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    HPLC法測定枇杷葉中一種橙花叔醇苷的含量

    2015-02-23 10:59:41張紅茹
    天津藥學 2015年3期
    關鍵詞:橙花枇杷葉吡喃

    張紅茹,孫 琳

    (1.天津中醫(yī)藥大學,天津 300193; 2.天津中新藥業(yè)研究中心,天津 300457)

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    HPLC法測定枇杷葉中一種橙花叔醇苷的含量

    張紅茹1,2,孫 琳2

    (1.天津中醫(yī)藥大學,天津 300193; 2.天津中新藥業(yè)研究中心,天津 300457)

    目的:建立HPLC法測定枇杷葉中倍半萜苷—橙花叔醇苷的含量。方法:采用HPLC法測定,色譜柱為Waters Symmetry C18(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動相為乙腈-水(29∶71);體積流量1.0 ml/min;柱溫30 ℃;檢測波長210 nm。結果:倍半萜苷在0.009 629~2.006 μg/ml(r=0.999 6)范圍內與峰面積呈良好的線性關系,平均回收率為96.23%。結論:該方法操作簡單,結果準確,專屬性好,可用于枇杷葉的質量控制。

    枇杷葉,倍半萜苷,橙花叔醇苷,含量測定,HPLC

    枇杷葉Eriobotryaefolium為薔薇科植物枇杷的干燥葉,具有清肺止咳,降逆止嘔的功效,用于治療肺熱咳嗽,氣逆喘急,胃熱嘔逆,煩熱口渴[1]。枇杷葉的化學成分主要有三萜酸類、倍半萜及其苷類、多酚類、黃酮類以及糖苷類,具有抗炎止咳、抗病毒、降血糖和抗腫瘤等藥理活性[2]。

    目前報道的枇杷葉含量測定成分以齊墩果酸、熊果酸等三萜酸類多見[3-5],也有苦杏仁苷、綠原酸、槲皮素和山奈酚等[6-8]?!吨袊幍洹分衅浜繙y定是以熊果酸和齊墩果酸的三萜酸類為質控指標,但此成分在眾多植物如山楂、女貞子、白花蛇舌草中均有存在且含量較高[9],故其作為質控指標專屬性較低。本文旨在對枇杷葉中橙花叔醇-3-O-{α-1-吡喃鼠李糖基-(1→4)-α-L-吡喃鼠李糖基-(1→2)-[α-L-吡喃鼠李糖基-(1→6)]-β-D-吡喃葡萄糖苷}進行HPLC法測定及方法學考查,以建立該倍半萜苷橙花叔醇苷的含量測定方法,因其為枇杷葉的特征成分,在枇杷葉中比上述其他成分更具專屬性,可作為枇杷葉質量控制指標的有效補充,為質量控制提供科學依據。

    1 儀器與試藥

    1.1 儀器 Waters e2695型高效液相色譜儀(Waters公司);AL204-IC型萬分之一天平(Mettler公司);HU10260B型超聲儀(天津恒奧科技有限公司)。

    1.2 試藥 枇杷葉藥材(批號Y-1211-0149,Y-1406-0113,140501,購自天津中新藥業(yè)集團股份有限公司藥材分公司);橙花叔醇-3-O-{α-L-吡喃鼠李糖基-(1→4)-α-L-吡喃鼠李糖基-(1→2)-[α-L-吡喃鼠李糖基-(1→6)]-β-D-吡喃葡萄糖苷}(實驗室自制,純度≥98%,以下稱為橙花叔醇苷);乙腈(色譜純,天津康科德科技有限公司);水為純凈水(Millipore純水機制備)。

    2 方法與結果

    2.1 色譜條件 Waters Symmetry C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)色譜柱;流動相乙腈-水(29∶71);檢測波長210 nm;柱溫30 ℃;體積流量1.0 ml/min。

    2.2 溶液的制備

    2.2.1 對照品溶液的制備 精密稱取橙花叔醇苷對照品適量,加甲醇溶解,配制成0.1 mg/ml的對照品溶液。

    2.2.2 供試品溶液的制備 取枇杷葉粉末(批號Y-1211-0149,過三號篩)約0.5 g,精密稱定,置具塞錐形瓶中,精密加入水飽和的正丁醇25 ml,稱定重量,超聲處理30 min,放冷,再稱定重量,用水飽和正丁醇補足減失的重量,搖勻,濾過。精密量取續(xù)濾液10 ml,置蒸發(fā)皿中,蒸干,殘渣加甲醇適量使溶解,轉移至10 ml量瓶中,加甲醇至刻度,搖勻,濾過,取續(xù)濾液,即得。

    2.3 系統(tǒng)適用性 分別精密吸取對照品溶液及供試品溶液各10 μl,注入液相色譜儀,按照“2.1”項下色譜條件分析,結果見圖1。

    1.橙花叔醇苷

    2.4 線性關系考查 分別精密吸取濃度為0.009 628 8、0.032 096、0.080 24、0.160 48、0.401 2、0.802 4和2.006 mg/ml的對照品溶液各10 μl,按照“2.1”項下色譜條件分析,測定峰面積,記錄數據。以峰面積為縱坐標(Y),濃度為橫坐標(X)進行線性回歸,得回歸方程Y=3 700 000X+20 494(r=0.999 6),結果表明橙花叔醇苷在0.009 629~2.006 mg/ml濃度范圍內峰面積與濃度呈良好的線性關系。

    2.5 精密度試驗 精密吸取對照品溶液10 μl,按照“2.1”項下色譜條件分析,連續(xù)進樣6次,測定其色譜峰的峰面積,計算RSD為0.52%,說明儀器精密度良好。

    2.6 穩(wěn)定性試驗 取同批枇杷葉樣品,按照“2.2.2”項下方法制備供試品溶液,分別在0、3、6、9、12、15、18 h進樣10 μl,測定其色譜峰的峰面積,計算RSD為1.10%,說明供試品溶液在0~18 h內穩(wěn)定性良好。

    2.7 重復性試驗 取同批枇杷葉樣品6份,按照“2.2.2”項下方法制備供試品溶液,進樣測定,計算質量分數的RSD為0.56%,說明該方法的重復性良好。

    2.8 加樣回收率試驗 精密稱取已知含量的供試品0.25 g,加入一定量的對照品,按照“2.2.2”項下方法制備供試品溶液,按上述測定方法進行測定,計算回收率,結果平均回收率為96.23%,RSD為1.20%,結果見表1。

    表1 橙花叔醇苷加樣回收率試驗結果(n=6)

    2.9 樣品測定 取3批枇杷葉,精密稱定,按照“2.2.2”項下方法制備供試品溶液,按照“2.1”項下色譜條件進樣測定橙花叔醇苷的含量,測定結果見表2。

    表2 樣品測定結果(n=2)

    3 討論

    3.1 檢測波長的選擇 本實驗采用二極管陣列檢測器進行200~400 nm全譜測定,結果橙花叔醇苷在紫外光譜中只具末端吸收,為減少溶劑及雜質干擾,故選擇210 nm作為檢測波長。

    3.2 流動相的選擇 由于甲醇、甲酸和乙酸等溶劑在210 nm附近均有紫外吸收,對本成分的測定會有干擾,故選擇乙腈水作為流動相,通過流動相比例及不同色譜柱的考查,最終確定了基線平穩(wěn),峰形較好,保留時間適中的流動相系統(tǒng)。

    3.3 提取溶劑和方法的選擇 在實驗過程中考查了分別以100%、70%、50%甲醇及水飽和正丁醇超聲提取,結果表明70%、50%甲醇及水飽和正丁醇提取率相當,但70%、50%甲醇提取雜質較多,故選擇水飽和正丁醇作為提取溶劑。又考查了以水飽和正丁醇為溶劑超聲和加熱回流的提取情況,結果表明超聲提取30 min即可提取完全。

    枇杷葉中倍半萜苷—橙花叔醇-3-O-{α-L-吡喃鼠李糖基-(1→4)-α-L-吡喃鼠李糖基-(1→2)-[α-L-吡喃鼠李糖基-(1→6)]-β-D-吡喃葡萄糖苷}是由意大利學者De Tommasi等[10]從枇杷葉中首次分離得到,并證實其有降低血糖的作用[11]。其苷元橙花叔醇也是枇杷葉中揮發(fā)油的主要成分[12],具有抗菌作用[13],與枇杷葉已知療效相關,橙花叔醇苷有可能在體內代謝為橙花叔醇,間接發(fā)揮療效,但還需進一步證實。目前枇杷葉含量測定的指標成分多為三萜酸類,但中藥常用水提或水煎煮后服用,使用脂溶性很強的熊果酸等三萜酸類顯然不太合理,本文建立水溶性的橙花叔醇苷含量測定的方法,以橙花叔醇苷作為枇杷葉的質控指標,可以更合理的控制其質量。

    1 中國藥典[S]. 一部.2010:190-191

    2 陸林博. 枇杷葉的化學成分研究[D]. 南京師范大學,2006:10-12

    3 陳龍勝,忻旸,許舒雯. RP-HPLC同時測定枇杷葉中4種三萜酸[J]. 中草藥,2008,39(9):1411-1413

    4 蔡雪萍,李振華,華俊磊,等. 一測多評法測定枇杷葉有效部位中6種三萜酸成分的量[J]. 中草藥,2013,44(21):3057-3062

    5 Zhang Y, Xue K, Zhou A,etal.Determination of triterpenoic acid isomers in Eriobotryae folium using high performance liquid chromatography on C30 column[J]. Chinese journal of chromatography,2014,32(1):47-51

    6 莊永峰. 高效液相色譜法測定枇杷葉中苦杏仁苷含量[J]. 海峽藥學,2002,14(5):64-65

    7 張麗賢,周光明,姜蘭芳,等. 非離子表面活性劑萃取-高效液相色譜法測定枇杷葉中的綠原酸、槲皮素和山奈酚[J]. 食品科學,2012,33(6):150-153

    8 孟令軍,李超生,孟慶繁,等. 高效液相色譜法測定枇杷葉藥材中綠原酸的含量[A]. 吉林省科學技術協(xié)會.吉林省第六屆生命科學大型學術報告會論文集[C],2008:22-23

    9 相延英,楊光. 常用中藥中齊墩果酸和熊果酸的含量測定[J]. 中國醫(yī)院藥學雜志,2004,24(5):61-63

    10 De Tommasi N,De Simone F,Aquino R,etal.Plant Metabolites.new sesquiterpene glycosides from Eriobotrya japonica[J]. Journal of Natural Products,1990,53(4):810-815

    11 De Tommasi N,De Simone F,Cirino G,etal. Hypoglycemic effects of sesquiterpene glycosides and polyhydroxylated triterpenoids of Eriobotrya Japonica[J].Planta Med,1991,57(5):414

    12 郭宇,吳松吉,樸惠善. 枇杷葉的化學成分及藥理活性研究進展[J]. 時珍國醫(yī)國藥,2006,17(6):928-930

    13 陶冉,王成章,孔振武. 銀杏葉類脂成分與聚戊烯醇的協(xié)同抑菌作用[J]. 中國實驗方劑學雜志,2013,19(17):203-210

    Determination of nerolidol glycosides inEriobotryaefoliumby HPLC

    Zhanghongru1,2,Sunlin2

    (1.Tianjin University of Traditional Chinese Medicine,Tianjin 300193;2.Tianjin Zhongxin Pharmaceuticals R&D Center,Tianjin 300457)

    Objective: To establish an HPLC method for determination of a sesquiterpene glycosides-nerolidol glycosides inEriobotryaefolium.Methods: HPLC was applied with the chromatographic condition as follows:The chromatographic column was Waters Symmetry C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)at 30 ℃;acetonitrile-water(29∶71) as the mobile phase;flow rate was 1.0 ml/min and the detection wavelength was 210 nm.Results: Linear relationships was 0.009 629~2.006 μg(r=0.999 6),the average recovery was 96.23%.Conclusion: The method is convenient,accurate and specific,can be applied to the quality control ofEriobotryaefolium.

    Eriobotryaefolium,sesquiterpene glycosides,nerolidol glycosides,quantitative determination,HPLC

    2015-03-17

    R927.2

    A

    1006-5687(2015)03-0009-03

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