步驟如下:100%匯合的3T3-L1前脂肪細胞繼續(xù)常規(guī)培養(yǎng)3 d;然后,采用含1μmol/L地塞米松、0.5 mmol/ L IBMX、1.67μmol/L胰島素和10%FBS的DMEM,以及含0.41μmol/L胰島素和10%FBS的DMEM先后誘導(dǎo)分化各3 d;其后,誘導(dǎo)分化的細胞培養(yǎng)于常規(guī)培養(yǎng)液中。誘導(dǎo)分化10 d后,90%以上的前脂肪細胞將分化為脂肪細胞,并可用于實驗。
3主要實驗方法
2.1 風險識別。要實現(xiàn)對風險進行有效的預(yù)防前提是要對風險進行識別,風險識別是利用有效的系統(tǒng)、經(jīng)驗的技術(shù)手段和科學(xué)的方法對事故發(fā)生前各種風險的大小、風險存在的原因進行全面、聯(lián)系分析的過程。風險識別包括分析風險的關(guān)鍵環(huán)節(jié)、風險的事故種類和風險的控制重點等。
3.1油紅(oil red)O染色誘導(dǎo)分化10 d后的細胞用磷酸鹽緩沖生理鹽水(phosphate buffered saline,PBS)洗滌3次、4%的多聚甲醛固定20 min、PBS漂洗3次、油紅O染料染色30 min,最后用去離子水除去未結(jié)合的染料[8]。
3.2TG的測定甘油三酯定量試劑盒購自Abcam,測定方法按試劑盒說明書進行。
3.3細胞病毒感染融合泛素蛋白酶系統(tǒng)作用底物的綠色熒光蛋白GFPu用于反向報告活體細胞內(nèi)UPS的功能活性[9]。為使培養(yǎng)細胞過度表達GFPu,細胞分別與攜帶GFPu的重組腺病毒Ad/GFPu和攜帶β-半乳糖苷酶(β-galactosidase,β-Gal)對照腺病毒Ad/β-Gal(均由美國南達科他大學(xué)醫(yī)學(xué)院汪學(xué)軍教授贈送)在無血清條件下共同培養(yǎng)6 h(MOI=100),然后更換為常規(guī)培養(yǎng)液。48 h后分組實驗。
3.4RT-PCR實驗按本實驗室已報告的方法進行[2],采用TRIzol試劑提取細胞總RNA,通過酶促反應(yīng)逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA的第1鏈和第2鏈。小鼠脂聯(lián)素的上游引物為5’-CCCAAGGGAACTTGTGCAGGTTGGATG-3’,下游引物為5’-GTTGGTATCATGGAAGAGAAGAAA-3’;小鼠脂肪細胞蛋白2(adipocyte protein 2,aP2)的上游引物為5’-GCGTAAATGGGGATTTGGTC-3’,下游引物為5’-CTCCTGTCGTCTGCGGTGATT-3’;小鼠GAPDH的上游引物為5’-ACCACAGTCCATGCCATCAC-3’,下游引物為5’-TCCACCACCCTGTTGCTGTA-3’。擴增條件為94℃5 min;94℃1 min,62℃1min,72℃1 min,共30個循環(huán);72℃10 min。瓊脂糖凝膠電泳鑒定PCR擴增產(chǎn)物,凝膠成像系統(tǒng)分析目的基因與GAPDH條帶的相對吸光度值。
3.5可溶組分和非可溶組分分離細胞溶解于含5 mmol/L EDTA、1 mmol/L PMSF、2%Triton X-100以及蛋白酶抑制劑的PBS(pH 7.4)緩沖液中,冰上孵育30 min,漩渦混勻10 min,14 000×g、4℃離心20 min,轉(zhuǎn)移上清至新的試管中,此為細胞可溶性組分。沉淀物加入一定量的SDS-PAGE上樣緩沖液,漩渦混勻20 min,100℃煮沸5 min,14 000×g室溫離心5 min,轉(zhuǎn)移上清液至新的試管中,即為細胞的非可溶性組分。
3.6免疫共沉淀與蛋白免疫印跡實驗結(jié)束后,立即將細胞用4℃預(yù)冷的PBS洗滌3次。細胞裂解液(含50 mmol/L Hepes,150 mmol/L NaCl,1%Triton X-100,10 mmol/L NaF,20 mmol/L sodium pyrophosphate,20 mmol/Lβ-glycerol phosphate,1 mmol/L sodium orthovanadate,10 mg/L leupeptin,10 mg/L aprotinin和1 mmol/L phenylmethanesulfonyl fluoride)裂解細胞,冰浴10 min,14 000×g、4℃離心10 min,Bradford法定量蛋白濃度,并調(diào)整各勻漿蛋白濃度一致。為進行免疫沉淀,細胞提取液與結(jié)合有特異性抗體的蛋白A瓊脂糖珠4℃共同孵育16 h,沉淀物用50 mmol/L HEPES緩沖液洗滌3次,最后加入2× SDS-PAGE上樣緩沖液95℃加熱5 min分離蛋白與瓊脂糖珠。為進行蛋白免疫印跡,細胞裂解液與等體積的2×SDS-PAGE上樣緩沖液混合,95℃水浴5min,離心取上清行SDS-PAGE。蛋白免疫印跡的基本流程如下:恒壓100 V電泳,100 V、140 min電轉(zhuǎn)移蛋白至PVDF膜,5%脫脂牛奶封阻1 h,Ⅰ抗4℃孵育過夜,Ⅱ抗室溫孵育1 h,ECL顯色,VersaDoc Imaging System(Bio-Rad)獲得并分析結(jié)果。
4統(tǒng)計學(xué)處理
數(shù)據(jù)均采用均數(shù)±標準差(Mean±SD)表示,計量數(shù)據(jù)資料按Student t檢驗,計數(shù)數(shù)據(jù)按χ2檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。所有實驗至少重復(fù)3次以上。
1泛素蛋白酶系統(tǒng)功能不足可抑制3T3-L1前脂肪細胞分化
硼替佐米(bortezomib,BZM)是一種有效的UPS抑制劑,為獲得其有效抑制脂肪細胞UPS功能的作用濃度,過度表達GFPu的3T3-L1前脂肪細胞分別接受5 nmol/L、10 nmol/L和20 nmol/L的BZM處理6 h。10 nmol/L和20 nmol/L濃度的BZM可有效提高GFPu的蛋白表達,表明該濃度BZM可抑制前脂肪細胞的UPS功能。為探討UPS功能對脂肪細胞分化的影響,3T3-L1前脂肪細胞在誘導(dǎo)分化期間的前3 d,持續(xù)接受10 nmol/L的BZM處理。結(jié)果表明,BZM處理顯著降低脂肪細胞中脂質(zhì)和TG的含量;脂肪細胞標志蛋白aP2和脂聯(lián)素的mRNA表達水平也顯著降低,見圖1。這些結(jié)果表明:UPS功能抑制可抑制脂肪細胞的分化。
Figure 1.Bortezomib(BZM)suppressed the differentiation of 3T3-L1 pre-adipocytes.A:the effect of BZM on GFPu expression in 3T3-L1 pre-adipocytes;B:representative images of oil red O staining of adipocytes(×200);C:the effectof BZM on TG levels of adipocytes;D:the effect of BZM onmRNA levels of Adip and aP2 in adipocytes.GFPu:green fluorescence protein(GFP)family of ubiquitin-proteasome system reporters;TG:triglyceride;Adip:adiponectin;aP2:adipocyte protein 2.Mean±SD.n=6.**P<0.01 vs DMSO.圖1 硼替佐米抑制3T3-L1前脂肪細胞的分化
2泛素蛋白酶系統(tǒng)功能激活可促進3T3-L1前脂肪細胞的分化
SDN可通過調(diào)節(jié)PKG而激活UPS[9]。20μmol/ L的SDN處理6 h可明顯降低3T3-L1前脂肪細胞中GFPu的表達,且該作用可以被BZM處理逆轉(zhuǎn),表明SDN可促進脂肪細胞UPS的功能。已有文獻報道: SDN具有促進脂肪細胞分化的作用[10]。為研究SDN是否經(jīng)激活UPS而誘導(dǎo)脂肪細胞的分化,3T3-L1前脂肪細胞在分化誘導(dǎo)期間,同時接受20μmol/ L的SDN和/或10 nmol/L的BZM處理6 d。結(jié)果發(fā)現(xiàn):BZM可抑制SDN誘導(dǎo)的脂質(zhì)和TG在細胞內(nèi)的聚集;同時也可抑制SDN誘導(dǎo)的aP2和脂聯(lián)素mRNA表達增加,見圖2。這表明激活UPS可促進脂肪細胞的分化。
Figure 2.Sildenafil(SDN)promoted the differentiation of3T3-L1 pre-adipocytes.A:the effect of sildenafil on GFPu expression in 3T3-L1 pre-adipocytes;B:representative images of oil red O staining of adipocytes(×200);C:the effect of sildenafil on TG levels of adipocytes;D:the effect of sildenafil on mRNA levels of Adip and aP2 in adipocytes.GFPu:green fluorescence protein(GFP)family of ubiquitin-proteasome system reporters;BZM:bortezomib;TG:triglyceride;Adip:adiponectin;aP2:adipocyte protein 2.Mean±SD.n=6.**P<0.01 vs DMSO;##P<0.01 vs SDN.圖2 西地那非促進3T3-L1前脂肪細胞的分化
3泛素蛋白酶系統(tǒng)調(diào)節(jié)PPARγ的表達
PPARγ在脂肪細胞的分化中具有關(guān)鍵作用[11]。為研究UPS活性對PPARγ表達的可能影響,分化誘導(dǎo)期第3天的3T3-L1前脂肪細胞接受10 nmol/L的BZM處理6 h。結(jié)果發(fā)現(xiàn):BZM處理可降低細胞可溶組分中PPARγ的表達,而增加其在非可溶性組分中的表達,提示BZM可影響PPARγ的穩(wěn)定性。本實驗結(jié)果同時發(fā)現(xiàn):HSP90在可溶組分和非可溶組分中的表達模式與PPARγ表達相一致;此外,BZM處理明顯降低PPARγ與HSP90間的結(jié)合,見圖3。這些結(jié)果表明:HSP90在介導(dǎo)BZM穩(wěn)定PPARγ的表達中具有重要作用。
Figure 3.Bortezomib(BZM)decreased PPARγexpression in soluble fraction.NIg:normal IgG;IP:immunoprecipitation.Mean± SD.n=4.**P<0.01 vs DMSO.圖3 硼替佐米降低細胞可溶組分中PPARγ的表達
4HSP90參與泛素蛋白酶系統(tǒng)對脂肪細胞分化的調(diào)節(jié)
為闡明HSP90在介導(dǎo)UPS誘導(dǎo)脂肪細胞分化中的作用,3T3-L1前脂肪細胞誘導(dǎo)分化期間,同時接受20μmol/L的SDN和(或)20 nmol/L的HSP90特異性的N末端抑制劑GA處理。結(jié)果發(fā)現(xiàn),GA可抑制SDN誘導(dǎo)的脂質(zhì)和TG在細胞內(nèi)的聚集;抑制SDN誘導(dǎo)的aP2和脂聯(lián)素mRNA表達的增加。同時,GA抑制了SDN所致的PPARγ表達的增加,見圖4。這些結(jié)果表明HSP90具有穩(wěn)定PPARγ表達的作用,并由此介導(dǎo)UPS對脂肪細胞分化的影響。
Figure 4.Geldanamycin(GA)attenuated sildenafil(SDN)-induced differentiation of 3T3-L1 pre-adipocytes.A:oil red O staining for observing the effectofGA on SDN-induced differentiation of3T3-L1 pre-adipocytes(×200);B:the effectofGA on TG expression in SDN-treated 3T3-L1 adipocytes;C:the effectof GA onmRNA levels of Adip and aP2 in SDN-treated 3T3-L1 adipocytes;D:the effects of SDN and GA on the expression of HSP90 and PPARγ.Mean±SD.n=6.**P<0.01 vs DMSO;##P<0.01 vs SDN.圖4 格爾德霉素降低西地那非誘導(dǎo)的3T3-L1前脂肪細胞的分化
UPS已被證明在晶狀體細胞的分化中起到重要作用[12]。在脂肪細胞中,蛋白酶功能的降低足以抑制脂肪細胞的分化,增加成熟脂肪細胞的氧化張力,影響脂肪細胞的衰老[6]。與這些研究結(jié)果相一致,本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn):在分化誘導(dǎo)期間,抑制UPS功能可阻礙脂肪細胞的分化;與此相反,誘導(dǎo)分化期間刺激UPS活性可促進脂肪細胞的分化,表明正常UPS功能是脂肪細胞分化所必需的。
PPARγ是影響脂肪細胞分化的重要因子,參與調(diào)節(jié)脂肪形成、能量平衡以及脂質(zhì)生物合成[13]。在脂肪細胞分化的過程中,轉(zhuǎn)錄因子PPARγ通過激活其下游的靶基因,如CCAAT/增強子結(jié)合蛋白家族等而決定脂肪的生成和脂肪細胞的分化。眾多離體和在體的研究表明:激活PPARγ將刺激脂肪的生成和脂肪細胞的分化;而該因子的缺乏或活性的降低將導(dǎo)致相反的結(jié)果[13]。本研究發(fā)現(xiàn):抑制UPS降低了細胞可溶性組分中PPARγ的含量,而增加了非可溶性組分中PPARγ含量。由于蛋白的可溶性是保障蛋白正常功能的基礎(chǔ),而位于非可溶性組分中的蛋白易于被降解,因此本實驗結(jié)果提示UPS可能是通過調(diào)節(jié)PPARγ的水平而影響脂肪細胞的分化。
一般認為,PPARγ是UPS的作用底物。在一定條件下,處于增殖期的前脂肪細胞和成熟脂肪細胞中PPARγ可通過UPS介導(dǎo)降解[14],而處于分化期的脂肪細胞中PPARγ表達相對穩(wěn)定[5,15]。存在的問題是:何種機制導(dǎo)致分化期脂肪細胞中的PPARγ處于穩(wěn)定狀態(tài)?蛋白質(zhì)降解的主要方法包括UPS、細胞脂嗜、蛋白酶途徑等。其中,UPS的主要功能是清除細胞內(nèi)錯誤折疊或未折疊蛋白,保持細胞內(nèi)正常的蛋白平衡。分子伴侶HSP90具有穩(wěn)定蛋白結(jié)構(gòu)和功能的作用,可與PPARs類蛋白結(jié)合,并影響PPARs的正常折疊、穩(wěn)定性和活性。例如,HSP90抑制PPARα和PPARβ的活性,但并不影響PPARα的穩(wěn)定性和PPARγ的活性[15]。在3T3-L1細胞中,PPARγ的穩(wěn)定主要受HSP90的保護[15]。HSP90通過與PPARγ結(jié)合保持了PPARγ的可溶性,避免其存在于非可溶組分中而被蛋白酶體降解[15]。當UPS被抑制時,泛素偶聯(lián)蛋白與HSP90的結(jié)合體出現(xiàn)在不可溶的組分中,由此增加泛素偶聯(lián)蛋白的不穩(wěn)定性。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn):在脂肪細胞分化期,抑制UPS功能降低了HSP90與PPARγ的結(jié)合、降低了細胞可溶性組分中PPARγ和HSP90的含量、增加了非可溶性組分中PPARγ和HSP90的含量,表明UPS功能降低可增加PPARγ的不穩(wěn)定性,從而增強了PPARγ被其它非UPS途徑降解的可能。另一方面,抑制HSP90將破壞HSP90-PPARγ的結(jié)合,觸發(fā)PPARγ的不穩(wěn)定性[15]。在本研究中表現(xiàn)為:HSP90特異性抑制劑GA降低SDN誘導(dǎo)的PPARγ蛋白量的增加,并由此阻止3T3-L1前脂肪細胞的分化。因此,適當提高UPS活性可維持分化中的脂肪細胞正常的蛋白平衡,減輕應(yīng)激,增加PPARγ與HSP90結(jié)合,提高PPARγ的穩(wěn)定性,刺激脂肪細胞的分化。
[1]Giralt M,Villarroya F.White,brown,beige/brite:different adipose cells for different functions?[J].Endocrinology,2013,154(9):2992-3000.
[2]McGown C,Birerdinc A,Younossi ZM.Adipose tissue as an endocrine organ[J].Clin Liver Dis,2014,18 (1):41-58.
[3]Bartelt A,Heeren J.Adipose tissue browning and metabolic health[J].Nat Rev Endocrinol,2014,10(1):24-36.
[4]Mueller E.Understanding the variegation of fat:novel regulators of adipocyte differentiation and fat tissue biology[J].Biochim Biophys Acta,2014,1842(3):352-357.
[5]Skop V,Cahova M,Dankova H,et al.Autophagy inhibition in early butnot in later stages prevents 3T3-L1 differentiation:effect on mitochondrial remodeling[J].Differentiation,2014,87(5):220-229.
[6]Dasuri K,Zhang L,Ebenezer P,et al.Proteasome alterations during adipose differentiation and aging:links to impaired adipocyte differentiation and development of oxidative stress[J].Free Radic Biol Med,2011,51(9): 1727-1735.
[7]吳靜,胡秀芬,王宏偉,等.Gβ/Gαq-PI3K-PKC信號通路在3T3-L1前脂肪細胞分化過程中的作用[J].中國病理生理雜志,2009,25(1):172-176.
[8]Sun S,Liu Y,Lu J,et al.The inhibitory effectof PKCθ on adiponectin expression ismediated by ERK in 3T3-L1 adipocytes[J].JEndocrinol Invest,2011,34(1):8-15.
[9]Ranek MJ,Terpstra EJ,Li J,et al.Protein kinase G positively regulates proteasome-mediated degradation of misfolded proteins[J].Circulation,2013,128(4):365-376.
[10]Zhang X,Ji J,Yan G,et al.Sildenafil promotes adipogenesis through a PKG pathway[J].Biochem Biophys Res Commun,2010,396(4):1054-1059.
[11]Rosen ED,Sarraf P,Troy AE,et al.PPARγis required for the differentiation of adipose tissue in vivo and in vitro[J].Mol Cell,1999,4(2):611-617.
[12]Guo W,Shang F,Liu Q,et al.Ubiquitin-proteasome pathway function is required for lens cell proliferation and differentiation[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2006,47 (6):2569-2575.
[13]Rosen ED,Hsu CH,Wang X,et al.C/EBPαinduces adipogenesis through PPARγ:a unified pathway[J].Genes Dev,2002,16(1):22-26.
[14]Floyd ZE,Stephens JM.Interferon-γ-mediated activation and ubiquitin-proteasome-dependent degradation of PPAR gamma in adipocytes[J].JBiol Chem,2002,277(6): 4062-4068.
[15]Nguyen MT,Csermely P,S?ti C.Hsp90 chaperones PPARγand regulates differentiation and survival of 3T3-L1 adipocytes[J].Cell Death Differ,2013,20(12): 1654-1663.
Ubiquitin-proteasome system regulates adipogenic differentiation by stabilizing HSP90-dependent PPARγ
TANG Zhao,ZHANG Ye-min,LIMing-xin,WANG Chang-hua
(Department of Pathophysiology,Wuhan University School of Basic Medical Sciences,Wuhan 430071,China.E-mail: chwang0525@whu.edu.cn)
R363
A
10.3969/j.issn.1000-4718.2015.05.021
1000-4718(2015)05-0888-06
2014-12-02[修回日期]2015-01-26
國家自然科學(xué)基金資助項目(No.30770758/H0178)
Tel:027-68759846;E-mail:chwang0525@wuh.edu.cn