陳 星,成爭艷,王 凱,孫明偉
(四川省醫(yī)學(xué)科學(xué)院·四川省人民醫(yī)院城東病區(qū) a.創(chuàng)傷外科,b.病理科,四川 成都 610101)
促肝細(xì)胞再生磷酸酶-3及整合素β1在食管鱗狀細(xì)胞癌中的表達(dá)及意義
陳 星a,成爭艷b,王 凱a,孫明偉a
(四川省醫(yī)學(xué)科學(xué)院·四川省人民醫(yī)院城東病區(qū) a.創(chuàng)傷外科,b.病理科,四川 成都 610101)
目的 探討促肝細(xì)胞再生磷酸酶-3(phosphatase of regenerating liver-3,PRL-3)及整合素β1(integrinβ1,Intβ1)在食管鱗狀細(xì)胞癌中的表達(dá)及其臨床意義。方法 采用免疫組織化學(xué)法和實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測食管癌組織、癌旁組織和正常組織中PRL-3 和Intβ1的表達(dá)水平。結(jié)果 在蛋白水平和基因水平檢測均發(fā)現(xiàn)癌組織中PRL-3 和Intβ1的表達(dá)高于癌旁組織(P< 0.05)和正常組織。結(jié)論 PRL-3 和Intβ1在食管鱗狀細(xì)胞癌組織中表達(dá)增高,可能作為腫瘤標(biāo)志物來監(jiān)控食管鱗狀細(xì)胞癌的發(fā)生、發(fā)展、浸潤和轉(zhuǎn)移。
食管鱗狀細(xì)胞癌;促肝細(xì)胞再生磷酸酶3;整合素β1
食管癌世界標(biāo)準(zhǔn)化死亡率為23.40/10萬,占各種癌癥死亡的23.53%,僅次于肺癌、胃癌,居第三位[1]。。但是其發(fā)病的分子機(jī)制仍不清楚[2]。促肝細(xì)胞再生磷酸酶-3(phosphatase of regenerating liver-3,PRL-3)有促進(jìn)細(xì)胞的生長、遷移和浸潤的作用[3],特別是在腫瘤的轉(zhuǎn)移中起關(guān)鍵作用。整合素β1(integrinβ1,Intβ1)可使細(xì)胞間的黏附能力下降[4],從而促進(jìn)腫瘤組織的浸潤轉(zhuǎn)移。目前PRL-3及Intβ1與食管癌的關(guān)系研究較少,而兩者在食管癌中基因和蛋白水平的定量分析及兩者的相關(guān)性在國內(nèi)鮮有報(bào)道。本研究采用免疫組織化學(xué)法和實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測PRL-3及Intβ1在食管癌組織、癌旁組織和正常組織中的表達(dá),觀察其在食管癌發(fā)生、發(fā)展、黏附和浸潤轉(zhuǎn)移中的作用,為臨床預(yù)測食管癌轉(zhuǎn)移潛能和預(yù)后及治療提供客觀有效的指標(biāo)。
1.1 一般資料 用于免疫組化檢測的40例食管鱗狀細(xì)胞癌組織來源于我院病理科2010年1月至2013年12月胸外科手術(shù)切除標(biāo)本。其中高分化鱗狀細(xì)胞癌20例,中分化鱗狀細(xì)胞癌13例,低分化鱗狀細(xì)胞癌7例。并且取相應(yīng)的癌旁組織(距腫瘤邊緣1.0 cm處黏膜組織)及正常組織(距腫瘤邊緣5.0 cm處黏膜組織,經(jīng)鏡下觀察未發(fā)現(xiàn)癌細(xì)胞)。用于Real-time PCR的12例新鮮食管癌組織、癌旁組織及正常組織取自2012年1月至2013年11月我院胸外科手術(shù)切除標(biāo)本。其中高分化鱗狀細(xì)胞癌5例,中分化鱗狀細(xì)胞癌4例,低分化鱗狀細(xì)胞癌3例。所有患者術(shù)前均未接受任何治療,平均年齡61.2歲(45~76歲)。12例新鮮組織切除后立即放入-70 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2 免疫組化 按照免疫組化二步法檢測試劑盒說明進(jìn)行操作,測定PRL-3和 Intβ1的表達(dá)。切片常規(guī)脫蠟至水,高壓抗原修復(fù),PRL-3單克隆抗體及Intβ1單克隆抗體(美國Santa Cruz公司鼠抗人)4 ℃孵育過夜,DAB顯色,蘇木素復(fù)染。用PBS代替一抗作為陰性對照。在高倍鏡下觀察切片,隨機(jī)選取5~6個(gè)視野拍照,結(jié)果采用Image Pro 6.0圖像分析系統(tǒng)分析,測量平均光密度值(IOD),各組進(jìn)行比較。
1.3 實(shí)時(shí)熒光定量PCR
1.3.1 總RNA的提取 ①組織勻漿后加0.2 ml氯仿,劇烈搖蕩離心管15 s,室溫放置3 min后12 000 r/min 4 ℃離心10 min;②取上層水于新的離心管,加等體積異丙醇混勻,室溫放置10 min;③ 12 000 r/min離心10 min,棄上清液并以75%乙醇洗滌沉淀;④離心棄上清液后室溫干燥10 min,加50 μl RNase-free ddH2O充分溶解RNA備用。
1.3.2 cDNA的合成 取總RNA 500 ng進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄,用美國Bio-Rad公司iScriptTM cDNA Synthesis Kit試劑盒,總體系10 μl:5×PrimeScript Buffer 2 μl,PrimeScript RT Enzyme Mix 10.5 μl,Oligo dT Primer(50 μmol/L)0.5 μl,Random 6 mers(100 μmol/L)0.5 μl,補(bǔ)DEPC水至10 μl;上PCR儀反轉(zhuǎn)錄,37 ℃ 15 min,85 ℃ 5 s。
1.3.3 PCR擴(kuò)增 引物序列如下:PRL-3上游引物5′-GGGACTTCTCAGGTCGTG TC-3′,下游引物5′-AGCCCCGTACTTCTTCAGGT-3′。Intβ1上游引物5′-ACGAGGTCATGGTTCATGTTG-3′,下游引物5′-CCTCATACTTCGGATTG ACCA-3′。GAPDH上游引物5′-ATGCTGGCGCTGAGTACGTC-3′,下游引物5′-GGTCATGAGTCCTTCCACGATA-3′。引物由上海生工合成,用大連寶生物TaKaRa SYBR Premix Ex TaqTM II試劑盒,反應(yīng)體系25 μl。其中cDNA 2 μl,SYBR Premix Ex Taq(2×)12.5 μl,PCR Forward Primer(10 μmol/L)0.5 μl,PCR Reverse Primer(10 μmol/L)0.5 μl,dH2O 9.5 μl。將各反應(yīng)管放入定量PCR儀器的反應(yīng)槽內(nèi),循環(huán)條件:①95 ℃預(yù)變性10s后開始循環(huán);②95 ℃ 5 s,60 ℃ 30 s,40個(gè)循環(huán)。檢測樣本PRL-3和 Intβ1的Ct值。根據(jù)其Ct值,用軟件ABI StepOne,按公式2-△△Ct計(jì)算出相對表達(dá)量,各組進(jìn)行比較。
1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 應(yīng)用軟件包SPSS 17.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示;各組內(nèi)表達(dá)的差異應(yīng)用重復(fù)測量的方差分析對數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,P< 0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。用Pearson相關(guān)分析檢驗(yàn)相關(guān)性,P< 0.05為有相關(guān)性。
2.1 PRL-3及Intβ1蛋白表達(dá)水平與陽性細(xì)胞定位 40例食管癌組織中PRL-3陽性27例(67.5%),Intβ1陽性29例(72.5%)的癌細(xì)胞胞質(zhì)中出現(xiàn)淺黃色至棕褐色顆粒樣物,間質(zhì)無著色(圖1a、圖2a);相應(yīng)的癌旁組織中PRL-3陽性表達(dá)15例(37.5%),且陽性細(xì)胞均集中在不典型增生區(qū)域的細(xì)胞質(zhì)中(圖1b),Intβ1陽性表達(dá)16例(40%)(圖2b);正常組織中PRL-3散在陽性13例(32.5%)(圖1c),Intβ1散在陽性15例(37.5%)(圖2c)。PRL-3在癌組織、癌旁組織及正常組織中的IOD值依次降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P< 0.01)。Intβ1在癌組織中IOD值高于癌旁組織及正常組織IOD值,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P< 0.01),見表1。
圖1 PRL-3的表達(dá) a:癌組織;b:癌旁組織;c:正常組織(×400) 圖2 Intβ1的表達(dá) a:癌組織;b:癌旁組織;c:正常組織(×400)
組織類型nPRL-3Intβ1癌組織400.185±0.004*0.187±0.003*癌旁組織400.179±0.0060.180±0.004正常組織400.173±0.0040.179±0.004
與癌旁組織及正常組織比較,*P<0.01
2.2 PRL-3和Intβ1的基因表達(dá)水平 PRL-3 mRNA在癌組織中相對表達(dá)量明顯高于癌旁組織及正常組織,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P< 0.01)。Intβ1 mRNA在癌組織、癌旁組織及正常組織中的相對表達(dá)量也依次降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),見表2。
表2 食管癌中PRL-3和 Intβ1基因表達(dá) (%)
與癌旁組織及正常組織比較,*P<0.01
2.3 PRL-3和Intβ1表達(dá)的相關(guān)性 在蛋白表達(dá)水平,癌組織中PRL-3 和Intβ1表達(dá)呈正相關(guān)關(guān)系(r=0.412,P= 0.024),癌旁組織中PRL-3和Intβ1表達(dá)亦呈正相關(guān)關(guān)系(r=0.446,P= 0.049)。在基因表達(dá)水平,癌組織及癌旁組織中PRL-3 與Intβ1表達(dá)均無相關(guān)性(r=-0.349,r=-0.137,P> 0.05)。
PRL屬于酪氨酸蛋白磷酸酶家族成員,包括PRL-1、PRL-2、 PRL-3。PRL在正常組織中有不同程度的表達(dá),但更多研究表明其與腫瘤細(xì)胞轉(zhuǎn)移密切相關(guān)[5,6]。目前已發(fā)現(xiàn)PRL-3在胃癌、卵巢癌、結(jié)直腸癌,肝癌的發(fā)生、侵襲、轉(zhuǎn)移中起重要作用[7~9]。PRL-3可通過調(diào)節(jié)酪氨酸的磷酸化和去磷酸化,進(jìn)而調(diào)節(jié)細(xì)胞的生長、分化、信息傳遞等活動(dòng)。同時(shí)PRL-3可通過激活細(xì)胞內(nèi)的Rho、MAPK信號通路使細(xì)胞增殖和分化,提高浸潤轉(zhuǎn)移能力[10]。本實(shí)驗(yàn)在蛋白和基因水平檢測了PRL-3 在正常食管黏膜組織、食管鱗狀細(xì)胞癌原發(fā)灶及癌旁組織中的表達(dá)情況,結(jié)果表明在食管鱗狀細(xì)胞癌中PRL-3 蛋白和基因在原發(fā)灶中的表達(dá)明顯高于癌旁組織,說明高表達(dá)的PRL-3 可能在食管鱗狀細(xì)胞癌發(fā)生轉(zhuǎn)移中起作用。
整合素是黏附分子五大家族成員之一,對細(xì)胞及其外基質(zhì)的黏附起主要介導(dǎo)作用[11]。Intβ1是介導(dǎo)ECM信號的主要細(xì)胞表面受體,與其配體相結(jié)合可以促進(jìn)細(xì)胞的黏附、增殖和遷移等作用。研究表明,Intβ1與多種腫瘤細(xì)胞的增殖、侵襲轉(zhuǎn)移有密切關(guān)系[12,13]。本實(shí)驗(yàn)檢測了Intβ1在蛋白和基因水平的表達(dá)情況,結(jié)果表明在食管鱗狀細(xì)胞癌中Intβ1 蛋白和基因在原發(fā)灶中的表達(dá)明顯高于癌旁組織,證明了Intβ1的高表達(dá)可能與食管鱗狀細(xì)胞癌黏附及侵襲增強(qiáng)有關(guān)。
PRL-3和Intβ1各種細(xì)胞外信號傳遞至細(xì)胞內(nèi)主要依靠MAPK通路介導(dǎo)[14],有研究顯示PRL-3可通過正調(diào)控PRL-3-整合素β1-ERK1/2-MMP-2信號傳導(dǎo)通路[15]增強(qiáng)Intβ1的表達(dá),使腫瘤組織的活動(dòng)性、侵襲性和轉(zhuǎn)移能力增強(qiáng)。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,在蛋白表達(dá)水平癌組織和癌旁組織中PRL-3 和Intβ1表達(dá)均呈正相關(guān)關(guān)系,說明其機(jī)制PRL-3可能通過活化通路提高Intβ1表達(dá),從而增強(qiáng)細(xì)胞間質(zhì)侵襲轉(zhuǎn)移的能力。在基因表達(dá)水平PRL-3 和Intβ1表達(dá)無相關(guān)性,可能由于mRNA翻譯成蛋白的滯后性及mRNA轉(zhuǎn)錄后調(diào)控機(jī)制的影響。綜上所述,PRL-3和Intβ1在食管鱗狀細(xì)胞癌中高表達(dá),且在食管鱗狀細(xì)胞癌的發(fā)生、發(fā)展、浸潤和轉(zhuǎn)移起關(guān)鍵作用,可能作為腫瘤標(biāo)志物來監(jiān)測腫瘤、判斷預(yù)后,也有望成為治療腫瘤的靶點(diǎn)。
[1] 赫捷,邵康.中國食管癌流行病學(xué)現(xiàn)狀,診療現(xiàn)狀及未來對策[J].中國癌癥雜志,2011,21(7):501-504.
[2] Kashyap MK,Marimuthu A,Kishore CJ,et al.Genomewide mRNA profiling of esophageal squamous cell carcinoma for identification of cancer biomarkers[J].Cancer Biol Ther,2009,8(1):36-46.
[3] Stephens BJ,Han H,Gokhale V,et al.PRL phosphatases as potential molecular targets in cancer[J].Mol Cancer Ther,2005,4(11):1653-1661.
[4] Yang J,Dai C,Liu Y.A novel mechanism by which hepatocyte growth factor blocks tubular epithelial to mesenchymal transition[J].J Am Soc Nephrol,2005,16(l):68-78.
[5] Bessette DC,Qiu D,Pallen CJ.PRL PTPs:mediators and markers of cancer progression[J].Cancer Metastasis Rev,2008,27(2):231-252.
[6] AI-Aidaroos AQ,Zeng Q.PRL-3 phosphatase and cancer metastasis[J].J Cell Biochem,2010,111(5):1087-1098.
[7] Ren T,Jiang B,Xing X,et al.Prognostic significance of phosphatase of regenerating liver-3 expression in ovarian cancer[J].Pathol Oncol Res,2009,15(4):555-560.
[8] Mayinuer A,Yasen M,Mogushi K,et al.Upregulation of protein tyrosine phosphatase type IVA member 3(PTP4A3/PRL-3)is associated with tumor differentiation and a poor prognosis in human hepatocellular carcinoma[J].Ann Surg Oncol,2013,20(1):305-317.
[9] Bilici A,Ustaalioglu BB,Yavuzer D,et al.Prognostic significance of high phosphatase of regenerating liver-3 expression in patients with gastric cancer who underwent curative gastrectomy[J].Dig Dis Sci,2012,57(6):1568-1575.
[10]Li Z,Zhan W,Wang Z,et al.Inhibition of PRL-3 gene expression in gastric cancer cell line SGC7901 via microRNA suppressed reduces peritoneal metastasis[J].Biochem Biophys Res Commun,2006,348(1):229-237.
[11] Hood JD,Cheresh DA.Role of integrins in cell invasion and migration[J].Nat Rev Cancer,2002,2(2):91-100.
[12]Yao ES,Zhang H,Chen YY,et al.Increased beta1 integrin is associated with decreased survival in invasive breast cancer[J].Cancer Res,2007,67:659-664.
[13]Hazlehurst LA,Argilagos RF,Dalton WS.Beta1 integrin mediated adhesion increases Bim protein degradation and contributes to drug resistance in leukaemia cells[J].Br J H aematol,2007,136(2):269-275.
[14]Kobel M,Pohl G,Schmitt WD,et al.Activation of mitogen-activated protein kinase is required for migration and invasion of placental site trophoblastic tumor[J].Am J Pathol,2005,167(3):879-885.
[15]Peng L,Xing X,Li W,et al.PRL-3 promotes the motility,invasion,and metastasis of LoVo colon cancer cells through PRL-3-integrin β1-ERK1/2 and-MMP-2 signaling[J].Molecular Cancer,2009,24(8):110-112.
Expression and significance of phosphatase of regenerating liver-3 and integrinβ1 in esophageal squamous cell carcinoma
CHENXinga,CHENGZheng-yanb,WANGKaia,SUNMing-weia
(a.DepartmentofThoracicSurgery,b.PathologyDepartment,EasternDistrict,SichuanAcademyofMedicalSciences&SichuanProvincialPeople’sHospital,Chengdu610101,China)
SUNMing-wei
Objective To investigate the expression and significance of phosphatase of regenerating liver-3(PRL-3)and integrinβ1(Intβ1)in esophageal squamous cell carcinoma(ESCC).Methods The expression of PRL-3 and Intβ1 in esophageal squamous cell carcinoma,adjacent non-tumor tissues and normal esophageal tissues were detected by using an immunohistochemical analysis and a real-time PCR analysis.Results The mRNA and protein expressions of PRL-3 and Intβ1 were higher in the esophageal squamous cell carcinoma than that in the adjacent non-tumor tissues(P< 0.05).The lowest expressions of the two factors were found in the normal esophageal tissues.Conclusion PRL-3 and Intβ1 may be used as tumor markers in progression,invasion and metastasis of the disease.
Esophageal squamous cell carcinoma;Phosphatase of regenerating liver-3;Integrin β1
四川省衛(wèi)生廳2013年科研項(xiàng)目(編號:130142)
孫明偉
R735.1;R365
A
1672-6170(2015)01-0049-03
2014-09-17;
20104-11-04)