常莎莎, 李可欣, 羅 月, 李文攀, 陳大為
(沈陽藥科大學 藥學院,遼寧 沈陽 110016)
層層組裝法制備仿生exosomes的研究
常莎莎, 李可欣, 羅 月, 李文攀, 陳大為*
(沈陽藥科大學 藥學院,遼寧 沈陽 110016)
目的優(yōu)化包載異硫氰酸熒光素標記的牛血清白蛋白(BSA-FITC)仿生exosomes 的處方工藝及制備。方法采用BSA-FITC作為模型蛋白,以包封率為考察指標,借助三因素三水平星點設(shè)計-效應面法對外層DOPE與內(nèi)層PC質(zhì)量比、組裝溫度、外層DOPE與DC-Chol質(zhì)量比進行優(yōu)化,篩選最佳處方,確定層層組裝法制備對蛋白質(zhì)多肽類藥物具有較高包封率的仿生exosomes,并對其制劑學性質(zhì)進行考察。結(jié)果優(yōu)化處方為:外層DOPE與內(nèi)層PC質(zhì)量比為2.20∶1,內(nèi)外層混合后旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)溫度為58 ℃,外層DOPE與DC-Chol質(zhì)量比為4.28∶1,所制得仿生exosomes的平均粒徑(62.7±6.33) nm,多分散系數(shù)(P.I.)為0.286,包封率為(91.02±0.17)%。結(jié)論星點設(shè)計-效應面法所建立的模型預測性良好,成功實現(xiàn)了對仿生exosomes的處方優(yōu)化,層層組裝法成功制備了對蛋白質(zhì)多肽類藥物具有較高包封率且粒徑較小的仿生exosomes。
藥劑學;仿生exosomes;層層組裝法;異硫氰酸熒光素-牛血清白蛋白;星點設(shè)計
Exosomes起源于內(nèi)吞體系統(tǒng),并被排出細胞外,是一類直徑為40~100 nm的由脂質(zhì)雙層膜包裹的球體結(jié)構(gòu)[1-2],含有許多與來源細胞功能相關(guān)的蛋白質(zhì)或肽類[3]。由于其結(jié)構(gòu)與脂質(zhì)體類似,提示可以用藥劑學的理論和手段人工組建具有exosomes結(jié)構(gòu)性及功能性的納米仿生exosomes作為細胞間傳遞信息的新型載體[4]。
蛋白質(zhì)多肽類藥物因其具有良好的水溶性,通常采用逆向蒸發(fā)法制備,但在完成有機溶劑蒸發(fā)的過程中,容易造成藥物的泄露,使包封率降低。本實驗中,作者借助層層組裝的理念,選擇異硫氰酸熒光素標記的牛血清白蛋白(BSA-FITC)為模型蛋白,采用層層組裝法制備納米仿生exosomes,通過靈敏度較高的熒光檢測法測定包封率,并依靠三因素三水平的星點設(shè)計獲得了最優(yōu)處方,這為仿生exosomes的體外構(gòu)建奠定了基礎(chǔ)。
SHZ-D循環(huán)水式真空泵、DF-101S集熱式恒溫加熱磁力攪拌器(鞏義市英峪華儀器廠),旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀( 上海亞榮生化儀器廠) ,JY92-2D超聲波細胞粉碎機( 寧波新芝科器研究所) , WX80A渦旋混合器(上海精科實業(yè)有限公司),F(xiàn)A1104電子天平(上海民橋精密科學儀器有限公司),Nicomp-380激光粒度測定儀(美國Particle Sizing Systems公司), TECAN SPECTRA酶標儀(德國Wetzlar公司)。
注射用大豆磷脂(藥用,PC的質(zhì)量分數(shù)含量>95%,上海泰偉藥業(yè)有限公司),二油酰磷脂酰乙醇胺(DOPE,上海艾韋特醫(yī)藥科技有限公司),O-[(N,N-二甲基氨基乙基)-氨基甲?;鵠膽固醇鹽酸鹽(DC-Chol,愛必信生物科技有限公司) ,異硫氰酸熒光素-牛血清白蛋白(BSA-FITC,美國Sigma公司),蓖麻油聚氧乙烯35醚(Cremophor EL,德國BASF公司),瓊脂糖凝膠 4B(Sepharose 4B,北京鼎國昌盛生物技術(shù)有限責任公司),其他試劑(分析純,市售)。
2.1 層層組裝法制備仿生exosomes
仿生exosomes與納米脂質(zhì)體結(jié)構(gòu)相似,但粒徑只有40~100 nm,因此,為了獲得小粒徑的制劑,本實驗將微乳理念引入到仿生exosomes的制備中,分別制備了內(nèi)層及外層脂質(zhì)層,并最終制得了仿生exosomes。
2.1.1 內(nèi)層脂質(zhì)層的制備
采用偽三元相圖優(yōu)化油相、水相及乳化劑的比例。以Cremophor EL和PC為混合乳化劑,按照Km(mCremophorEL∶mPC)為 9∶1、8∶2、7∶3、6∶4、5∶5、4∶6、3∶7、2∶8、1∶9混合均勻,乙醚為油相,在磁力攪拌下逐滴加入 BSA-FITC,觀察體系由濁至清現(xiàn)象,記錄臨界點時的各組分質(zhì)量分數(shù)。由圖1(A)可見,在Km=3∶7和4∶6附近可得微乳區(qū)。再分別以Km為3∶7和4∶6為1個頂點,乙醚和BSA-FITC為另外2個頂點,得到乳化劑-油相-水相的三元相圖(圖1B、C),優(yōu)選Km為3∶7。結(jié)果表明,磷脂-蓖麻油聚氧乙烯35醚-乙醚-水所制成的油包水型微乳的最佳處方質(zhì)量比為4.2∶1.8∶6∶1。精密稱取PC 10.0 mg和Cremophor EL 4.28 mg,加入乙醚20.0 mL使之溶解,25 ℃于磁力攪拌下滴加BSA-FITC 2.3 mL,制備W/O型內(nèi)層。
Fig. 1 The pseudo-ternary phase diagram of Cremophor EL/PC/water phase (A), mCremophorEL∶mPC=4∶6(B) and mCremophorEL∶mPC=3∶7(C)圖1 EL-PC-水相(A)、mCremophorEL∶mPC=4∶6(B)和mCremophorEL∶mPC=3∶7 (C)的偽三元相圖
2.1.2 仿生exosomes的制備
精密稱取一定比例的DOPE與DC-Chol至50 mL圓底燒瓶中,加入乙醚5.0 mL使之溶解,5 ℃減壓成膜后,加入蒸餾水和乙醇體積比為2∶1的混合溶劑1.5 mL,于60 ℃水浴下水化,冰浴下200 W探頭超聲3 min,作為外層脂質(zhì)層[5-6]。將外層加入“2.1.1”條下內(nèi)層乙醚中,渦旋混合5 min后,一定溫度下減壓旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)除去有機溶劑,冰浴下200 W探頭超聲3 min,制得包載BSA-FITC的仿生exosomes,4 ℃密封保存。
2.2 仿生exosomes包封率的測定
2.2.1 標準曲線的繪制
取適量BSA-FITC用pH值7.4的磷酸鹽緩沖液(PBS)溶解,并分別稀釋成質(zhì)量濃度分別為5、10、50、125和250 mg·L-1的系列溶液。分別取上述溶液200 μL加至黑色96孔熒光板中,用酶標儀在激發(fā)波長491 nm、發(fā)射波長520 nm條件下測定熒光強度值,以熒光強度(AFI)對BSA-FITC溶液的質(zhì)量濃度(ρ)作圖并進行線性回歸,回歸方程為AFI=0.300 3ρ-3.64×10-2(r=0.999 5),結(jié)果BSA-FITC質(zhì)量濃度在5~250 mg·L-1內(nèi)線性關(guān)系良好。
2.2.2 方法學考察
空白仿生exosomes回收率:精密量取空白仿生Exosomes 500 μL上樣于Sepharose 4B凝膠柱的頂端,收集洗脫液。分別取上述洗脫液200 μL加至黑色96孔熒光板中,用酶標儀在激發(fā)波長491 nm、發(fā)射波長520 nm條件下分別測定熒光強度值(Am);精密量取空白仿生exosomes 500 μL,取空白仿生exosomes 200 μL加至黑色96孔熒光板中,采用相同方法測定熒光強度值(An),計算回收率(R)。結(jié)果顯示,該測定方法的回收率為98.89%~99.57%,相對標準偏差(RSD)<2%,符合方法學要求。回收率計算方程如下:R=(Am/An)×100%。
2.2.3 包封率的測定
采用凝膠過濾法[7-8]測定包載 BSA-FITC仿生 exosomes的包封率。由洗脫曲線圖 2可見,仿生exosomes與BSA-FITC可完全分離。經(jīng)方法學考察,精密度及回收率均符合要求。精密量取“2.1”條下仿生exosomes 500 μL,上樣于Sepharose 4B (20 cm× 2.5 cm)凝膠柱的頂端,以pH值7.4的磷酸鹽緩沖液為洗脫液,收集流出液。代入上述標準曲線分別計算游離 BSA-FITC的質(zhì)量(mf)和仿生exosomes包載BSA-FITC的質(zhì)量(me),計算包封率。w(EE)=[me/(mf+ me)]×10。
Fig. 2 The elution curves of exosomes biomimetic and free BSA-FITC through Sepharose 4B圖 2 仿生exosomes和游離BSA-FITC通過Sepharose 4B分離的洗脫曲線
2.3 星點設(shè)計-效應面法優(yōu)化處方
2.3.1 試驗設(shè)計
在單因素考察的基礎(chǔ)上,選取對BSA-FITC仿生exosomes包封率影響較為顯著的3個因素,即:外層DOPE與內(nèi)層PC的質(zhì)量比(X1)、內(nèi)外層混合后的旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)溫度(X2),外層DOPE與DC-Chol的質(zhì)量比(X3),以包封率(Y1)為考察指標進行星點設(shè)計。各因素及水平見表1,試驗安排及結(jié)果見表2。
Table 1 Levels and factors used in Box-Behnken design表1 星點設(shè)計的因素和水平
Table 2 Experimental runs and results of responses for Box-Behnken design表2 星點設(shè)計-效應面法的實驗設(shè)計和結(jié)果
2.3.2 模型擬合及分析
用Design Expert8.0.6.1軟件對試驗結(jié)果進行模型擬合,結(jié)果表明用二次多項式擬合效果最佳,回歸方程如下:
Y1%=-1 419.629+64.663X1+49.711 6X2-22.499X3-0.343 5X1X2-1.722 5X1X3+1.453 5X2X3-8.158 25X12-0.464 73X22- 6.358 25X32(P=0.000 4, r=0.984 1)。
擬合方程的相關(guān)系數(shù)說明設(shè)計模型擬合程度良好,可以用此模型對BSA-FITC的處方進行分析和預測。從表3回歸系數(shù)的顯著性檢驗可知,模型中X3(P<0.000 1)、X22(P=0.000 2)極顯著,X1(P=0.007 5)、X2(P=0.006 7)、X2X3(P=0.004 0)、X12(P=0.001 9)、X32(P=0.006 9)顯著,其他項不顯著。
Table 3 Analysis of variance table表3 方差分析表
2.3.3 效應面分析
應用Design Expert8.0.6.1軟件繪制不同影響因素對于各指標的三維曲面圖,結(jié)果見圖3。根據(jù)軟件擬合BSA-FITC 仿生exosomes的最優(yōu)處方工藝為:外層DOPE與內(nèi)層PC的質(zhì)量比為 2.20∶1,內(nèi)外層混合后的旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)溫度為58.12 ℃,外層DOPE與DC-Chol的質(zhì)量比為4.28∶1,軟件模型擬合計算出的包封率為91.20%。
Fig. 3 3D surface response diagrams for encapsulation efficiency among representative factors圖 3 各因素交互作用對包封率的3D效應面圖
2.4 優(yōu)化處方的驗證及性質(zhì)考察
2.4.1 優(yōu)化處方的驗證
按優(yōu)化處方制備3批仿生exosomes。精密稱取PC 10.0 mg和Cremophor EL 4.28 mg,加入乙醚20.0 mL使之溶解,于25 ℃磁力攪拌下滴加3 g·L-1BSA-FITC作為W/O型內(nèi)層。精密稱取DOPE 22.0 mg和DC-Chol 5.1 mg至50 mL圓底燒瓶中,加入乙醚5.0 mL使之溶解,25 ℃減壓旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)成膜后,加入蒸餾水-乙醇(體積比2∶1)的混合溶劑1.5 mL,于60 ℃水浴下水化,冰浴下探頭超聲3 min(200 W),作為外層。將外層加入內(nèi)層中,渦旋混合5 min,58 ℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)除有機溶劑,冰浴下200 W探頭超聲3 min,制得包載BSA-FITC的納米仿生exosomes,平均包封率為(91.02±0.17)%,可見星點設(shè)計-效應面法預測性良好。
2.4.2 仿生exosomes的形態(tài)
取仿生exosomes適量,加水稀釋后滴加在覆蓋碳膜的銅網(wǎng)表面,以質(zhì)量分數(shù)2.0%的磷鎢酸負染,自然干燥后于透射電子顯微鏡下觀察仿生exosomes形態(tài)和大小。由圖 4可見,仿生exosomes具有明顯的脂質(zhì)雙層結(jié)構(gòu),并且大小均一、形態(tài)圓整。
Fig. 4 Transmission electron micrographs (TEM) of biomimetic exosomes圖 4 仿生exosomes透射電鏡圖
2.4.3 仿生exosomes的粒徑
采用 Nicomp-380激光粒度測定儀測定仿生 exosomes 粒徑大小及粒徑分布(圖 5)。結(jié)果BSA-FITC仿生 exosomes平均粒徑為(62.70±6.33) nm,多分散系數(shù)(P.I.)為 0.286,可見制備的仿生exosomes粒徑較小且分布均勻。
Fig. 5 Particle size distribution of biomimetic exosomes圖 5 仿生exosomes 的粒度分布圖
a. Exosomes是一類直徑為40~100 nm的脂質(zhì)雙層球形囊泡,攜帶很多與來源細胞某些功能相關(guān)的蛋白質(zhì)。其中,來源于腫瘤細胞的exosomes含有豐富的腫瘤抗原,在腫瘤模型中可發(fā)揮有效的免疫刺激作用,因此,成為腫瘤免疫治療的新熱點。作者根據(jù)exosomes的結(jié)構(gòu)特點,采用層層組裝法制備仿生exosomes,不僅獲得了相似的大小,藥物的包封率也達到90%以上。首先,借助偽三元相圖,制得W/O型微乳作為內(nèi)層脂質(zhì)層,平均粒徑僅為(31.30±2.3) nm,藥物被包裹于微乳之中;然后,通過乙醇-水混合溶劑溶解DOPE脂質(zhì)膜形成外層脂質(zhì)層,DOPE分子呈錐狀,頭部體積較小,易于形成單層囊泡結(jié)構(gòu)[13],在60 ℃水浴水化下,DOPE的脂質(zhì)流動性增強,DOPE分子為了降低體系的能量將相互聚集形成親水基向外、親油基向內(nèi)的單層囊泡,同時混合溶劑中乙醇的存在也可以阻止囊泡間的聚集,探頭超聲后,囊泡粒徑變小,外觀具有明顯的淡藍色乳光。當內(nèi)、外層混合后,由于微乳中油相乙醚體積較大,因此,微乳的結(jié)構(gòu)不會改變,被包裹的藥物仍然存在于微乳的乳滴內(nèi),但對外層脂質(zhì)囊泡來說,溶劑性質(zhì)已經(jīng)發(fā)生改變,其結(jié)構(gòu)將發(fā)生第一次翻轉(zhuǎn),形成親水基向內(nèi)、親油基向外的結(jié)構(gòu),隨著溶劑乙醚的逐漸蒸發(fā),體系的親水性增強,由于DOPE與PC相比,親水基的頭部體積更小,相變溫度更低,所以在58 ℃的旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)溫度下,DOPE脂質(zhì)膜的流動性迅速增強,隨即發(fā)生第二次翻轉(zhuǎn),即DOPE的親油基將指向W/O型微乳的疏水端,而親水基指向外,形成具有脂質(zhì)雙層結(jié)構(gòu)的仿生exosomes,微乳中的蛋白藥物由于經(jīng)過層層包封,從而提高了藥物包封率。
b. Exosomes與脂質(zhì)體的結(jié)構(gòu)相比,粒徑更小,達到了40~100 nm之間,具有很強的在各細胞間攜帶及傳遞信息的能力,其次,功能性更強,本文中選擇的脂質(zhì)材料DOPE為exosomes中的主要脂質(zhì)成分,陽離子脂質(zhì)DC-Chol的加入也提高了其與免疫細胞的結(jié)合能力,此外,其較高的蛋白包封率本身就確保了高效的抗原遞送能力,這為后期腫瘤抗原的遞呈及免疫細胞的高效攝取提供了有力的保障。
c. 在仿生 exosomes的包封率測定方法中,嘗試過超速離心法、透析法和超濾法。但由于仿生exosomes平均粒徑低于100 nm,采用超速離心法,并不能將仿生exosomes和游離藥物完全分開;透析法依靠膜內(nèi)外濃度差分離,在濃度梯度下會導致藥物出現(xiàn)泄露,包封率偏低;超濾法因蛋白質(zhì)多肽類藥物特殊的空間結(jié)構(gòu)易被超濾膜吸附和沉積,所測包封率偏高。作者采用凝膠過濾法,分離仿生exosomes和游離藥物,通過測定熒光強度值測定包封率,該法不僅操作簡便、快捷,而且靈敏度高、分離效果好。
[1] SUSAN M D, PIETER V, SAMIRA L. Microvesicles and exosomes: Opportunities for cell-derived membrane vesicles in drug delivery[J]. Journal of Controlled Release, 2012, 161(2), 635-644.
[2] CLAUDIA B, THOMAS T. Exosomes: New players in cell-cell communication[J]. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology, 2012, 44, 2060-2064.
[3] ANNA-KRISTIN L, BERND G. Exosomes: Small vesicles participating in intercellular communication[J]. TheInternational Journal of Biochemistry & Cell Biology, 2012, 44, 11-15.
[4] JIN-WOOK Y, DARRELL J I, DENNIS E D. Bio-inspired, bioengineered and biomimetic drug delivery carriers[J]. Nat Rev Drug Discov, 2011, 10 (7), 521-535.
[5] FRANCIS SZOKA J R. Demetrios Papahadjopoulos. Procedure for preparation of liposomes with large internal aqueous space and high capture by reverse-phase evaporation[J]. Biochemistry, 1978, 75(9): 4194-4198.
[6] MOKHTARIEH A A, CHEONG S, KIM S, et al. Asymmetric liposome particles with highly efficient encapsulation of siRNA and without nonspecific cell penetration suitable for target-specific delivery[J]. Biochimica et biophysicaacta, 2012, 1818: 1633-1641.
[7] MAYER L D, ONGE G S. Determination of free and liposome-associated doxorubicin and vincristine levels in plasma under equilibrium conditions employing ultrafiltration techniques[J]. Analytical Biochemistry, 1995, 232(2): 149-157.
[8] 張磊, 平其能. 口服胰島素納米脂質(zhì)體的制備及其降血糖作用[J]. 中國藥科大學學報, 2001, 32(1), 25-29.
[9] ?URI? A, REUL R, M?SCHWITZER J, et al. Formulation optimization of itraconazole loaded PEGylated liposomes for parenteral administration by using design of experiments[J]. International Journal of Pharmaceutics, 2013, 448(1): 189-197.
[10] YANG Shuo-ye, CHEN Jia-yin, ZHAO Di, et al. Comparative study on preparative methods of DC-Chol/ DOPE liposomes and formulation optimization by determining encapsulation efficiency[J]. International Journal of Pharmaceutics, 2012, 434(1): 155-160.
[11] NUTAN M T H, SOLIMAN M S, TAHA E I, et al. Optimization and characterization of controlled release multi-particulate beads coated with starch acetate[J]. International Journal of Pharmaceutics, 2005, 294(1): 89-101.
[12] PRAKASHMARAN J, MANIKANDAN S, THIRUGNANASAMBANDHAM K, et al. Box-Behnken design based statistical modeling for ultrasound-assisted extraction of corn silk polysaccharide[J]. Carbohydrate Polymers, 2013, 92(1): 604-611.
[13] RAMSTEDT B, SLOTTE J P. Membrane properties of sphingomyelins[J]. FEBS Letters, 2002, 531: 33-37.
Study on biomimetic exosomes prepared by layer-by-layer assemble methods
CHANG Sha-sha,LI Ke-xin,LUO Yue,LI Wen-pan,CHEN Da-wei*
(School of pharmacy, Shenyang Pharmaceutical University, Shenyang 110016, China)
ObjectiveTo optimize the formulation of BSA-FITC biomimetic exosomes. Methods Fluorescein isothiocyanate labeled bovine serum albumin was chosen as a model protein, then three factors which have major effect on encapsulation efficiency were selected to investigate, such as the ratio of outer-phase DOPE to the inner-phase PC, evaporation temperature of the mixer, and ratio of the outer-phase DOPE to DC-Chol. Box-Behnken design was applied to optimize the lipid formulation.Layer-by-layer assemble method was selected to prepare biomimetic exosomes of protein and peptide. Results The optimized experimental conditions were as follows: the mass ratio of outer-phase DOPE to the inner-phase PC was 2.20∶1; evaporation temperature of the mixer was 58 ℃ and the mass ratio of outer-phase DOPE-DC-Chol was 4.28∶1. Optimized biomimetic exosomes formulation displayed the mean particle size of (62.7±6.33) nm, the poly-dispersion index of 0.286, and encapsulation efficiency of (91.02±3.10)%. Conclusions Box-Behnken design was successfully used in the formulation optimization, and layer-by-layer assemble methods was suitable for prepare biomimetic exosomes of protein and peptide with higher encapsulation efficiency and smaller particle size.
pharmaceutics; biomimetic exosomes; layer-by-layer assemble methods; BSA-FITC; Box-Behnken design
R94
:A
(本篇責任編輯:趙桂芝)
(2015)04-0117-09
10.14146/j.cnki.cjp.2015.04.001
2014-01-08
國家自然科學基金資助項目(81302721)
常莎莎(1989-), 女(漢族), 安徽宿州人, 碩士研究生,E-mail shashashmily3@163.com; *
:陳大為(1959-) 男(漢族), 遼寧海城人, 教授, 博士, 主要從事藥物新劑型的研究, Tel. 024-23986308, E-mail chendawei@syphu.edu.cn。