孫斌,高峻田,石亮,宋代輝,魏奉才(山東大學(xué)口腔醫(yī)學(xué)院,山東省口腔生物醫(yī)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,濟(jì)南500; 山東大學(xué)齊魯醫(yī)院,山東大學(xué)口腔醫(yī)學(xué)研究所)
缺血預(yù)處理對(duì)下頜下腺缺血再灌注損傷大鼠的保護(hù)作用
孫斌1,高峻田2,石亮2,宋代輝1,魏奉才2
(1山東大學(xué)口腔醫(yī)學(xué)院,山東省口腔生物醫(yī)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,濟(jì)南250012; 2山東大學(xué)齊魯醫(yī)院,山東大學(xué)口腔醫(yī)學(xué)研究所)
摘要:目的觀察缺血預(yù)處理(IPC)對(duì)下頜下腺缺血再灌注(I/R)損傷大鼠的保護(hù)作用,并探討其機(jī)制。方法將48只大鼠隨機(jī)分為模型組和觀察組各24只,均制作右側(cè)下頜下腺I(mǎi)/R損傷模型。觀察組在制模前行IPC,夾閉頜外動(dòng)脈下頜下腺供血支3 min,再灌注3 min,重復(fù)3次。以左側(cè)下頜下腺作為對(duì)照組。再灌注1、12、24、72 h,取6只大鼠檢測(cè)各組腺體分泌量、組織學(xué)變化、緊密連接結(jié)構(gòu)及M受體表達(dá)情況。結(jié)果對(duì)照組腺體分泌量、組織形態(tài)、緊密連接結(jié)構(gòu)及M受體表達(dá)情況均正常。I/R后1、12 h,模型組腺體分泌量明顯降低,觀察組稍有降低,24 h時(shí)兩組分泌量開(kāi)始增加,至72 h逐漸恢復(fù)正常。模型組腺實(shí)質(zhì)細(xì)胞萎縮,間質(zhì)水腫及炎癥浸潤(rùn),電鏡下超微結(jié)構(gòu)觀察顯示緊密連接結(jié)構(gòu)破壞,寬度降低,均在再灌注12 h后最為嚴(yán)重,觀察組部分腺體組織出現(xiàn)上述情況,且反應(yīng)較輕。模型組I/R后,M受體水平1、12 h下降明顯,觀察組稍有下降,72 h時(shí)逐漸恢復(fù)。結(jié)論IPC對(duì)下頜下腺I(mǎi)/R損傷大鼠具有保護(hù)作用,其機(jī)制與上調(diào)下頜下腺M(fèi)受體的表達(dá)、保護(hù)下頜下腺緊密連接結(jié)構(gòu)有關(guān)。
關(guān)鍵詞:缺血預(yù)處理;缺血再灌注;下頜下腺;下頜下腺移植;角膜干燥癥
重癥角膜干燥癥(干眼病)多采取血管化自體下頜下腺移植治療。研究顯示,缺血再灌注(I/R)損傷會(huì)導(dǎo)致下頜下腺分泌降低,而缺血預(yù)處理(IPC)對(duì)移植下頜下腺的分泌功能有一定保護(hù)作用[1]。為了探討IPC對(duì)下頜下腺I(mǎi)/R損傷大鼠的保護(hù)作用及其機(jī)制,2014年3~9月,我們進(jìn)行了如下研究。
1.1材料健康雄性Wistar大鼠48只,體質(zhì)量約200 g,由山東大學(xué)動(dòng)物中心提供。4,6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI,Sigma公司) ;冰凍切片機(jī);激光共聚焦顯微鏡(Leica,TCS,SP2) ;透射電子顯微鏡H-7000(Hitachi,Tokyo,日本)。
1.2模型制作及干預(yù)方法將大鼠隨機(jī)分為模型組和觀察組,各24只,均制作右側(cè)下頜下腺I(mǎi)/R損傷模型,以左側(cè)下頜下腺作為對(duì)照組。腹腔注射10%水合氯醛麻醉,頸部正中切口分離肌肉、筋膜,尋找下頜下腺血管、神經(jīng)及下頜下腺導(dǎo)管束,游離并保護(hù)舌神經(jīng)支配下頜下腺的分支,保留副交感神經(jīng)的支配作用。夾閉頜外動(dòng)脈下頜下腺供血支90 min后行再灌注恢復(fù)血流。觀察組于制模前行IPC,夾閉頜外動(dòng)脈下頜下腺供血支3 min,再灌注3 min,重復(fù)3次。
1.3相關(guān)指標(biāo)觀察
1.3.1下頜下腺分泌量于再灌注1、12、24、72 h各取6只大鼠,于麻醉狀態(tài)下分離損傷側(cè)及對(duì)照側(cè)下頜下腺導(dǎo)管至口底并切斷,于斷端處插入直徑約0.5 mm的聚乙烯塑料小管,行Schirmer試驗(yàn)測(cè)定下頜下腺分泌量,以5 min內(nèi)濾紙條(35 mm×5 mm)濕潤(rùn)長(zhǎng)度表示,測(cè)量3次取均值。
1.3.2下頜下腺組織形態(tài)①組織學(xué)形態(tài):測(cè)定下頜下腺分泌量后,游離大鼠雙側(cè)下頜下腺并摘除,各取部分組織用10%中性甲醛固定,水洗、脫水、透明、包埋后切成5 μm厚切片,HE染色后封固,于光學(xué)顯微鏡下觀察腺體組織學(xué)形態(tài)。②緊密連接結(jié)構(gòu):另取腺體組織塊約1 mm3,2.5%戊二醛固定,切片后用醋酸雙氧鈾及枸椽酸鉛染色,于透射電子顯微鏡下隨機(jī)選取10個(gè)視野,觀察下頜下腺腺體細(xì)胞間緊密連接超微結(jié)構(gòu),使用圖形測(cè)量軟件測(cè)量其寬度,取均值。
1.3.3下頜下腺組織M1、M3受體采用免疫熒光法檢測(cè)??筂1、M3受體(1∶100)免疫標(biāo)記組織切片,4℃孵育過(guò)夜。次日取出后室溫下復(fù)溫30 min,滴加熒光FITC標(biāo)記二抗(1∶50) 37℃孵育30 min,滴加DAPI(著染細(xì)胞核)孵育3 min,0.01 mmol/L PBS漂洗,封片,使用激光共聚焦顯微鏡觀察。M1、M3受體定位于腺泡細(xì)胞細(xì)胞膜與細(xì)胞質(zhì)中,免疫熒光標(biāo)記顯示綠色熒光,以綠色熒光信號(hào)強(qiáng)度來(lái)衡量其表達(dá)強(qiáng)弱。
1.4統(tǒng)計(jì)學(xué)方法采用SAS9.1.3統(tǒng)計(jì)軟件,計(jì)量資料以±s表示,多組間比較采用方差分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1三組下頜下腺分泌量對(duì)照組下頜下腺分泌量正常,各時(shí)間點(diǎn)均無(wú)明顯變化。I/R后1、12 h,模型組、觀察組腺體分泌量降低,模型組降低更為明顯著(P均<0.05) ; I/R后24 h兩組下頜下腺分泌量開(kāi)始增加; I/R后72 h兩組恢復(fù)正常。見(jiàn)表1。
表1 三組I/R各時(shí)間段下頜下腺分泌量比較(mm,±s)
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05;與模型組比較,△P<0.05。
組別 n 下頜下腺分泌量1 h 12 h 24 h 72 h觀察組 6 3.67±0.25*Δ3.00±0.18*Δ4.00±0.43 3.58±0.30模型組 6 1.75±0.21*1.92±0.24* 4.08±0.30 3.67±0.33對(duì)照組6 4.04±0.25 3.83±0.23 3.83±0.21 4.04±0.24
2.2三組下頜下腺組織形態(tài)學(xué)
2.2.1組織學(xué)形態(tài)對(duì)照組為正常腺泡及導(dǎo)管形態(tài)。I/R后1 h模型組腺體實(shí)質(zhì)細(xì)胞出現(xiàn)輕度萎縮,間質(zhì)水腫和充血,可見(jiàn)少量單核細(xì)胞;觀察組與對(duì)照組形態(tài)相近。I/R后12 h模型組腺泡細(xì)胞及導(dǎo)管細(xì)胞嚴(yán)重萎縮,組織水腫明顯,導(dǎo)管系統(tǒng)組織破壞,腺小葉及腺導(dǎo)管中炎癥反應(yīng)較輕,以早期中性粒細(xì)胞為主;觀察組少部分腺體組織出現(xiàn)模型組情況,但反應(yīng)較輕。I/R后24 h兩組均可見(jiàn)炎癥反應(yīng),以少量單核—巨噬細(xì)胞為主,組織水腫減輕。I/R后72 h兩組腺體逐漸恢復(fù),腺泡及導(dǎo)管形態(tài)恢復(fù)正常。
2.2.2緊密連接結(jié)構(gòu)對(duì)照組相鄰腺泡上皮細(xì)胞間靠近腺泡腔處存在完整、清晰的細(xì)胞間緊密連接。I/R后1 h,模型組相鄰腺泡上皮細(xì)胞間的緊密連接變模糊,結(jié)構(gòu)開(kāi)始崩塌,電子密度降低明顯,與對(duì)照組相比,細(xì)胞間緊密連接的寬度明顯減少(P<0.05),I/R后12 h更為明顯(P<0.01)。觀察組I/R后1、12 h緊密連接寬度減少明顯,但是在電鏡下結(jié)構(gòu)仍較清晰,并且在I/R 后12、24 h與模型組相比P<0.05。I/R后24 h觀察組與模型組細(xì)胞間緊密連接電子強(qiáng)度逐漸增加,至72 h兩組相鄰腺泡上皮細(xì)胞間緊密連接的超微結(jié)構(gòu)逐漸恢復(fù)成正常的索狀結(jié)構(gòu)。三組細(xì)胞緊密連接結(jié)構(gòu)寬度比較見(jiàn)表2。
表2 三組I/R各時(shí)間段緊密連接結(jié)構(gòu)寬度比較(nm,±s)
注:與對(duì)照組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05。
組別 n 緊密連接結(jié)構(gòu)寬度1 h 12 h 24 h 72 h觀察組 6 10.74±0.20*10.34±0.30* #12.80±0.22* #16.05±0.27模型組 6 9.64±0.16* 4.02±0.17* 8.66±0.26* 15.19±0.14*對(duì)照組 6 17.04±0.63 18.08±0.46 17.46±0.38 16.94±0.51
2.3三組M1、M3受體表達(dá)I/R后12 h,模型組M1、M3受體熒光信號(hào)信號(hào)較對(duì)照組明顯下降,觀察組熒光信號(hào)強(qiáng)度明顯高于模型組; I/R后24 h模型組與觀察組熒光信號(hào)開(kāi)始明顯升高,72 h時(shí)模型組與觀察組的M1、M3受體熒光信號(hào)強(qiáng)度逐漸接近對(duì)照組。
自體下頜下腺移植治療重癥干眼病需經(jīng)歷I/R的過(guò)程,I/R后血管內(nèi)皮細(xì)胞損傷,組織滲出增多,白細(xì)胞和巨噬細(xì)胞激活,導(dǎo)致多種趨化因子和細(xì)胞黏附分子大量生成、釋放,進(jìn)一步介導(dǎo)下頜下腺局部組織細(xì)胞的炎癥損傷。正常頜下腺的分泌主要由交感和副交感神經(jīng)調(diào)節(jié),其中主要由副交感神經(jīng)末梢釋放的乙酰膽堿(Ach)通過(guò)激活M受體來(lái)調(diào)控水和電解質(zhì)分泌。M1、M3受體主要參與腺體水和電解質(zhì)的分泌,維持并保護(hù)腺體的分泌功能[2,3]。研究表明,M受體及其信號(hào)通路在I/R引起的腦血管、心臟等疾病表達(dá)中均下調(diào),再灌注損傷的組織受到大量活性氧等自由基刺激而造成損害,IPC能有效緩解相應(yīng)組織損傷[4]。我們的前期研究證實(shí),家兔下頜下腺移植早期M1與M3受體mRNA與蛋白表達(dá)及其信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路均下調(diào)。對(duì)M受體下游通路進(jìn)一步研究顯示,自由基清除劑金屬蛋白酶抑制劑(MPI)可阻斷Ach的保護(hù)作用,證實(shí)適量的活性氧是Ach作用于M受體預(yù)處理保護(hù)機(jī)制的第二信使[5]。唾液是通過(guò)旁細(xì)胞途徑形成的,研究顯示旁細(xì)胞途徑是體外灌注的家兔和大鼠下頜下腺水轉(zhuǎn)運(yùn)的主要方式[6]。旁細(xì)胞途徑由相鄰細(xì)胞之間的連接復(fù)合體和細(xì)胞間隙組成,緊密連接位于連接復(fù)合體的最頂端,是物質(zhì)通過(guò)旁細(xì)胞通路轉(zhuǎn)運(yùn)的限制因素,具有屏障和柵欄的功能[7]。緊密連接的動(dòng)態(tài)調(diào)節(jié)是組織器官許多病理生理變化的基礎(chǔ),如I/R損傷。大量研究發(fā)現(xiàn),在大腦、肺、腸道等器官發(fā)生I/R,其相應(yīng)細(xì)胞間的緊密連接都會(huì)發(fā)生不同程度的損傷[8,9]。本研究觀察了I/R與IPC后大鼠下頜下腺組織在電鏡下緊密連接的超微結(jié)構(gòu)及緊密連接的寬度,結(jié)果顯示,I/R 后1、12 h,I/R大鼠下頜下腺腺泡細(xì)胞間的緊密連接結(jié)構(gòu)崩塌,緊密連接寬度降低,而IPC能相對(duì)改善緊密連接結(jié)構(gòu)、寬度。提示緊密連接蛋白結(jié)構(gòu)的改變參與了腺體的前期分泌降低,IPC可能通過(guò)調(diào)控M受體維持緊密連接蛋白固有結(jié)構(gòu)從而起到保護(hù)作用,從而改善下頜下腺的分泌功能。
本研究發(fā)現(xiàn),模型組大鼠下頜下腺在保留神經(jīng)支配的情況下行I/R 1~12 h,腺體的分泌功能較正常側(cè)明顯降低,顯微鏡下觀察到腺泡細(xì)胞與導(dǎo)管細(xì)胞萎縮,間質(zhì)組織水腫及炎癥反應(yīng)明顯等組織學(xué)改變,這與I/R后腺體的分泌功能變化相符,證實(shí)I/R后的損傷—應(yīng)激反應(yīng)是移植下頜下腺早期分泌功能損傷低下的重要原因;而觀察組腺體組織損傷明顯減輕,I/R 12 h后下頜下腺的分泌量明顯提高。證明IPC能減輕I/R引起的早期下頜下腺損傷,改善早期移植下頜下腺的分泌功能。
綜上所述,I/R可能導(dǎo)致大鼠下頜下腺M(fèi)受體表達(dá)下降,引起下頜下腺組織損傷,從而影響下頜下腺的分泌功能;而IPC可有效改善上述變化,對(duì)下頜下腺I(mǎi)/R損傷具有保護(hù)作用。其機(jī)制與上調(diào)下頜下腺M(fèi)受體表達(dá)、保護(hù)下頜下腺緊密連接結(jié)構(gòu)有關(guān)。
參考文獻(xiàn):
[1]Yang NY,Shi L,Zhang Y,et al.Ischemic preconditioning reduces transplanted submandibular gland injury[J].J Surg Res,2013,179(1) : 265-273.
[2]Tobin G,Giglio D,Gotrick B.Studies of muscarinic receptor subtypes in salivary gland function in anaesthetized rats[J].Auton Neurosci,2002,100(1-2) : 1-9.
[3]Tobin G,Ryberg AT,Gentle S,et al.Distribution and function of muscarinic receptor subtypes in the ovine submandibular gland [J].J Appl Physiol (1985),2006,100(4) : 1215-1223.
[4]Hoff EI,Steinbusch HW,van Oostenbrugge RJ,et al.Alterations in the cholinergic system after frontal cortical infarction in rat brain: pharmacological magnetic resonance imaging of muscarinic receptor responsiveness and stereological analysis of cholinergic forebrain neurons[J].Neurobiol Dis,2011,43(3) : 625-634.
[5]Krieg T,Cui L,Qin Q,et al.Mitochondrial ROS generation following acetylcholine-induced EGF receptor transactivation requires metalloproteinase cleavage of proHB-EGF[J].J Mol Cell Cardiol,2004,36(3) : 435-443.
[6]Murakami M,Shachar-Hill B,Steward MC,et al.The paracellular component of water flow in the rat submandibular salivary gland [J].J Physiol,2001,537(Pt 3) : 899-906.
[7]Shi L,Cong X,Zhang Y,et al.Carbachol improves secretion in the early phase after rabbit submandibular gland transplantation [J].Oral Dis,2010,16(4) : 351-359.
[8]Kesik V,Guven A,Vurucu S,et al.Melatonin and 1400 W ameliorate both intestinal and remote organ injury following mesenteric ischemia/reperfusion[J].J Surg Res,2009,157(1) : 97-105.
[9]Okazaki M,Kreisel F,Richardson SB,et al.Sphingosine 1-phosphate inhibits ischemia reperfusion injury following experimental lung transplantation[J].Am J Transplant,2007,7(4) : 751-758.
Protective effect and mechanism of ischemic preconditioning on rat submandibular gland after ischemia-reperfusion injury
SUN bin1,GAO Jun-tian,SHI Liang,SONG Dai-hui,WEI Feng-cai
(1 School of Stomatology,Shandong University,Shandong Provincial Key Laboratory of Oral Biomedicine,Jinan 250012,China)
Abstract:Objective To observe the protective effect of ischemic preconditioning (IPC) on the rat submandibular gland after ischemia-reperfusion (I/R) injury and to investigate the mechanism.Methods Forty-eight healthy male Wistar rats were randomly divided into the observation group and model group,24 in each group.The right glands of rats in both groups received the I/R injury to make the I/R injury models.The glands of the observation group were obtained by 3 min of ischemia,followed by 3 min of reperfusion,and we performed three times before modeling.The left glands were taken as the control group.Salivary secretion,histological changes,alternations of tight junctions (TJs) and mACh-receptor levels in 6 rats were detected at different time points (1 h,12 h,24 h and 72 h after I/R).Results In the control group,the salivary secretion,histological changes,alternations of tight junctions (TJs) and mACh-receptor expression levels were all normal.In the model group,the secretion of the glands significantly decreased after I/R 1 h and 12 h,and it showed a slightly lower in the observation group.The secretion of both groups gradually increased at 24 h and got back to normal at 72 h after reperfusion.Cellular atrophy,inflammatory cells infiltration,tissue edema,the collapse and reduced widths of TJs were observed especially after reperfusion for 12 h in the model group,a little part showed the status and the reaction was lighter in the observation group.The level of mACh-receptor exhibited the same tendency,and lower mAChreceptor levels at 12 h after reperfusion were observed in the model group; while in the observation group,it gradually returned to normal.ConclusionIPC has the protective effect on the rat submandibular gland after I/R injury,whose mechanism may be related with the down-regulation of mACh-receptor and protection of TJs.
Key words:ischemic preconditioning; ischemia-reperfusion; submandibular glands; transplantation of submandibular glands; keratoconjunctivitis sicca
(收稿日期:2014-12-04)
通信作者:宋代輝
基金項(xiàng)目:山東省自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(ZR2010HM037)。
文章編號(hào):1002-266X(2015)18-0027-03
文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A
中圖分類(lèi)號(hào):R322.2
doi:10.3969/j.issn.1002-266X.2015.18.009