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      MBR系統(tǒng)好氧反硝化效果及好氧反硝化菌的鑒定

      2015-04-10 08:46:16李曉樓
      化工環(huán)保 2015年4期
      關(guān)鍵詞:活性污泥硝化單胞菌

      李曉樓

      (四川職業(yè)技術(shù)學(xué)院 建筑與環(huán)境工程系,四川 遂寧 629000)

      研究報(bào)告

      MBR系統(tǒng)好氧反硝化效果及好氧反硝化菌的鑒定

      李曉樓

      (四川職業(yè)技術(shù)學(xué)院 建筑與環(huán)境工程系,四川 遂寧 629000)

      采用間歇曝氣法對MBR系統(tǒng)好氧反硝化菌進(jìn)行了培養(yǎng)和富集,考察了系統(tǒng)的好氧反硝化效果及其影響因素,并對好氧反硝化菌進(jìn)行了分離和鑒定。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:在DO為2.0~3.0 mg/L、m(C)∶m(N)為8∶1的條件下,MBR系統(tǒng)好氧反硝化效果較好,COD、氨氮、TN的去除率分別達(dá)到90%,90%,62%左右;從系統(tǒng)活性污泥中得到11株好氧反硝化性能較好的好氧反硝化菌,它們屬于變形菌門,分別屬于不動(dòng)桿菌屬、叢毛單胞菌屬、氣單胞菌屬、假單胞菌屬和噬氫菌屬。

      生物脫氮;膜生物反應(yīng)器;好氧反硝化菌;菌種鑒定

      近年來,國家對水質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)和水處理要求的提高,對生物脫氮技術(shù)的發(fā)展提出了更高要求。傳統(tǒng)生物脫氮技術(shù)存在較多不足之處,如硝化菌群增殖速度慢、需進(jìn)行污泥和硝化液的回流、系統(tǒng)抗沖擊能力較弱以及脫氮酸堿度需調(diào)節(jié)等[1]。

      研究發(fā)現(xiàn),在好氧硝化池中常有超出微生物增殖所需的氮的去除,損失的總氮量高達(dá)30%[2]。這種好氧過程中的脫氮現(xiàn)象是由好氧反硝化菌引起的。與傳統(tǒng)生物脫氮技術(shù)相比,好氧反硝化菌脫氮具有以下優(yōu)點(diǎn):1)使硝化/反硝化反應(yīng)在同一個(gè)反應(yīng)器中進(jìn)行,可大幅減少占地面積和建設(shè)資金;2)可減少調(diào)節(jié)系統(tǒng)pH的化學(xué)藥劑用量,降低成本;3)好氧反硝化菌在處理過程中更易控制[3]。

      目前,在多種生物處理系統(tǒng)中都發(fā)現(xiàn)了好氧反硝化過程的存在,如好氧曝氣池和SBR系統(tǒng)[4-5]。由于生長條件和競爭等因素限制,好氧反硝化菌不易篩選和富集,而采用生物固定化技術(shù)和MBR能夠有效地保留和富集好氧反硝化菌[6-7]。通過對生物處理系統(tǒng)中好氧反硝化菌的分離篩選和鑒定,了解系統(tǒng)中好氧反硝化菌的生長條件,有利于調(diào)控生物處理系統(tǒng),保證好氧反硝化過程的順利進(jìn)行[8-9]。同時(shí),對好氧反硝化菌的分離篩選有助于強(qiáng)化生物脫氮過程[10]。

      本工作采用間歇曝氣法對MBR系統(tǒng)好氧反硝化菌進(jìn)行了培養(yǎng)和富集,考察了系統(tǒng)的好氧反硝化效果及其影響因素,并對好氧反硝化菌進(jìn)行了分離和鑒定,以期為MBR系統(tǒng)好氧反硝化菌的培養(yǎng)及系統(tǒng)調(diào)控提供理論基礎(chǔ)和技術(shù)支持。

      1 實(shí)驗(yàn)部分

      1.1 試劑、材料和儀器

      溴百里酚藍(lán)(BTB)分離培養(yǎng)基:KNO31 g,KH2PO41 g,F(xiàn)eC120.5 g,CaCl20.2 g,MgSO4·7H2O 1 g,丁二酸鈉8.5 g,1%(w)BTB無水乙醇溶液1 mL,瓊脂20 g,蒸餾水1000 mL,pH=7.0~7.5,121 ℃滅菌20 min。

      LB液體培養(yǎng)基:胰蛋白胨10 g,酵母粉5 g,氯化鈉10 g,蒸餾水1000 mL,pH=7.0~7.5,121 ℃滅菌20 min。

      反硝化培養(yǎng)基:KNO31 g,KH2PO41 g,F(xiàn)eCl20.5 g,CaCl20.2 g,MgSO4·7H2O 1 g,琥珀酸鈉4.5 g,蒸餾水1000 mL,pH=7.0~7.5,121 ℃滅菌20 min。

      微量元素溶液:乙二胺四乙酸5.0 g,CaCl20.5 g,ZnSO40.3 g,MnCl2·4H2O 0.5 g,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.5 g,CuSO4·5H2O 0.2 g,CoCl2·6H2O 0.2 g,蒸餾水1000 mL,pH=6.0。

      FM培養(yǎng)液:牛肉膏1.0 g,蛋白胨5.0 g,KNO31.0 g,蒸餾水1000 mL,pH=7.0~7.5,121 ℃滅菌20 min。

      DM培養(yǎng)液:Na2HPO4·7H2O 7.9 g,KH2PO41.5 g,KNO30.3 g,微量元素溶液1 mL,蒸餾水1000 mL,pH=7.0~7.5,121 ℃滅菌20 min。

      廢水:人工配制的模擬廢水,主要成分為FM培養(yǎng)液2%(w)、DM培養(yǎng)液3%(w)、實(shí)際生活污水(取自四川省遂寧市某生活區(qū))10%(φ)。廢水的水質(zhì)見表1,廢水pH控制在6.3~7.5。

      活性污泥:取自四川省某污水處理廠污泥濃縮池的好氧污泥,呈絮狀,沉降性能良好。

      DYCP-34A型瓊脂糖水平電泳儀:北京六一儀器廠;CARY300型紫外-可見分光光度計(jì):美國Varina公司;HQ30d型便攜式溶氧儀:HACH公司;BS210S型電子天平:美國賽多利斯天平有限公司。

      表1 廢水的水質(zhì) mg/L

      1.2 MBR系統(tǒng)運(yùn)行參數(shù)

      MBR:自制,采用聚偏氟乙烯(PVDF)纖維實(shí)驗(yàn)型膜片制成內(nèi)徑為20 cm、高度約120 cm的圓柱形玻璃容器,有效容積30 L。系統(tǒng)基本運(yùn)行參數(shù):HRT=12 h,MLSS=6~8 g/L,SRT=20~30 d;DO控制在0.5~5.0 mg/L,通過控制曝氣量進(jìn)行調(diào)節(jié);m(C)∶m(N)控制在(3~12)∶1,通過改變Na3C6H5O7·2H2O投加量進(jìn)行控制。MBR系統(tǒng)的運(yùn)行參數(shù)見表2。

      1.3 好氧反硝化菌的培養(yǎng)與富集

      采用間歇曝氣法對MBR系統(tǒng)中好氧反硝化菌進(jìn)行培養(yǎng)和富集[11]。該方法利用好氧反硝化菌可同時(shí)將O2和NO3-作為電子受體的特性,將好氧、缺氧條件進(jìn)行轉(zhuǎn)換,能夠完全抑制好氧菌和厭氧菌的正常生長,促使好氧反硝化菌在競爭中取得優(yōu)勢地位。經(jīng)過30 d培養(yǎng),系統(tǒng)在好氧條件下脫氮效果達(dá)到穩(wěn)定,TN去除率維持在30%~40%。

      表2 MBR系統(tǒng)的運(yùn)行參數(shù)

      1.4 好氧反硝化菌的篩選

      從MBR中取10 mL泥水混合液,與90 mL反硝化培養(yǎng)基混合,置于30 ℃搖床內(nèi)培養(yǎng)24 h。將活性污泥培養(yǎng)液按一定比例稀釋,取適量涂布于BTB分離培養(yǎng)基上,置于30 ℃恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)48 h。挑取使培養(yǎng)基顯色(藍(lán)色)的單菌落至BTB分離培養(yǎng)基上,經(jīng)5~6次劃線純化分離得純菌株,于4 ℃保存。

      1.5 好氧反硝化菌的鑒定

      采用Chelex法提取好氧反硝化菌DNA:取1 mL 37 ℃振蕩培養(yǎng)后的菌液于1.5 mL離心管中,以8000 r/min的轉(zhuǎn)速離心1 min,去除上清液,加入1mL Trizol試劑,得DNA提取液。

      參照文獻(xiàn)[12]報(bào)道的方法進(jìn)行16S rRNA基因的擴(kuò)增。擴(kuò)增引物序列為上游引物5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′和下游引物5′-GGTTACCTTGTTACGACTT-3′。PCR擴(kuò)增程序?yàn)椋?9 ℃預(yù)變性4 min;95 ℃變性30 s,54 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min(共30個(gè)循環(huán));72 ℃延伸10 min。

      PCR產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測后送至深圳華大基因研究院進(jìn)行16S rRNA基因序列的測定。參照文獻(xiàn)[13]報(bào)道的方法將16S rRNA基因序列(約700 bp)導(dǎo)入EzTaxon-e基因庫進(jìn)行BLAST比對分析。

      1.6 分析方法

      按照文獻(xiàn)[14]報(bào)道的方法進(jìn)行水質(zhì)的測定。其中,采用重鉻酸鉀法測定COD;采用納氏試劑光度法測定氨氮;采用過硫酸鉀氧化—紫外分光光度法測定TN;采用便攜式溶解氧儀法測定DO;采用酚二磺酸光度法測定硝酸鹽氮;采用N-(1-萘基)-乙二胺光度法測定亞硝酸鹽氮。

      挑取篩選提純的菌落至LB液體培養(yǎng)基中,置于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,將培養(yǎng)液離心,用生理鹽水洗滌,分別挑取一環(huán)接種至100 mL反硝化培養(yǎng)基中,37 ℃振蕩培養(yǎng)24 h。測定反應(yīng)前后培養(yǎng)基中的硝態(tài)氮和亞硝態(tài)氮的質(zhì)量濃度,按下式計(jì)算菌株的總脫氮率(η,%)。

      η=[ρ(初始硝態(tài)氮)-ρ(反應(yīng)后硝態(tài)氮)-ρ(反應(yīng)后亞硝態(tài)氮)]/ρ(初始硝態(tài)氮)×100%

      2 結(jié)果與討論

      2.1 MBR系統(tǒng)的處理效果

      MBR系統(tǒng)的處理效果見圖1。由圖1可見:在30 d的啟動(dòng)期中,COD去除率在前10 d逐漸增加,在11~30 d期間,微生物適應(yīng)進(jìn)水水質(zhì)后,COD去除率逐漸穩(wěn)定,基本維持在90%左右;氨氮去除率在前16 d內(nèi)總體呈上升趨勢,系統(tǒng)的硝化能力逐步加強(qiáng),在馴化階段后期,氨氮去除率趨于穩(wěn)定,達(dá)到90%左右;TN去除率在馴化初期呈現(xiàn)出一定的波動(dòng)性,23 d后穩(wěn)定在40%左右,可認(rèn)為此時(shí)好氧反硝化菌落結(jié)構(gòu)已趨于穩(wěn)定。

      圖1 MBR系統(tǒng)的處理效果

      2.2 DO對好氧反硝化效果的影響

      階段2考察了DO對MBR系統(tǒng)處理效果的影響。由圖1可見:當(dāng)DO為0.5~1.0 mg/L(31~37 d)時(shí),由于DO的不足,造成系統(tǒng)COD、氨氮的去除效果及反硝化效果不佳;隨DO的增加,COD、氨氮的去除效果及反硝化效果逐漸提升;當(dāng)DO為2.0~3.0 mg/L(45~51 d)時(shí),COD、氨氮的去除效果恢復(fù)至正常水平,同時(shí)反硝化效果達(dá)到最優(yōu)。

      DO對MBR系統(tǒng)TN去除率的影響見圖2。

      圖2 DO對MBR系統(tǒng)TN去除率的影響

      由圖2可見:當(dāng)DO為0.5~1.0 mg/L時(shí),好氧反硝化效果不佳,TN去除率維持在20%以下;隨DO的增加,好氧反硝化效率呈先增后降的趨勢;當(dāng)DO為2.0~3.0 mg/L時(shí),好氧反硝化效率達(dá)到最高,TN去除率達(dá)40%;DO繼續(xù)增至3.0~5.0 mg/L時(shí),TN降至34%。

      綜上所述,DO對好氧反硝化效果影響較大。低DO條件下,細(xì)胞活性降低,導(dǎo)致細(xì)胞生長率和反硝化率降低,硝酸鹽還原酶處于抑制狀態(tài)。此時(shí),脫氮主要是通過傳統(tǒng)缺氧反硝化過程,有利于N2生成[15-16]。高DO條件下,微生物活性增加,聚β-羥基丁酸得以積累而利于快速脫氮,使得好氧反硝化順利進(jìn)行[17]。曝氣時(shí)間過長,好氧反硝化菌體開始衰亡,數(shù)量減少,活性降低[18],從而導(dǎo)致TN去除率出現(xiàn)下降。

      2.3 有機(jī)碳源對好氧反硝化效果的影響

      階段3考察了m(C)∶m(N)對MBR系統(tǒng)處理效果的影響。由圖1可見:隨m(C)∶m(N)的增大,COD、氨氮的去除效果未受明顯影響,去除率維持在90%左右;好氧反硝化效果隨m(C)∶m(N)的增大而逐漸提升,當(dāng)m(C)∶m(N)增至8∶1(69~74 d)時(shí),好氧反硝化效果提升最為明顯。

      m(C)∶m(N)對MBR系統(tǒng)TN去除率的影響見圖3。由圖3可見:好氧反硝化效果隨m(C)∶m(N)的增大而逐漸提升,當(dāng)m(C)∶m(N)增至8∶1時(shí),好氧反硝化效率提高明顯,TN去除率達(dá)62%左右;m(C)∶m(N)繼續(xù)增至12∶1,好氧反硝化效率提高不明顯,TN去除率升至68%左右。

      圖3 m(C)∶m(N)對MBR系統(tǒng)TN去除率的影響

      綜上所述,有機(jī)碳源對好氧反硝化過程發(fā)揮著重要作用,且m(C)∶m(N)越大反硝化效果越好。這是因?yàn)椋撼渥愕奶荚茨軌驗(yàn)槲⑸锾峁┳銐虻哪芰?,使反硝化作用更徹底;同時(shí),硝酸鹽還原酶表達(dá)基因調(diào)控蛋白FNR對周圍電子供體和受體變化敏感,相對較高的m(C)∶m(N)激活了好氧反硝化菌相關(guān)反硝化基因的表達(dá)[19];而低m(C)∶m(N)時(shí),碳源快速消耗,碳源的不足造成反硝化過程受阻。

      2.4 好氧反硝化菌群的鑒定結(jié)果

      MBR系統(tǒng)經(jīng)長期馴化后,活性污泥經(jīng)分離純化得到11株好氧反硝化性能較好的細(xì)菌,利用基因庫比對11株好氧反硝化細(xì)菌的16S rRNA基因序列,其中,有11個(gè)與已知物種相近的不同序列,且與已知物種序列的相似性達(dá)到98%以上,它們屬于變形菌門(Proteobacteria),分屬于不動(dòng)桿菌屬(Acinetobacter sp.)、叢毛單胞菌屬(Comamonas sp.)、氣單胞菌屬(Aeromonas sp.)、假單胞菌屬(Pseudomonas sp.)和噬氫菌屬(Hydrogenophaga sp.)。本實(shí)驗(yàn)11條16S rRNA基因序列的GenBank登錄號為KF984303~KF984313。

      11株細(xì)菌中,總脫氮率在60%以上的有8株。而一般微生物脫氮的最佳效果也僅為30%(總脫氮率),由此可見,從系統(tǒng)中分離出的好氧反硝化菌具有較好的好氧反硝化性能[20-21]。

      李安峰等[7]的研究結(jié)果表明,在SBR和MBR系統(tǒng)中分離出的高性能好氧反硝化菌屬變形菌門,這與本研究的結(jié)果相符。這些好氧反硝化菌在屬和種水平上表現(xiàn)出豐富的多樣性,它們的存在使得MBR系統(tǒng)好氧反硝化效果得以維持和穩(wěn)定。同時(shí),不同系統(tǒng)好氧反硝化菌群落結(jié)構(gòu)的差異性也為系統(tǒng)好氧反硝化提供了菌株資源。

      3 結(jié)論

      a)在DO為2.0~3.0 mg/L、m(C)∶m(N)為8∶1的條件下,MBR系統(tǒng)好氧反硝化效果較好,COD、氨氮、TN的去除率分別達(dá)到90%,90%,62%左右。

      b)通過對系統(tǒng)活性污泥中好氧反硝化菌的分離和鑒定,得到11株好氧反硝化性能較好的好氧反硝化菌,它們屬于變形菌門,分屬于不動(dòng)桿菌屬、叢毛單胞菌屬、氣單胞菌屬、假單胞菌屬和噬氫菌屬。

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      (編輯 魏京華)

      Aerobic Denitrification Effect of MBR and Identification of Aerobic Denitrlfier

      Li Xiaolou
      (Architecture and Environmental Engineering Department,Sichuan Vocational and Technical College,Suining Sichuan 629000,China)

      Aaerobic denitrlf i ers were cultivated and enriched in MBR system by the method of intermittent aeration. The aerobic denitrif i cation effect of MBR and the affecting factors were studied,and the aerobic denitrlf i ers were separated and identif i ed. The experimental results show that: When DO is 2.0-3.0 mg/L and m(C)∶m(N) is 8∶1,the aerobic denitrif i cation effect of MBR system is good,and the removal rates of COD,NH4+-N and TN are about 90%,90% and 62% respectively;11 strains of aerobic denitrlf i erwith good aerobic denitrif i cation capability are isolated from the MBR activated sludge,which belong to Proteobacteria and are Acinetobacter sp.,Comamonas sp.,Aeromonas sp.,Pseudomonas sp. and Hydrogenophaga sp.,respectively.

      biological denitrif i cation;membrane bio-reactor;aerobic denitrlf i er;strain identif i cation

      X703

      A

      1006-1878(2015)04-0339-05

      2015 - 03 - 20;

      2015 - 06 - 03。

      李曉樓(1974—),男,四川省遂寧市人,碩士,副教授,電話 15244943011,電郵 lixiaolou_1234@163.com。

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