中介素對缺氧/復氧大鼠腎小管上皮細胞增殖作用及細胞周期的影響及其機制

王艷紅，田繼華，蘇曉樂，喬 晞，李榮山

(1.山西醫(yī)科大學微生物學與免疫學教研室， 2.山西醫(yī)科大學第二醫(yī)院腎內科，3.山西省人民醫(yī)院腎內科，山西省腎臟病研究所，山西 太原 030001)

中介素對缺氧/復氧大鼠腎小管上皮細胞增殖作用及細胞周期的影響及其機制

王艷紅1，田繼華1，蘇曉樂2，喬 晞2，李榮山3

(1.山西醫(yī)科大學微生物學與免疫學教研室， 2.山西醫(yī)科大學第二醫(yī)院腎內科，3.山西省人民醫(yī)院腎內科，山西省腎臟病研究所，山西 太原 030001)

目的 探討中介素(intermedin，IMD)對大鼠近端腎小管上皮細胞NRK-52E缺氧/復氧(H/R)后細胞增殖、細胞周期的影響。方法 NRK-52E細胞隨機分為對照組，模型組：缺氧/復氧組(H/R)、H/R+空質粒組、H/R+IMD質粒組。MTT法檢測細胞增殖，比色法檢測培養(yǎng)基上清LDH含量，流式細胞術檢測細胞周期，Real time-PCR法和Western blot法檢測cyclin D1、CDK、p57 mRNA及蛋白表達，間接免疫熒光染色檢測cyclin D1亞細胞定位。結果 ①與對照組相比，H/R組培養(yǎng)基中LDH含量升高了106%，同時細胞存活率明顯下降，與H/R組比較，H/R+IMD組培養(yǎng)基中LDH含量下降了33.85%(P<0.01)，而細胞存活率增高(79.15%±1.42%vs61.22%±1.63%，P<0.05)，②細胞周期結果顯示，與對照組相比，H/R組細胞G0/G1期比例增加，S期細胞比例降低(P<0.05)；與H/R組比較，H/R+IMD組G0/G1期細胞比例明顯降低，而S及G2期細胞比例增加(P<0.05)。③H/R可增加cyclin D1、CDK4及p57的表達也增加(與對照組比較，P<0.05)；而IMD可進一步上調cyclin D1、CDK4的表達，同時下調p57的表達，與對照組及H/R組相比差異具有顯著性(P<0.05)。④免疫熒光檢測結果可見，cyclin D1呈紅色熒光，在NRK-52E細胞內主要表達在細胞核中。結論 IMD可以上調cyclin D1、CDK4蛋白表達，下調p57的表達，促進細胞周期進展，從而加速腎組織IRI后細胞增殖和修復。

中介素；缺氧/復氧損傷；腎小管上皮細胞；細胞增殖；細胞周期；細胞周期蛋白

急性腎衰竭(acute renal failure，ARF)在臨床上的發(fā)生率非常高，而腎臟缺血/再灌注損傷(ischemia reperfusion injury，IRI)是其主要原因[1]，研究表明，缺血性ARF的預后不僅取決于損傷的嚴重程度，而且取決于損傷后腎臟修復和再生情況，減輕急性期損傷和促進腎組織再生的因素均能改善缺血性ARF的預后[2]。本研究組前期研究證實，中介素(Intermedin，IMD)主要通過抑制氧化應激進而明顯減輕腎臟IRI急性期損傷[3]。但其是否可以促進腎臟IRI后的腎小管上皮細胞再生、修復及細胞周期的影響目前尚未見報道，本研究利用大鼠腎小管上皮細胞H/R模型，通過檢測IMD對腎小管上皮細胞H/R后細胞增殖、細胞周期的影響以及對周期蛋白cyclin的調節(jié)，從而探討IMD促進腎臟IRI后細胞修復和再生的機制，為IMD應用于腎臟IRI的治療提供理論依據(jù)。

1. 材料與方法

1.1 材料大鼠腎小管上皮細胞NRK-52E(上海細胞庫)，穩(wěn)定轉染PIRES2-EGFP/IMD及PIRES2-EGFP空質粒的NRK-52E細胞(本室制備)[4]，細胞周期檢測試劑盒( 南京凱基)，MTT( 北京索萊寶)，LDH檢測試劑盒( 南京建成)，兔抗鼠cyclin D1、CDK、p57、β-actin多抗(美國Santa)，羊抗兔IgG(美國Santa)。

1.2 細胞分組NRK-52E分為對照組及模型組。對照組細胞常規(guī)培養(yǎng)；模型組分為：缺氧/復氧組(H/R組)?？召|粒組(H/R+PIRES2)、IMD質粒組(H/R+IMD)。NRK-52E 細胞H/R模型的制備參照文獻[5]方法進行改良，將已傳代2～3次融合度達80%的細胞換用無血清DMEM/F12培養(yǎng)基24 h后細胞進入靜止期，預先將無氧液中持續(xù)通入高純度N230 min，達到N2飽和。棄去細胞培養(yǎng)基，PBS洗2次后加入無氧液，將細胞置入培養(yǎng)條件為37℃，95%N2+5%CO2(V/V)的培養(yǎng)箱中，進行缺氧培養(yǎng)1h，取出細胞，PBS洗滌，加入完全DMEM/F12培養(yǎng)基，置入調整為37℃，95%空氣+5% CO2的培養(yǎng)箱中進行復氧培養(yǎng)，復氧2 h后，收集細胞及培養(yǎng)液上清[4]。

1.3 實驗方法

1.3.1 細胞增殖指標 比色法檢測培養(yǎng)基上清中乳酸脫氫酶(LDH)，流式細胞術檢測細胞周期，MTT法檢測細胞增殖，嚴格按試劑盒說明操作。

1.3.2 Realtime PCR檢測cyclin D1、CDK4、p57 mRNA表達 收集細胞，TRIzol法提取總RNA，反轉錄成cDNA，引物序列見Tab 1，應用SYBR Green PCR matter mix，反應條件為95℃, 10 min，95℃, 15 s，60℃, 30 s，40個循環(huán)，分析溶解曲線并計算相對濃度。

Tab 1 Sequences of primers and cycle parameter for real-time PCR

1.3.3 Western blot檢測cyclin D1、CDK4、p57蛋白表達 收集細胞加入蛋白質抽提試劑提取蛋白質，12%的聚丙烯酰胺凝膠進行電泳，電泳結束后轉印至NC膜上。用含有5%脫脂奶粉的TBST室溫封閉1 h，加入一抗cyclin D1(1 ∶500)、CDK4(1 ∶500)、p57(1 ∶1 000)，于4℃孵育過夜， TBST洗膜10 min×3次，二抗(1 ∶500)室溫孵育1 h，TBST洗膜10 min×3次，用ECL化學發(fā)光法顯色，以β-actin為內參，應用Quantity One分析系統(tǒng)對條帶做吸光度定量，分析蛋白的相對表達量。

1.3.4 間接免疫熒光染色 取潔凈的蓋玻片置于24孔板中，NRK-52E以每孔5×105個細胞鋪孔，細胞處理同前。4%多聚甲醛固定10 min，PBS震蕩洗滌10 min×3次；含5%BSA的TBST室溫封閉2 h，PBS震蕩洗滌10 min×3；滴加cyclin D1一抗(1 ∶200)4℃孵育過夜，加入熒光標記二抗(1 ∶500)，室溫避光孵育60 min，PBS震蕩洗滌10 min×3次；每孔加DAPI 50 μL，室溫避光孵育10 min，PBS洗滌；加抗熒光淬滅劑封片，激光共聚焦顯微鏡下觀察熒光表達。

2 結果

2.1 NRK-52E細胞增殖及培養(yǎng)液上清LDH的變化由Tab 2可見，與對照組相比，H/R組培養(yǎng)基中LDH含量明顯上升(升高了106%)，同時細胞存活率明顯下降(P<0.01)，而H/R+IMD質粒組與H/R組及空質粒組相比LDH含量分別降低了33.85%、33.46%，此外,細胞存活率提高[(79.15%±1.42%vs61.22%±1.63%，60.98%±2.62%，P<0.05)]；H/R組與空質粒組差異無統(tǒng)計學意義。

GroupCellproliferation/%LDH/U·L-1Control100.00505.24±32.15H/R61.22±1.63**1536.84±115.28**H/R+PIRES260.98±2.62**1522.33±93.57**H/R+IMD79.15±1.42*#699.81±65.28#

*P<0.05,**P<0.01vscontrol;#P<0.05vsH/R.

2.2 NRK-52E細胞周期的變化由Tab 3可見，與對照組相比，H/R 組細胞G0/G1期比例增加，S期細胞比例降低(P<0.05)，說明H/R狀態(tài)下NRK-52E細胞增殖受到抑制。與H/R組及空質粒組比較，H/R+IMD組表現(xiàn)為G0/G1期細胞比例明顯降低，而S及G2期細胞比例增加(P<0.05)，表明IMD可使細胞越過G0/G1期，進而促進NRK-52E細胞的增殖。

GroupG0/G1SG2Control57.93±1.2333.01±2.358.03±0.76H/R79.92±1.69*13.62±1.36*6.45±0.44H/R+PIRES276.98±1.63*16.19±1.18*6.82±0.36H/R+IMD46.16±2.75*#48.08±1.89*#7.12±0.30*#

*P<0.05vscontrol；#P<0.05vsH/R

2.3 NRK-52E細胞中cyclin D1、CDK4、p57的表達Western blot結果顯示,H/R可增加cyclin D1、CDK 4的表達，這可能是一種損傷后修復啟動的代償機制，而IMD可明顯上調cyclin D1、CDK 4的表達，與對照組及H/R組相比差異具有顯著性(P<0.05)；相似的是，Real time-PCR檢測結果也顯示IMD能明顯增加cyclin D1、CDK 4的mRNA表達，提示IMD通過調控轉錄從而增加其表達(Fig 1)。與對照組相比，H/R組細胞p57 mRNA及蛋白的表達明顯上調(P<0.05)，而H/R+IMD組則明顯低于H/R組及空質粒組(P<0.05)見Fig 2。

Fig 1 The mRNA and protein levels of cyclin D1 and CDK by

1:Control; 2: H/R; 3: H/R+PIRES2; 4: H/R+IMD,*P<0.05vscontrol;#P<0.05vsH/R.

2.4 免疫熒光檢測cyclin D1在細胞內定位免疫熒光檢測結果可見，cyclin D1呈紅色熒光，在NRK-52E細胞內主要表達在細胞核中，DAPI呈現(xiàn)藍色熒光，PIRES2-EGFP/IMD攜帶EGFP報告基因，呈現(xiàn)綠色熒光(Fig 3)。

3 討論

缺血/再灌注損傷后腎小管上皮細胞的修復是腎功能恢復的基礎。ARF 患者的臨床預后取決于腎小管上皮細胞損傷與修復過程動態(tài)平衡的最終結果。在腎臟IRI后的修復需要腎小管上皮細胞再生取代受損的細胞，恢復腎小管的完整性，正常狀態(tài)下休眠的細胞將發(fā)生去分化，DNA合成加強，之后細胞可以發(fā)生增殖分化，恢復腎單位的完整性。細胞的增生必須通過完成一個細胞周期才能得以實現(xiàn)，因而促進細胞周期的進展能加快組織的再生和修復[6-7]。

Fig 2 The mRNA and protein levels of p57 by western blot

1：Control; 2： H/R; 3： H/R+PIRES2; 4： H/R+IMD,*P<0.05vscontrol；#P<0.05vsH/R

Fig 3 Immunolocalization of cyclin D1 in NRK-52E cells

A:cyclin D1; B:DAPI; C:EGFP; D:Merge

中介素(intermedin，IMD)又稱腎上腺髓質素2(adrenomedullin 2，ADM2)，是2004年由美國學者Roh和日本學者Takei同時發(fā)現(xiàn)的，是一種較腎上腺髓質素作用更強、更廣泛的降鈣素基因相關肽家族的新成員[8-9]，是重要的心、腎、神經、內分泌調節(jié)肽，參與多種器官生理、病理過程[10-12]，因此其生物學效應和功能越來越受到關注。大量的研究證實，IMD可以通過清除自由基、改善能量代謝、抑制細胞壞死和凋亡、抑制氧化應激等，從而減輕腎臟IRI急性期損傷[3, 13-18]。

近年來已有越來越多的證據(jù)提示，IRI后存在細胞周期的異常激活，腎小管上皮細胞在缺血性損傷后可快速進入細胞周期并增殖。本研究證實H/R組NRK-52E細胞存活率下降，培養(yǎng)液上清中的LDH活性升高，流式細胞術分析可見G0/G1細胞比例明顯上調，而IMD轉染后細胞存活率提高，同時細胞培養(yǎng)液上清中的LDH活性也明顯下降，而IMD轉染組G0/G1期細胞百分比明顯減少， S、G2期細胞的百分比增加，這一結果提示IMD可促進H/R損傷后細胞的增殖，減輕細胞損傷。

cyclin是一類與真核細胞的細胞周期呈同步性、周期性升降的周期調節(jié)蛋白，通過與細胞周期蛋白依賴性激酶(cyclin-dependent kinases，CDKs)結合形成cyclin-CDKs復合物共同控制著細胞周期[19-20]。cyclinD1、CDK4是 G1/S期關鍵的正性調節(jié)因子，二者通過結合成形成cyclinD1/CDK4復合物進入胞核，促使細胞通過G1/S調控點，啟動細胞周期過程進而發(fā)揮作用[21-22]。p57是重要的細胞周期蛋白依賴性激酶抑制因子(cyclin-dependent kinase inhibitor，CKI)主要表達在腎小球上皮細胞，參與調控細胞在G1/S期的轉變，抑制細胞增生[23]。本研究結果表明，H/R后cyclin D1、CDK4的表達均有所增加，這可能是損傷后機體的一種代償機制；而H/R+IMD組這些周期調節(jié)蛋白的表達進一步上調。H/R可導致p57表達水平明顯增加，而IMD則可降低p57的蛋白表達，同時我們還觀察到，cyclin D1在NRK-52E細胞內主要定位于在細胞核中，而cyclin D1核聚集在增加細胞的增殖能力中發(fā)揮著至關重要的作用。這一結果提示IMD通過調控cyclin D1轉錄翻譯，降低p57蛋白表達，進而增加cyclin D1/CDK4的活性，促進細胞周期由G0-G1期進入S期。這些結果與本課題組在動物實驗中的結果相似[17]。

總之，腎小管上皮細胞修復過程的完成有賴于一系列的調節(jié)因子的作用[17]，本研究在大鼠腎小管上皮NRK-52E細胞H/R模型中證實，IMD通過下調p57的表達，上調cyclinD1、CDK4的表達，從而促進細胞存活、增殖及細胞周期進展，這可能是IMD發(fā)揮腎臟缺血/再灌注保護的作用機制之一。本研究進一步證明了IMD促進腎臟IRI損傷后修復的重要作用，為IMD應用于腎臟IRI損傷的治療提供了實驗依據(jù)。

[1] Lameire N, Van Biesen W, Vanholder R. Acute renal failure[J].Lancet, 2005,365(9457):417-30.

[2] Jassem W, Heaton N D. The role of mitochondria in ischemia/reperfusion injury in organ transplantation[J].KidneyInt, 2004,66(2):514-7.

[3] Qiao X, Li R S, Li H, et al. Intermedin protects against renal ischemia-reperfusion injury by inhibition of oxidative stress[J].AmJPhysiolRenalPhysiol, 2013,304(1):F112-9.

[4] 周 蕓，李榮山，喬 晞，等. 中介素對大鼠近端腎小管上皮細胞缺氧復氧模型的保護作用[J]. 中華腎臟病雜志,2010,26(5):388-9.

[4] Zhou Y, Li R S, Qiao X, et al. The protection of intermedin in rat renal tubular cell hypoxia-reoxygenation injury [J].ChinJNephrol, 2010,26(5):388-9.

[5] Basnakian A G, Ueda N, Hong X, et al. Ceramide synthase is essential for endonuclease-mediated death of renal tubular epithelial cells induced by hypoxia-reoxygenation[J].AmJPhysiolRenalPhysiol,2005,288(2):F308-14.

[6] Kim J, Jung K J, Park K M. Reactive oxygen species differently regulate renal tubular epithelial and interstitial cell proliferation after ischemia and reperfusion injury[J].AmJPhysiolRenalPhysiol, 2010,298:F1118-29.

[7] 王艷紅. Intermedin對大鼠腎小管上皮細胞缺氧復氧損傷保護作用及機制的研究[D]. 山西：山西醫(yī)科大學，2013.

[7] Wang Y H. Experimental study of the protection from intermedin in rat renal tubular cell hypoxia-reoxygenation injury[D]. Shanxi: Shanxi Medical University,2013.

[8] Roh J, Chang C L, Bhalla A, et al. Intermedin is a calcitonin/calcitonin gene-related peptide family peptide acting through the calcitonin receptor-like receptor/receptor activity-modifying protein receptor complexes[J].JBiolChem,2004,279(8):7264-74.

[9] Takei Y, Inoue K, Ogoshi M, et al. Identification of novel adrenomedullin in mammals: a potent cardiovascular and renal regulator[J].FEBSLett,2004,556(1-3):53-8.

[10]Takahashi K, Morimoto R, Hirose T, et al. Adrenomedullin 2/intermedin in the hypothalamo-pituitary-adrenal axis[J].JMolNeurosci,2011,43(2):182-92.

[11]Manuela C, Laura S, Benedetta S, et al. Adrenomedullin and intermedin gene transcription is increased in leukocytes of patients with chronic heart failure at different stages of the disease[J].Peptides,2014,55:13-6.

[12]王艷紅，李榮山. 中介素/腎上腺髓質素2的生物學作用研究進展[J]. 國際移植與血液凈化雜志,2013,11(1):13-7.

[12]Wang Y H, Li R S. The research progresses for the biology function of intermedin/ adrenomedullin-2[J].IntJTransplantHemopurificatio, 2013,11(1):13-7.

[13]Wang Y, Li R, Qiao X, et al. Intermedin/adrenomedullin 2 protects against tubular cell hypoxia-reoxygenation injuryinvitroby promoting cell proliferation and upregulating cyclin D1 expression[J].Nephrology(Carlton),2013,18(9):623-32.

[14]李 宏，李榮山，喬 晞，等. intermedin對大鼠腎臟缺血/再灌注損傷的保護作用及其機制[J]. 中華腎臟病雜志,2010,26(8):614-8.

[14]Li H, Li R S, Qiao X, et al. Protective effect of intermedin on renal ischemia reperfusion injury and its mechanism[J].ChinJNephrol, 2010,26(8):614-8.

[15]趙海紅，李榮山，喬 晞，等. intermedin對腎臟缺血/再灌注損傷后血管再生相關因子表達的影響[J]. 中華腎臟病雜志,2011,27(12):912-6.

[15]Zhao H H, Li R S, Qiao X, et al. Effect of intermedin on the expressions of angiogenesis related genes induced by renal ischemia reperfusion injury[J].ChinJNephrol, 2011,27(12):912-6.

[16]趙 莉，李榮山，喬 晞，等. intermedin預處理對大鼠腎臟缺血/再灌注損傷的相關修復基因的影響[J]. 中華腎臟病雜志,2011,27(9):678-83.

[16]Zhao L, Li R S, Qiao X, et al. Effects of intermedin pretreatment on associated repairing genes in the kidney of rats with renal ischemia-reperfusion injury[J].ChinJNephrol, 2011,27(9):678-83.

[17]褚宇東，李榮山，喬 晞，等. Intermedin預處理對大鼠腎臟缺血/再灌注損傷修復過程中細胞周期蛋白表達的影響[J]. 中華風濕病學雜志,2011,15(8):541-5.

[17]Chu Y D, Li R S, Qiao X, et al. Effect of intermedin preconditioning on cyclin pression after renal ischemia reperfusion in rats [J].ChinJRheumatol, 2011,15(8):541-5.

[18]馮國徵，李榮山，喬 晞，等. intermedin預處理對大鼠腎臟缺血/再灌注損傷修復和再生過程的作用[J]. 中華腎臟病雜志,2011,27(12):917-22.

[18]Feng G Z, Li R S, Qiao X, et al. Effect of intermedin pretreatment on repair and regeneration process of renal ischemia reperfusion injury[J].ChinJNephrol, 2011,27(12):917-22.

[19]Barrera-Hernandez G, Park K S, Dace A, et al. Thyroid hormone-induced cell proliferation in GC cells is mediated by changes in G1 cyclin/cyclin-dependent kinase levels and activity[J].Endocrinology, 1999,140(11):5267-74.

[20]Bamberger A, Sudahl S, Bamberger C M, et al. Expression patterns of the cell-cycle inhibitor p27 and the cell-cycle promoter cyclin E in the human placenta throughout gestation: implications for the control of proliferation[J].Placenta,1999,20(5-6):401-6.

[21]胡 波，邱青朝，賀修培，等. 二烯丙基二硫下調cyclin D1和CDK4的表達誘導人鼻咽癌CNE2細胞G1期阻滯[J]. 中國藥理學通報, 2010,26(9):1203-7.

[21]Hu Y, Qiu Q C, He X P, et al. Diallyl disulfide induced cell cycle arrest in G1 phase by downregulation of cyclin D1 and CDK4 in human nasopharyngeal carcinoma CNE2cells[J].ChinPharmacolBull, 2010,26(9):1203-7.

[22]張吉仲，萬 謙，劉 圓. 白花丹醌對人肝癌細胞HepG2、SMMC-7721增殖及其BAX/Bcl-2、cyclin D1 mRNA表達的影響[J]. 中國藥理學通報，2012，28(12)：1729-32.

[22]Zhang J Z,Wang Q,Liu Y. The influence of plumbagin on proliferation of human hepatoma carcinoma cells HepG2 and mRNA expression of BAX/Bcl-2,cyclin D1[J].ChinPharmacolBull,2012，28(12)：1729-32.

[23]趙 燕，曹 亞. 細胞周期蛋白依賴性蛋白激酶抑制劑p57的研究進展[J]. 生命的化學,2002,22(5):429-31.

[23]Zhao Y, Cao Y, The research progresses of cyclin-dependent kinase inhibitor p57[J].ChemLife, 2002,22(5):429-31.

Research of the effect in intermedin on cell proliferation repair of renal tubular cell hypoxia-reoxygenation injury

WANG Yan-hong1, TIAN Ji-hua1, SU Xiao-le2, QIAO Xi2, LI Rong-shan3

(1.DeptofMicrobiologyandImmunology,ShanxiMedicalUniversity,Taiyuan030001,China;2.DeptofNephrology,theSecondHospitalofShanxiMedicalUniversity,Taiyuan030001,China; 3.DeptofNephrology,ShanxiProvincialPeople′sHospital,ShanxiKidneyDiseaseInstitute,Taiyuan,Shanxi030001,China)

Aim To evaluate the effect of intermedin (IMD) on cell proliferation and regeneration in rat tubular epithelial cell line (NRK-52E) that was subjected to hypoxia-reoxygenation (H/R) injury. Methods The NRK-52E cells were divided into control group and three model groups (H/R,H/R+primitive vector, H/R+IMD vector) . The content of LDH was detected to observe the influence of IMD on H/R injury. The cell proliferation was detected by MTT.The cell cycle was detected by flow cytometry. Real-time PCR and western blotting were used to determine mRNA and protein levels. Results ① In comparison to the control, H/R treatment decreased the cell viability and increased LDH activity (P<0.01); in contrast, compared to H/R, IMD treatment ameliorated cell viability(79.15±1.421%vs61.22±1.63%，P<0.05) and decreased LDH activities by 33.85% (P<0.01). ② The proliferation of NRK-52E cells was significantly inhibited by H/R treatment. In comparison to the control, H/R treatment of NRK-52E cells increased the proportion of cells in the G0/G1phase but decreased the proportion of cells in the S and G2/M phases.Moreover, the over-expression of IMD resulted in S and G2/M phase redistribution and the accumulation of G2/M-phase cells. The real-time PCR and western blotting results indicated that the mRNA and protein expression levels of cyclin D1, CDK4 and p57 were increased in H/R-treated cells. IMD further stimulated this up-regulated expression of cyclin D1, CDK4 and decreased the expression of p57 in NRK-52E cells. ④Cyclin D1 had a predominantly nuclear localization in NRK-52E cells, although cytoplasmic localization was also observed. Conclusion The study shows that the over-expression of IMD may promote renal cell proliferation and regeneration after renal tubular cell H/R injury via the up-regulation of cyclin D1,CDK and the down-regulation of p57.

intermedin; hypoxia-reoxygenation injury; renal tubular epithelial cells; cell proliferation; cell cycle; cyclin

時間：2015-3-16 15:41 網絡出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/34.1086.R.20150316.1541.017.html

2014-10-15,

2015-02-10

國家自然科學基金資助項目(No 30971380)；山西醫(yī)科大學博士啟動基金(No 03201302)；山西醫(yī)科大學基礎醫(yī)學院331基金(No 201406)；山西醫(yī)科大學科技創(chuàng)新基金(No 01201403)

王艷紅(1979-)，女，博士，講師，研究方向：腎功能不全的基礎與臨床，E-mail：wangyanhongmail@126.com； 李榮山(1963-)，男，博士，教授，博士生導師，研究方向：腎功能不全的基礎與臨床，通迅作者，E-mail：rongshanli13@163.com

10.3969/j.issn.1001-1978.2015.04.009

A

1001-1978(2015)04-0482-06

R-332；R322.61；R329.24；R329.28