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    不同產(chǎn)地木瓜中綠原酸、原兒茶酸和總酚的含量測定Δ

    2015-05-21 08:55:50謝曉梅程菁菁安徽中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院現(xiàn)代中藥安徽省重點實驗室安徽省115新安醫(yī)藥研究與開發(fā)產(chǎn)業(yè)創(chuàng)新團隊合肥230012
    中國藥房 2015年24期
    關(guān)鍵詞:原兒茶酸總酚木瓜

    韓 煜,楊 沫,謝曉梅,程菁菁,王 鍵(安徽中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院/現(xiàn)代中藥安徽省重點實驗室/安徽省“115”新安醫(yī)藥研究與開發(fā)產(chǎn)業(yè)創(chuàng)新團隊,合肥 230012)

    中藥木瓜又名皺皮木瓜,為薔薇科木瓜屬植物貼梗海棠Chaenomeles speciosa(Sweet)Nakai的干燥近成熟果實[1],主產(chǎn)于安徽宣城、重慶綦江、湖北資丘及云南等地,歷代本草以宣木瓜為道地藥材。木瓜含有有機酸、三萜類、多酚和多糖等[2-4]。植物多酚是一類廣泛存在于植物體內(nèi)的復(fù)雜次生代謝產(chǎn)物。隨著多酚類成分在抗氧化、抗癌、防治心血管疾病等多方面活性的研究不斷深入[5-8],植物多酚已成為當前研究的熱點之一[9]。但目前鮮見中藥木瓜多酚較為系統(tǒng)的研究報道。本文通過雙波長切換高效液相色譜(HPLC)法和Folin-Ciocalteau比色法對國內(nèi)主要產(chǎn)地木瓜中綠原酸、原兒茶酸和總酚含量進行比較,考察多酚與綠原酸、原兒茶酸含量的相關(guān)性,以為木瓜的質(zhì)量控制和評價提供科學(xué)依據(jù),并為其深度研究與開發(fā)利用積累試驗資料。

    1 材料

    1.1 儀器

    1260型HPLC儀,包括二元泵系統(tǒng)、自動進樣器、柱溫箱、二極管陣列檢測器和ChemStation色譜工作站(美國Agilent公司);756MC型紫外可見分光光度計(上海精密科學(xué)儀器有限公司);BP221D型電子天平(德國Sartorius公司);KQ-250DB型數(shù)控超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);Milli-Q實驗室超純水器(美國Millipore公司)。

    1.2 試劑

    綠原酸對照品(批號:110753-200413)、原兒茶酸對照品(批號:110809-200604)和沒食子酸對照品(批號:110831-200302)均由中國食品藥品檢定研究院提供;乙腈為色譜純,磷酸、甲醇等為分析純,水為超純水。

    1.3 藥材

    木瓜藥材產(chǎn)地及收集地詳見表1。所有樣品經(jīng)安徽中醫(yī)藥大學(xué)彭華勝教授鑒定為薔薇科植物貼梗海棠C.speciosa(Sweet)Nakai的果實,用前粉碎,過80目篩,混合均勻。

    表1 木瓜藥材產(chǎn)地和收集地Tab 1 The different habitats and collected areas of C.sinensis

    2 方法與結(jié)果

    2.1 原兒茶酸和綠原酸的含量測定

    2.1.1 色譜條件與系統(tǒng)適用性試驗 色譜柱:Shim-pack CLC-ODS(M)柱(250mm×4.6mm,5 μm);流動相:乙腈-0.1%磷酸水溶液(15∶85,V/V);檢測波長為259nm和325nm,波長切換程序為:0~14min,259nm,14~25min,325nm;流速:0.5ml/min;柱溫:25 ℃;進樣量:20μl。理論板數(shù)以原兒茶酸和綠原酸峰計,分別為14000、14500,測量峰與相鄰峰分離度均大于5。色譜詳見圖1。

    2.1.2 對照品溶液的制備 精密稱取原兒茶酸對照品7.07mg、綠原酸對照品7.24mg,分別置于5ml量瓶中,加50%甲醇使溶解,定容,搖勻,制成原兒茶酸、綠原酸對照品貯備液;精密移取原兒茶酸對照品貯備液0.5ml、綠原酸對照品貯備液2ml,分別置于10ml量瓶中,加50%甲醇定容,制成每1ml含原兒茶酸0.0707mg和綠原酸0.2896mg的對照品溶液。

    2.1.3 供試品溶液的制備 取木瓜供試品約1 g,精密稱定,置具塞錐形瓶中,精密加入50%甲醇25ml,密塞,稱定質(zhì)量,超聲(功率:250 W,頻率:40 kHz)處理30min,放冷,用50%甲醇補足減失的質(zhì)量,搖勻,濾過,即得。

    圖1 高效液相色譜圖A.對照品;B.宣城木瓜(編號 6);C.云南木瓜(編號13);D.四川木瓜(編號11);E.湖北木瓜(編號8);1.原兒茶酸;2.綠原酸Fig 1 HPLC chromatogramsA.reference;B.C.sinensis from Xuancheng(No.6);C.C.sinensis Yunnan(No.13);D.chaenomelis fructus from Sichuan(No.11);E.C.sinensis from Hube(iNo.8);1.protocatechuic acid;2.chlorogenic acid

    2.1.4 檢測波長和切換時間 采用二極管陣列檢測器,在200~400nm波長范圍掃描并記錄與原兒茶酸、綠原酸保留時間相同的供試品色譜峰的紫外光譜,并與原兒茶酸、綠原酸光譜圖比較。結(jié)果顯示,供試品中與對照品保留時間相同的色譜峰,其紫外光譜與對照品一致,詳見圖2。依據(jù)所得光譜,分別選擇原兒茶酸最大吸收波長259nm和綠原酸最大吸收波長325nm為各自的檢測波長,結(jié)合供試品在259nm和325nm的色譜圖,最終確定波長切換時間在進樣14min時。

    2.1.5 線性關(guān)系考察 分別精密吸取原兒茶酸對照品溶液0.5、3.0、10.0、30.0、35.0μl,綠原酸對照品溶液 1.0、2.0、5.0、10.0、15.0μl,按“2.1.1”項下色譜條件,依序注入HPLC儀,以色譜峰面積(y)為縱坐標,對照品進樣量(x,μg)為橫坐標,繪制標準曲線,得原兒茶酸的回歸方程為y=5603x+203.5(r=0.9995),綠原酸的回歸方程為y=4075x+757.9(r=0.9995);表明原兒茶酸、綠原酸的進樣量分別在0.0354~2.47、0.289~4.34μg范圍內(nèi)與各自峰面積呈良好的線性關(guān)系。

    2.1.6 精密度試驗 取“2.1.2”項下對照品溶液適量,按上述色譜條件連續(xù)進樣5次測定。結(jié)果,原兒茶酸、綠原酸峰面積的RSD分別為1.52%、1.04%,表明儀器精密度良好。

    2.1.7 穩(wěn)定性試驗 取同一供試品(編號6)溶液適量,分別于配制0、1、2、4、12h時按上述色譜條件進樣測定。結(jié)果,原兒茶酸、綠原酸峰面積的RSD分別為2.90%、0.21%,表明供試品溶液在12h內(nèi)穩(wěn)定。

    2.1.8 重復(fù)性試驗 取同一批木瓜供試品(編號6)6份,精密稱定,按“2.1.3”項下方法制備供試品溶液,再按“2.1.1”項下色譜條件進樣測定。結(jié)果,原兒茶酸、綠原酸含量的RSD分別為2.29%、1.80%,表明本方法重復(fù)性較好。

    圖2 紫外光譜圖A.原兒茶酸;B.綠原酸;C.與原兒茶酸保留時間相同的成分;D.與綠原酸保留時間相同的成分Fig 2 UV spectrumA.protocatechuic acid;B.chlorogenic acid;C.compound with the same retention time as protocatechuic acid;D.compound with the same retention time as chlorogenic acid

    2.1.9 加樣回收率試驗 取同一批已知含量的木瓜供試品(編號6)0.5 g,精密稱定,分別準確加入一定量的原兒茶酸和綠原酸對照品,按“2.1.3”項下方法制備供試品溶液,再按“2.1.1”項下色譜條件進樣測定,計算加樣回收率,結(jié)果詳見表2。

    表2 原兒茶酸和綠原酸的加樣回收率試驗結(jié)果(n=6)Tab 2 Results of recovery test of protocatechuic acid and chlorogenic acid(n=6)

    2.1.10 原兒茶酸和綠原酸的含量測定 取不同產(chǎn)地的木瓜供試品各適量,按“2.1.3”項下方法制備供試品溶液,再按“2.1.1”項下色譜條件進樣測定,記錄峰面積,按外標法計算原兒茶酸和綠原酸含量。

    2.2 總酚的含量測定

    2.2.1 對照品溶液的制備 精密稱取置五氧化二磷干燥器中的沒食子酸、綠原酸和原兒茶酸對照品適量,分別置于5ml量瓶中,加甲醇使溶解,定容,搖勻,制成每1ml含沒食子酸0.199mg、綠原酸0.224mg和原兒茶酸0.193mg的對照品溶液。

    2.2.2 供試品溶液的制備 取木瓜供試品0.1 g,精密稱定,精密加入50%甲醇25ml,稱質(zhì)量,超聲(功率:250 W,頻率:40 kHz)處理30min,冷卻,用50%甲醇補足減失的質(zhì)量,搖勻,濾過,收集續(xù)濾液,即得。

    2.2.3 檢測波長和指標成分的選擇 精密移取綠原酸、原兒茶酸和沒食子酸對照品溶液及供試品溶液各適量,分別置于25ml量瓶中,加Folin-Ciocalteau試液1.0ml,超純水10ml,用7.5%Na2CO3溶液稀釋至刻度,搖勻,室溫放置2 h,以空白試液為參照,在300~800nm波長范圍內(nèi)掃描,記錄紫外吸收光譜,詳見圖3。結(jié)果表明,各對照品和供試品溶液顯色后,吸收光譜相似,最大吸收均在763nm波長處;其中,沒食子酸是2010年版《中國藥典》(一部)總酚測量的指標成分[1],課題組在對木瓜酚類成分預(yù)試驗中,檢出了原兒茶酸和綠原酸,較少檢出沒食子酸;考慮原兒茶酸較綠原酸易得,故選擇原兒茶酸為木瓜總酚測量的指標成分。

    圖3 吸收光譜圖1.沒食子酸;2.原兒茶酸;3.木瓜供試品(編號 3);4.綠原酸Fig 3 Absorption spectra1.gallic acid;2.protocatechuic acid;3.test sample of C.sinensis(No.3);4.chlorogenic acid

    2.2.4 線性關(guān)系考察 精密移取“2.2.1”項下原兒茶酸對照品溶液 0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0ml,置于 25ml量瓶中,加Folin-Ciocalteau試液1.0ml,超純水 10ml,用 7.5%Na2CO3溶液稀釋至刻度,搖勻,室溫放置2 h,以空白試液為參照,在763nm波長處測定吸光度。以對照品進樣量(x,mg)為橫坐標,吸光度(y)為縱坐標,繪制標準曲線,得原兒茶酸的回歸方程為 y=4.49x+0.0727(r=0.9991),表明原兒茶酸進樣量在0.0193~0.193mg范圍內(nèi)與吸光度線性關(guān)系良好。

    2.2.5 精密度試驗 精密移取對照品溶液1.0ml,按上述方法測量吸光度,平行6次。結(jié)果,吸光度的RSD為0.45%,表明儀器精密度良好。

    2.2.6 穩(wěn)定性試驗 精密移取供試品(編號3)溶液1.0ml,按上述方法操作,顯色后分別于放置0、2、3、3.5、4 h時測定。結(jié)果,吸光度的RSD為0.89%,表明供試品溶液在4 h內(nèi)穩(wěn)定。

    2.2.7 重復(fù)性試驗 取同一木瓜供試品(編號3)0.1 g,按“2.2.2”項下方法制備供試品溶液,再按上述方法操作,平行測定6次,計算總酚含量。結(jié)果,RSD為1.50%,表明本方法重復(fù)性較好。

    2.2.8 加樣回收率試驗 取同一批已知含量的木瓜供試品(編號3)約50mg,精密稱定,準確加入適量原兒茶酸對照品,按“2.2.2”項下方法制備供試品溶液,再按上述方法操作,計算加樣回收率,結(jié)果詳見表3。

    2.2.9 總酚含量測定 取木瓜供試品,按“2.2.2”項下方法制備供試品溶液;精密移取續(xù)濾液1.0ml,置于25ml量瓶中,加Folin-Ciocalteau試液1.0ml,超純水 10ml,用 7.5%Na2CO3溶液稀釋至刻度,搖勻,室溫放置2 h,以空白試液為參照,在763nm處測定吸光度,按標準曲線法計算供試品中總酚含量。

    表3 總酚的加樣回收率試驗結(jié)果(n=6)Tab 3 Result of recovery test of total phenolics(n=6)

    2.3 不同產(chǎn)地木瓜中總酚、綠原酸和原兒茶酸的含量測定結(jié)果

    取不同產(chǎn)地木瓜供試品各適量,按“2.1.10”項下方法測定原兒茶酸和綠原酸含量,再按“2.2.9”項下方法測定總酚含量,結(jié)果詳見表4。

    表4 不同產(chǎn)地木瓜中總酚、綠原酸和原兒茶酸的含量測定結(jié)果(n=2,%)Tab 4 Mass fractions of total phenolics,chlorogenic acid and protocatechuic acid in C.sinensis from different areas(n=2,%)

    3 討論

    綠原酸和原兒茶酸屬于酚酸類化合物,分子結(jié)構(gòu)中都同時存在多酚和羧酸官能團,是目前發(fā)現(xiàn)的木瓜多酚的主要成分。李霞等[10]采用梯度洗脫分離和254nm檢測分析木瓜中綠原酸和原兒茶酸的含量。本法在等度洗脫的條件下,通過波長切換在綠原酸和原兒茶酸各自最大吸收波長處檢測,提高了分析效率和檢測靈敏度。預(yù)試驗中對流動相組成(甲醇、乙腈、磷酸溶液及其體積比)、流速和柱溫等進行考察,最終確定為本研究中所用的分離條件。

    總酚的含量測定常用Folin-Ciocalteau比色法[11]和三氯化鐵-鐵氰化鉀比色法[12]。前期試驗對兩種方法進行了考察,發(fā)現(xiàn)在木瓜的總酚的含量測定中,后者顯色后吸光度穩(wěn)定時間較短,方法學(xué)考察項目的RSD較前者稍難以控制,故采用了Folin-Ciocalteau比色法。依據(jù)2010年版《中國藥典》(一部)附錄收載方法[1]并進行優(yōu)化,對不同提取溶劑(10%、30%、50%、70%甲醇)進行了提取試驗,對不同超聲提取時間(10、30、60min)進行了試驗,以及對Folin-Ciocalteau試液加入量、顯色后暗處放置時間和Na2CO3溶液體積分數(shù)進行試驗,最終確定了本研究中木瓜總酚的最佳測量條件。

    木瓜具有舒筋活絡(luò)、和胃化濕的功效,但目前對其功效的物質(zhì)基礎(chǔ)還不甚明了。本課題組基于對中藥物質(zhì)基礎(chǔ)“具有三個層次多維結(jié)構(gòu)”[13]的認識,對宣木瓜組分進行較為系統(tǒng)的分析檢測,已開展宣木瓜總?cè)坪蛦误w成分齊墩果酸熊果酸[14]、宣木瓜總有機酸和單體有機酸、宣木瓜總多糖和單體多糖的含量分析研究。從本研究結(jié)果看,不同產(chǎn)地木瓜均含有總酚、綠原酸和原兒茶酸;總酚質(zhì)量分數(shù)為0.87%~3.77%,平均值2.16%;綠原酸質(zhì)量分數(shù)為0.053%~0.387%,平均值0.192%;原兒茶酸質(zhì)量分數(shù)為0.024%~0.541%,平均值0.087%;不同產(chǎn)地總酚含量高低順序為:云南木瓜>宣木瓜>川木瓜>湖北木瓜;綠原酸和原兒茶酸總量的產(chǎn)地高低順序與總酚相同。Pearson相關(guān)系數(shù)為0.719(P<0.01),表明總酚含量與綠原酸和原兒茶酸總量之間存在一定正相關(guān)性。在對綠原酸與原兒茶酸含量比例分析中發(fā)現(xiàn),所測樣品中宣木瓜均處于較高的比值水平,且綠原酸和原兒茶酸總量占總酚含量比例也處于較高值,數(shù)值相對穩(wěn)定,這一現(xiàn)象是否附有產(chǎn)地特征尚需進一步研究。

    綜上所述,本文所建方法簡便、準確、重復(fù)性好,可綜合用于木瓜的質(zhì)量分析。

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