香菇主要育種技術(shù)研究進展

趙 妍， 林 鋒, 2， 宋春艷， 譚 琦， 尚曉冬， 陳明杰， 2

(1. 上海市農(nóng)業(yè)科學院食用菌研究所 上海市農(nóng)業(yè)遺傳育種重點開放實驗室 農(nóng)業(yè)部南方食用菌資源利用重點實驗室 國家食用菌工程技術(shù)研究中心， 上海 201403; 2. 上海海洋大學食品學院，上海 201306)

香菇主要育種技術(shù)研究進展

趙 妍1， 林 鋒1, 2， 宋春艷1， 譚 琦1， 尚曉冬1， 陳明杰1， 2

(1. 上海市農(nóng)業(yè)科學院食用菌研究所 上海市農(nóng)業(yè)遺傳育種重點開放實驗室 農(nóng)業(yè)部南方食用菌資源利用重點實驗室 國家食用菌工程技術(shù)研究中心， 上海 201403; 2. 上海海洋大學食品學院，上海 201306)

香菇是僅次于雙孢蘑菇的世界第二大類食用菌，在中國食用菌產(chǎn)業(yè)中占有舉足輕重的地位。綜述了香菇的主要育種技術(shù)及其應用研究進展，包括人工選擇育種、雜交育種、誘變育種、原生質(zhì)體融合育種、基因工程育種以及分子標記輔助育種等，并針對當前香菇產(chǎn)業(yè)發(fā)展需求，對香菇育種今后的發(fā)展方向進行了展望。

香菇; 育種技術(shù); 育種趨勢

香菇[Lentinulaedodes(Berk.) Sing.] 又名香信、冬菇，其味道鮮美、營養(yǎng)豐富，含有較高的蛋白質(zhì)、氨基酸、維生素以及礦質(zhì)元素，素有山珍、菇中之王等美稱[1]，具有增強免疫力、抗腫瘤、降血壓、降血脂、保肝護肝等藥用功效。在1997年，中國香菇產(chǎn)量已達到115.2萬噸，占世界香菇總產(chǎn)量的87.2%，成為世界上最大的香菇生產(chǎn)國、出口國及消費國[2]，此后中國香菇產(chǎn)量逐年增加，據(jù)中國食用菌協(xié)會統(tǒng)計到2013年其總產(chǎn)量上升至635萬噸。香菇的育種技術(shù)亦日趨成熟，目前主要的育種技術(shù)包括：人工選擇育種、雜交育種、誘變育種、原生質(zhì)體融合育種、基因工程育種以及分子標記輔助育種等，借助這些育種技術(shù)人們已獲得了一批在生產(chǎn)上具有應用價值的香菇新品種。

1 人工選擇育種

人工選擇育種即采用人工方法定向選擇并不斷積累自然條件下發(fā)生的有益變異，最終獲得生產(chǎn)上所需要的新品種。人工選擇育種是食用菌發(fā)展初期選育優(yōu)良品種簡單而有效的方法之一，是各種育種方法的基礎(chǔ)。自然條件下香菇不同極性的孢子相互接觸后會產(chǎn)生多種基因重組，為香菇育種提供了最初的原始材料，根據(jù)育種目的來挑選符合要求的香菇菌株。例如以溫度為選種目標時，應到相應的緯度或海拔地區(qū)選種[1]。選種后通過組織分離獲得純種，然后經(jīng)栽培試驗驗證后進行示范推廣。優(yōu)良香菇品種“廣香5號”、“廣香7號”、“廣香9號”、“241”、“8210”等都是通過人工選擇育種方法獲得的[3]。值得一提的是，楊菁與黃大斌[4]從印度尼西亞引進熱帶地區(qū)栽培的香菇品種，進行馴化栽培試驗后，得到了屬性良好、出菇率高、抗逆性強的菌株，對解決香菇夏季高溫栽培問題，保證周年有鮮香菇供應具有重要的應用價值。

2 雜交育種

雜交育種是遺傳物質(zhì)在細胞水平上的重組，建立在雙親性狀優(yōu)勢互補的基礎(chǔ)上，作為目前香菇新品種選育中最重要、最有效的技術(shù)手段，為中國香菇產(chǎn)業(yè)的迅猛發(fā)展和躍居世界領(lǐng)先水平做出了卓越的貢獻[5]。Elliott[6]認為只基于單個孢子、多個孢子甚至是組織分離的品種選育雖然可以在短時間內(nèi)獲得進展，但是效果不可能像人工雜交方法那么有效，他還發(fā)現(xiàn)可育菌株交配的雜交結(jié)果不容易檢出，最好的方法是選用不育菌株進行雜交。在香菇雜交育種中，應用最廣泛的是單單雜交與雙單雜交兩種育種手段。

單單雜交是指從子實體中收集單孢或者通過原生質(zhì)體單核化獲得單核菌絲，將不同交配型的單核菌絲進行對峙培養(yǎng)，挑取具有鎖狀聯(lián)合的雙核體作為雜交后代，通過栽培試驗驗證，篩選出符合生產(chǎn)目標的優(yōu)良雜交子。借助單單雜交手段，福建省三明真菌研究所蔡衍山與黃秀治[7]選育出木屑袋栽香菇優(yōu)良菌株“Cr-20”和“Cr-62”。張善財?shù)萚8]以7個親本的單孢萌發(fā)菌絲體進行雜交組合，共進行了1212個配對，經(jīng)過5年的出菇試驗，最終培育出適合北方氣候特點的高產(chǎn)優(yōu)良菌株“1363”。陳世通等[9]以香菇栽培品種“大山18”和云南野生香菇“11-1”為親本，將孢子萌發(fā)的單核菌絲體進行隨機配對雜交，并利用ISSR分子標記驗證了最終獲得的45個雜交菌株是真正的雜合子。譚琦等[10]以香菇野生種“0426”和栽培種“Le1”為親本，利用原生質(zhì)體單核化技術(shù)，通過再生得到單核體菌絲，由兩親本的單核體菌絲進行香菇單單雜交育種，經(jīng)過栽培出菇試驗，最終培育出香菇新品種“申香8號”。雙單雜交則將需要改良菌株的原生質(zhì)體單核體作為受體，以能提供改良菌種所需性狀的雙核菌株為供體，進行非對稱雜交。該育種方法具有減少雜交后代篩選工作量和縮短育種時間的優(yōu)點，后代的表型則更趨向于受體。譚琦等[11]利用原生質(zhì)體單核化技術(shù)獲得香菇栽培種“26”的原生質(zhì)體單核體，以其為受體，選用栽培種“蘇香”為供體，通過雙單雜交，選育出“申香10號”。宋春艷等[12]利用原生質(zhì)體單核化技術(shù)取得香菇菌株“939”和“135”的單核體，通過單單雜交和雙單雜交成功培育出香菇新品種“申香16號”。這些雜交香菇新品種由于具有優(yōu)質(zhì)、高產(chǎn)、抗逆性強、栽培適應性廣等特點，已陸續(xù)在中國香菇主產(chǎn)區(qū)應用，部分已成為香菇主栽品種。

3 誘變育種

誘變育種是利用物理或化學方法，使香菇遺傳物質(zhì)發(fā)生改變，引起遺傳性狀發(fā)生突變，并篩選出具有所需優(yōu)良性狀突變株的育種方法。常用的物理誘變劑包括紫外線、60Co-γ、激光、X射線等，常用的化學誘變劑有亞硝酸、亞硝酸胍、氮芥、硫酸二乙酯等。誘變育種具有速度快、收效顯著、方法簡便等優(yōu)點，在科學實驗和實際生產(chǎn)上已得到廣泛應用。王澄澈等[13]將香菇栽培菌株原生質(zhì)體經(jīng)紫外線誘變后得到105株再生菌株，分別與親本菌株的菌絲生長速度、產(chǎn)量及出菇期進行比較，部分再生菌株獲得了早熟、高產(chǎn)的優(yōu)良特性；經(jīng)繼代培養(yǎng)證明，這些再生菌株獲得的優(yōu)良特性穩(wěn)定。邵偉等[14]也利用紫外線誘變香菇的原生質(zhì)體，經(jīng)篩選后獲得1株富硒菌株，并且該菌株富硒性狀能夠穩(wěn)定遺傳，栽培試驗發(fā)現(xiàn)其子實體硒含量高達38.64 μg/g。汪昭月等[15]對香菇“7402”與“79027”進行物理、化學誘變處理，并將得到的誘變菌株進行出菇栽培和生化測定，發(fā)現(xiàn)這些誘變菌株的酯酶、過氧化物同工酶、多酚氧化酶活性都發(fā)生了變化，表明編碼這些蛋白的基因位點發(fā)生了改變。竇會娟等[16]利用60Co-γ射線對香菇原生質(zhì)體進行誘變，獲得多糖含量高產(chǎn)菌株，突變菌株的多糖含量比出發(fā)菌株提高了20.6%。

4 原生質(zhì)體融合育種

原生質(zhì)體融合是指脫壁后不同遺傳類型的香菇原生質(zhì)體，在融合劑的誘導下發(fā)生融合，最終達到部分或整套基因組的交換與重組，進而產(chǎn)生香菇新品種的過程。原生質(zhì)體融合技術(shù)應用于香菇育種后發(fā)展迅速且日趨成熟，先后有香菇種內(nèi)融合、種間融合及屬間融合的報道。邢振楠等[17]以香菇商業(yè)栽培菌株“135”與“396”為親本進行種內(nèi)原生體融合，將酯酶同工酶作為遺傳標記，選育出了適宜小興安嶺氣候條件的香菇新菌株。上海市農(nóng)業(yè)科學院食用菌研究所的育種者們將香菇“8001”和虎皮香菇“223”進行種間原生質(zhì)體融合，得到32個種間融合子，經(jīng)培養(yǎng)都能形成原基并發(fā)育成子實體[18]。楊土鳳等[19]對平菇和香菇進行屬間原生質(zhì)體融合，并研究了融合新菌株的生物學特性，發(fā)現(xiàn)融合新菌株的菌絲生長速度以及木質(zhì)素酶、纖維素酶活力都得到顯著提高。

5 基因工程育種

基因工程是在基因水平上進行遺傳操作實現(xiàn)菌種改良，借助人為方法從某一供體生物中提取所需目的基因，在離體條件下用適當?shù)南拗菩院怂醿?nèi)切酶切割，將其與載體連接一并導入受體細胞中進行復制與表達，從而達到選育新品種的目的[20]。目的基因的獲取是基因工程育種的首要條件。目前香菇中有許多基因已被克隆，如疏水蛋白基因Le.hyd1、Le.hyd2[21]、纖維素酶基因cel6B[22]、線粒體中間肽酶基因le-mip[23]及部分與子實體生長發(fā)育相關(guān)的基因[24-26]，而香菇全基因組框架圖的構(gòu)建使得目的基因的獲取時間大幅度縮短[27]，為香菇基因工程育種的發(fā)展奠定了堅實的基礎(chǔ)。遺傳轉(zhuǎn)化是香菇基因工程育種的重要環(huán)節(jié)。目前香菇上常用的遺傳轉(zhuǎn)化方法有PEG法、電激法、農(nóng)桿菌介導法、限制酶切介導法等。孫麗等[28]利用PEG法實現(xiàn)表達載體p301-bG1(含有香菇三磷酸甘油醛脫氫酶啟動子驅(qū)動下的gus和除草劑抗藥性基因)對香菇原生質(zhì)體的轉(zhuǎn)化，并在含40 μg/mL除草劑的CYM再生平板上，得到了抗除草劑及含有GUS活性的轉(zhuǎn)化菌株。Kuo等[29]以香菇孢子和菌絲體為試驗材料，采用電激法將含有g(shù)pd啟動子和gus的表達載體成功轉(zhuǎn)化香菇，轉(zhuǎn)化效率為每微克DNA可獲得30～150個轉(zhuǎn)化子。喻晶晶[30]和喻義贛[31]分別以農(nóng)桿菌為介導，構(gòu)建了香菇遺傳轉(zhuǎn)化體系。關(guān)于香菇限制酶切介導法的遺傳轉(zhuǎn)化體系研究也較多，Irie等[32]采用該方法后，使突變基因在香菇中的轉(zhuǎn)化效率提高了2倍左右；Hirano等[33]運用限制酶切介導法，以香菇內(nèi)源gpd為啟動子，成功地將hph轉(zhuǎn)入并實現(xiàn)表達。

6 分子標記輔助育種

分子標記技術(shù)是通過檢測生物個體在基因或基因型上的變異來反映生物個體間的差異[34]。RAPD(Random amplified polymolphic DNA)、RFLP(Restriction fragment length polymorphism)、ISSR(Inter simple sequence repeat)、SRAP(Sequence-related amplified polymorphism)、AFLP(Amplified fragment length polymorphism)、SCAR(Sequence-characterized amplified regions)等是食用菌遺傳育種研究中最常用的標記方法，廣泛用于遺傳多樣性與親緣關(guān)系分析、雜交親本選擇與雜交子鑒定、功能基因克隆、遺傳圖譜構(gòu)建與農(nóng)藝性狀QTL定位等方面。Liu等[35]將特異的RAPD、ISSR、SRAP條帶轉(zhuǎn)化為SCAR標記，用于評價24株商業(yè)栽培香菇菌株的遺傳多樣性，結(jié)果表明這些菌株的遺傳差異較小，建議在進行育種時應引入野生香菇種質(zhì)。隨著分子生物學研究的深入開展，SSR(Simple sequence repeat)、SNP(Single nucleotide polymorphism)、TRAP(Target region amplified polymorphism)、IRAP(Inter-retrotransposon amplified polymorphism)、REMAP(Retrotransposon-microsatellite amplified polymorphism)等新型分子標記技術(shù)逐漸被開發(fā)應用。在香菇野生種質(zhì)資源和栽培種質(zhì)資源的遺傳多樣性研究方面，肖揚在開發(fā)SSR、TRAP、IRAP、REMAP標記引物的基礎(chǔ)上，評價了這些分子標記在香菇種質(zhì)資源遺傳多樣性研究中的適用性，為進一步利用香菇種質(zhì)資源選育優(yōu)良品種奠定了基礎(chǔ)[36-37]。同時在香菇L135菌株全基因組測序完成的基礎(chǔ)上，研究者們利用新開發(fā)的200對SSR標記，對25份經(jīng)國審認定的香菇商業(yè)菌株進行了遺傳多樣性分析，并構(gòu)建了多位點SSR指紋圖譜[38]。由于香菇屬于典型的四極性異宗結(jié)合蕈菌，A、B兩對交配型因子相互協(xié)同，對交配、結(jié)實等關(guān)鍵發(fā)育過程的遺傳調(diào)控具有決定性作用，因此研究者做了大量的相關(guān)工作。最近Au等[27]與Wu等[39]分別研究了香菇A交配型位點與B交配型位點的基因及其結(jié)構(gòu)，為進一步開發(fā)分子標記輔助香菇育種奠定了理論基礎(chǔ)。

7 展望

香菇在中國栽培歷史悠久，各種育種技術(shù)已經(jīng)日趨成熟?？v觀香菇常用的育種方法，筆者認為雜交育種雖然育種周期相對較長，但是其育種目標的預見性與方向性較好，在較長的一段時間里可能仍然是香菇育種的主要手段。值得一提的是，隨著香菇全基因組測序的完成與框架圖的組裝，各種分子標記與傳統(tǒng)香菇育種技術(shù)的結(jié)合，將會更好地為香菇遺傳育種工作服務。隨著科學技術(shù)與社會發(fā)展的不斷進步，香菇的產(chǎn)業(yè)發(fā)展也邁向了新的歷史時期。由于香菇屬中低溫型的食用菌，目前市場上夏季鮮香菇供不應求，經(jīng)濟效益較好。與此同時，由于傳統(tǒng)的香菇種植方式較為費時費力且生產(chǎn)效率低下，依靠科學技術(shù)、不受自然環(huán)境條件制約的香菇工廠化生產(chǎn)模式正日益興起。因此在新的香菇產(chǎn)業(yè)發(fā)展需求下，利用日益成熟的香菇育種技術(shù)，培育出具有自主知識產(chǎn)權(quán)的香菇新菌株/品種，將是中國香菇產(chǎn)業(yè)走向更大成功的關(guān)鍵所在。

[1]黃年來. 中國香菇栽培學[M]. 上海: 上?？茖W技術(shù)文獻出版社, 1994.

[2]張樹庭, 陳明杰. 香菇產(chǎn)業(yè)的過去現(xiàn)在和未來[J]. 食用菌, 2003(1): 2-4.

[3]吳學謙. 香菇生產(chǎn)全書[M]. 北京: 中國農(nóng)業(yè)出版社, 2005: 67-68.

[4]楊 菁, 黃大斌. 高溫香菇的引種馴化初報[J]. 中國食用菌, 2000, 19(5): 11-12.

[5]譚 琦, 潘迎捷, 黃為一. 中國香菇育種的發(fā)展歷程[J]. 食用菌學報, 2000, 7(4): 48-52.

[6]Elliott T J, Langton F A. Strain improvement in the cultivated mushroomAgaricusbisporus[J]. Euphytica, 1981, 30 (1): 175-182.

[7]蔡衍山, 黃秀治. 香菇新菌株Cr-20 Cr-62選育報告[J]. 中國食用菌, 2000, 19(4): 8-9.

[8]張善財, 曹玉謙, 遲 峰, 等. 香菇雜交新菌株1363號的選育研究[J]. 中國食用菌, 2002, 21(1): 40-41.

[9]陳世通, 白建波, 李夢杰, 等. 香菇單孢雜交及雜合子鑒定的研究[J]. 中國食用菌, 2013, 32(1): 45-46, 55.

[10]譚 琦, 潘迎捷, 汪昭月, 等. 用單核原生質(zhì)體雜交育成香菇新菌株申香8號[J]. 食用菌學報, 1999, 6(2): 1-4.

[11]譚 琦, 潘迎捷, 陳明杰, 等. 香菇申香10號菌種的選育與推廣[J]. 食用菌學報, 2007, 7(3): 6-10.

[12]宋春艷, 劉德云, 尚曉冬, 等. 香菇雜交新品種“申香16號”的選育及示范推廣[J]. 食用菌學報, 2010, 17(4): 11-14.

[13]王澄澈, 梁枝榮, 苗艷芳. 香菇原生質(zhì)體誘變育種初報[J]. 西北農(nóng)業(yè)大學學報， 2000, 28(3): 36-39.

[14]邵 偉, 樂超銀, 李 玲, 等. 富硒香菇菌種原生質(zhì)體誘變選育[J]. 食用菌, 2004(2): 12-13.

[15]汪昭月, 潘迎捷, 王曰英. 香菇育種中的誘變處理和生化分析[J]. 上海農(nóng)業(yè)學報, 1990, 6(1): 45-50.

[16]竇會娟, 李超敏, 李林珂. 原生質(zhì)體誘變篩選香菇多糖高產(chǎn)菌株[J]. 中國釀造, 2009, 203(2): 74-76.

[17]邢振楠, 臧海蓮, 李滇華, 等. 原生質(zhì)體融合技術(shù)選育香菇菌株[J]. 食用菌, 2012(4): 16-18.

[18]潘迎捷, 陳明杰, 汪昭月, 等. 香菇和虎皮香菇的種間原生質(zhì)體融合[J]. 上海農(nóng)業(yè)學報, 1992, 8(1): 9-12.

[19]楊土鳳, 王立洪, 楊 濤, 等. 平菇與香菇原生質(zhì)體融合新菌株的生物學特性研究[J]. 四川大學學報：自然科學版, 2010, 47(1): 202-206.

[20]付立忠, 吳學謙, 魏海龍, 等. 中國食用菌育種技術(shù)應用研究現(xiàn)狀與展望[J]. 食用菌學報, 2005, 12(3): 63-68.

[21]Ng W L, Ng T P, Kwan H S. Cloning and characterization of two hydrophobin genes differentially expressed during fruitbody development inLentinulaedodes[J]. FEMS Microbiology Letters, 2000, 185: 139-145.

[22]楊 婷, 裴雁曦, 王景雪. 香菇纖維素酶基因cel6B的克隆及表達[J]. 華北農(nóng)學報, 2011, 26(3): 42-46.

[23]張美彥, 鮑大鵬, 陳明杰, 等. 香菇編碼線粒體中間肽酶le-mip基因及其緊密連鎖基因的克隆[J]. 食用菌學報, 2009, 16(2): 21-25.

[24]Hiroaki S, Shinya K, Yuiehi S. The basidiomycetous mushroomLentinulaedodeswhite collar-2 homolog PHRB, a partner of putative blue-light photoreceptor PHRA, binds to a specific site in the promoter region of theL. edodes tyrosinase gene[J]. Fungal Genetics and Biology, 2009, 46(4): 333-341.

[25]Miyazaki Y, Kaneko S, Sunagawa M, et al. The fruiting-specificLe.flp1 gene, encoding a novel fungal fasciclin-like protein, of the basidiomycetous mushroomLentinulaedodes[J]. Current Genetics, 2007, 51(6): 367-375.

[26]Carol Y Y S, Queenie W L W, Grace S L, et al. Isolation and transcript analysis of two-component histidine kinase geneLe．nik1 in Shiitake mushroom,Lentinulaedodes[J]. Mycological Research, 2008, 112(1): 108-116.

[27]Au C H, Wong M C, Bao D, et al. The genetic structure of theAmating-type locus ofLentinulaedodes[J]. Gene, 2014, 535: 184-190.

[28]孫 麗, 許偉宏, 蔡華清, 等. PEG介導下香菇的轉(zhuǎn)化[J]. 植物學報, 2001, 43(10): 1089-1092.

[29]Kuo C Y, Huang C T. A reliable transformation method and heterologous expression of β-glucuronidase inLentinulaedodes[J]. Journal of Microbiological Methods, 2008, 72(2): 111-115.

[30]喻晶晶. 農(nóng)桿菌介導的香菇遺傳轉(zhuǎn)化體系構(gòu)建[D]. 武漢: 華中農(nóng)業(yè)大學, 2012.

[31]喻義贛. 香菇農(nóng)桿菌介導轉(zhuǎn)化條件優(yōu)化及BCA基因轉(zhuǎn)化研究[D]. 福州: 福建農(nóng)林大學, 2009.

[32]Irie T, Saito K, Honda Y, et al. Construction of a homologous selectable marker gene forLentinulaedodestransformation[J]. Biosci Biotechnol Biochem, 2003, 67(9): 2006-2009.

[33]Hirano T，Sato T，Yaegashi K．Efficient transformation of the edible basidiomyceteLentinusedodes with a vector using a glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase promoter to hygromycin B resistance[J]. Molecular and General Genetics, 2000, 263(6): 1047-1052.

[34]王印肖, 徐秀琴, 韓宏偉. 分子標記在品種鑒定中的應用及前景[J]. 河北林業(yè)科技, 2006, (增刊): 46-49.

[35]Liu J Y, Ying Z H, Liu F, et al. Evaluation of the use of SCAR markers for screening genetic diversity ofLentinulaedodesstrains [J]. Current Microbiology, 2012, 64(4): 317-325.

[36]肖 揚. 幾種新型分子標記技術(shù)在中國香菇種質(zhì)資源遺傳多樣性研究中的應用[D]. 武漢: 華中農(nóng)業(yè)大學, 2009.

[37]Xiao Y, Liu W, Dai Y H, et al. Using SSR markers to evaluate the genetic diversity ofLentinulaedodesnatural germplasm in China[J]. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 2010, 26(3): 527-536.

[38]張 丹, 宋春艷, 章爐軍, 等. 基于全基因組序列的香菇商業(yè)菌種SSR遺傳多樣性分析及多位點指紋圖譜構(gòu)建的研究[J]. 食用菌學報, 2014, 21(2): 1-8.

[39]Wu L, Peer A V, Song W, et al. Cloning of theLentinulaedodesBmating-type locus and identification of the genetic structure controllingBmating[J]. Gene, 2013, 531: 270-278.

Research progress on breeding techniques ofLentinulaedodes

ZHAO Yan1, LIN Feng1, 2, SONG Chun-yan1, TAN Qi1, SHANG Xiao-dong1, CHEN Ming-jie1， 2

(1. Institute of Edible Fungi, Shanghai Academy of Agricultural Sciences, Shanghai Key Laboratory of Agricultural Genetics and Breeding, Key Laboratory of Edible Fungi Resources and Utilization (South), Ministry of Agriculture, P. R. China, National Engineering Research Center of Edible Fungi, Shanghai 201403, China; 2. College of Food Science & Technology, Shanghai Ocean University, Shanghai 201306, China)

Lentinulaedodesis the second most cultivated edible fungus (followingAgaricusbisporus) in terms of total world production and plays an important role in mushroom industry in China. This review was focused on the breeding techniques ofLentinulaedodes, including selection of spontaneous mutation, domestication and breeding, isolation breeding of spores, cross breeding, mutation breeding, protoplast fusion, genetic engineering, and combination of molecular markers and traditional breeding techniques. Finally, prospects of breedingLentinulaedodeswere also discussed.

Lentinulaedodes; breeding techniques; breeding prospects

2014-09-15；

2014-10-22

國家食用菌產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系(No. CARS-24)

趙 妍，博士，助理研究員，主要從事食用菌遺傳育種與生理生化研究，E-mail: jiandan289@126.com；

陳明杰，博士，研究員，主要從事食用菌遺傳育種與功能基因研究，E-mail: mjchen@saas.sh.cn。

S646.12

B

2095-1736(2015)02-0092-04

doi∶10.3969/j.issn.2095-1736.2015.02.092