• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

      參與小膠質細胞活化的膜受體研究進展

      2015-01-25 13:54:02賀改英張志雄上海中醫(yī)藥大學生理教研室上海201203
      中國老年學雜志 2015年9期
      關鍵詞:趨化因子活化細胞因子

      賀改英 徐 穎 張志雄 (上海中醫(yī)藥大學生理教研室,上海 201203)

      參與小膠質細胞活化的膜受體研究進展

      賀改英 徐 穎 張志雄 (上海中醫(yī)藥大學生理教研室,上海 201203)

      小膠質細胞;活化;膜受體

      在中樞神經系統(tǒng)(CNS),小膠質細胞(MG)的作用越來越受到重視,MG被認為是CNS中天然免疫和適應性免疫的主要調節(jié)者〔1〕,MG以靜息和活化兩種狀態(tài)存在,靜息的MG對CNS起著支持、營養(yǎng)、保護和修復等作用,而活化的MG一方面營養(yǎng)和保護了CNS,另一方面通過釋放促炎癥細胞因子、自由基、超氧化物陰離子、一氧化氮(NO)、活性氧、前列腺素E2(PGE2)等多種物質,對CNS產生了更多的損傷作用。研究發(fā)現活化的MG存在于多種神經退行性疾病中,例如在阿爾茨海默病(AD)、帕金森病(PD)和多發(fā)性硬化癥(MS)等疾病中〔2~4〕,引起MG活化的因素十分廣泛,有脂多糖(LPS)、β淀粉樣蛋白(Aβ)、白細胞介素(IL)-1β、腫瘤壞死因子(TNF)-α、干擾素(IFN)-γ、三磷酸腺苷(ATP)和肽聚糖(PG)等,不同的刺激因素引起MG活化時,會引起不同的膜受體發(fā)生變化。MG的活化是由多種刺激因素和多種膜受體參與的一個復雜的過程,現將MG活化時參與的主要膜受體總結如下。

      1 Toll樣受體(TLR)

      TLR作為一種模式識別受體,不僅在天然免疫中起重要作用,同時在獲得性免疫中也發(fā)揮了重要作用。TLR同源分子都是Ⅰ型跨膜蛋白,可分為胞膜外區(qū),胞質區(qū)和跨膜區(qū)三部分,TLR胞膜外區(qū)為有17~31個亮氨酸富集的重復序列,識別病原相關分子模式,TLR通過髓樣分化因子(MyD)88依賴和非依賴途徑引起胞內反應,TLR在炎癥、信號轉導和細胞凋亡等發(fā)生過程中起著重要作用,與MG有關的TLR主要包括TLR2、3、4和9等。

      關于MG的活化研究最多且最成熟的是TLR4,很多學者選用LPS作為刺激MG造成炎癥模型的首選藥物,其中LPS的經典激動受體就是 TLR4〔5〕。研究發(fā)現LPS通過與MG膜上TLR4結合,激活了其下游信號通路核因子(NF)-κB、Janus激酶-信號轉導及轉錄激活蛋白(JAK-STAT)、C〔J〕Jun氨基末端激酶(JNK)和p38絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)通路〔6〕;NF-κB和MAPK信號通路的活化,常常引起 NO、PGE2、IL-6、IL-1β和 TNF-α 的表達〔7,8〕;Capiralla 等〔9〕也發(fā)現 LPS 可以引起 MG的TLR4/NF-κB/STAT信號的級聯放大,引起了促炎癥細胞因子TNF-α和IL-6的釋放。

      除了TLR4,TLR2、3和9在MG的活化和釋放有害因子等過程中也發(fā)揮了重要的作用。PG可以引起MG釋放促炎癥細胞因子IL-6,進一步研究發(fā)現是PG與TLR2結合,通過JNK、c-Jun和 AP-1 的通路引起的〔10〕;Lin 等〔11〕也發(fā)現 PG 可以與TLR2/MyD88結合,依次激活 PI3-kinase/AKT、IKKα/β 和 NF-κB信號通路,引起了誘導型 NO合酶(iNOS)和環(huán)氧化酶(COX)-2的表達;同時發(fā)現TLR3引起的TNF-α和IL-6的釋放是由于TLR3活化了COX2/PGE2/EP1信號通路,然后EP1通過與G蛋白耦聯受體結合,通過三磷酸肌醇(IP3)受體系統(tǒng)引起了 Ca2+的釋放而引起的〔12〕;而 He等〔13〕發(fā)現 TLR9對 MG 的影響主要是p38 MAPK和MKK3/6表達上調,MG的凋亡增加。

      可見,TLR的活化引起了MG的活化,導致多種炎癥信號通路和促炎癥細胞因子及趨化因子的表達增多,并引起了細胞的凋亡,隨著研究的深入,對TLR的特性和功能將會有更全面的了解。

      2 TNF受體(TNFR)

      研究發(fā)現MG不僅釋放TNF,而且其本身也表達TNFR,TNFR主要包括 TNFR1 和 TNFR2,Veroni等〔14〕發(fā)現,IFN-γ 和LPS條件下的MG,TNFR1的表達占主導地位。TNFR1表達增多,常常引起MG的活化,AD和PD等神經退行性疾病的發(fā)生,研究發(fā)現〔15〕TNF-α引起了MG的活化,進一步研究發(fā)現TNF-α通過TNFR1可以引起MG釋放TNF-α,而預先用抗TNFR1抗體處理后,TNF-α的釋放減少,同時發(fā)現LPS和IFN-γ引起NO增多,可以被抗TNF R1抗體阻斷;而且He等〔16〕發(fā)現敲除TNF R1的轉基因小鼠,降低了β位點-淀粉樣前體蛋白剪切酶-1β的活性,阻斷了Aβ的產生和學習記憶缺陷,改善了AD癥狀。

      3 IL-1受體(IL-1R)

      CNS中IL-1主要由MG分泌的,MG不僅分泌IL-1,而且其細胞表面有 IL-1R,研究發(fā)現〔17〕在炎癥狀態(tài)下 IL-1R1和 IL-1R2明顯上調。IL-1R系統(tǒng)在MG活化、神經元的損傷、促炎癥細胞因子的表達及CNS退行性疾病中都發(fā)揮了重要的作用。

      研究表明LPS可以引起剛出生大鼠的MG大量活化,而且引起大鼠對痛覺過敏,并且這種狀態(tài)會持續(xù)到成年,而應用IL-1R拮抗劑發(fā)現減少了MG的活化,降低了長時間持續(xù)的痛覺過敏〔18〕;而且有研究發(fā)現在沉默了IL-1R后,MG的活化不僅會減少,Cox-2和IL-6表達也會相應降低〔19〕。

      4 趨化因子受體

      趨化因子是一組具有趨化作用的細胞因子,在炎癥反應、創(chuàng)傷的修復和細胞及器官的發(fā)育等方面都起著重要的作用,已發(fā)現并克隆的趨化因子受體有以下幾種,C趨化因子:XCR1及Duffy抗原受體;CC趨化因子受體:CCR1~11,CXC趨化因子受體:CXCR 1~6;CX3C趨化因子受體:CX3CR1。MG本身表達一些趨化因子和受體,趨化因子通過與受體的結合在CNS中發(fā)揮了不同的作用,與MG作用相關的受體有CCR2、CXCR3和CX3CR1等。研究發(fā)現受損的神經元周圍聚集了大量活化的MG,受損的神經元與MG的聚集和活化之間存在怎樣的聯系呢?研究發(fā)現〔20〕可能是受損的神經元釋放的多種趨化因子和不規(guī)則趨化因子與MG上的受體結合,引起了MG的聚集和活化;不僅受損神經元周圍的MG發(fā)生活化,遠離受損部位的MG也會發(fā)生活化,這可能是受損部位的神經元引起了趨化因子CCL21的釋放,CCL21與損傷部位和遠離損傷部位的MG上CXCR3結合,引起了MG的活化〔21〕。

      趨化因子受體系統(tǒng)的活化引起的MG的聚集和活化對CNS產生了一系列的損傷,Zhang等〔22〕發(fā)現在周圍神經損傷引起的趨化因子單核細胞趨化蛋白(MCP)-1通過與CCR2結合引起了MG的活化和觸覺異常性疼痛增加;而且發(fā)現腦損傷后神經元釋放的趨化因子CXCL10通過與MG上CXCR3結合引起了MG的活化,活化的MG遷移到損傷部位,隨后損傷部位神經元之間神經支配的樹突消失了,而敲除CXCR3的小鼠沒有發(fā)現MG的遷移、聚集和神經支配的樹突消失的現象〔23〕。

      綜上所述,很多趨化因子受體從不同方面參與了CNS的損傷,但不是所有的趨化因子受體都參與損傷了CNS,研究發(fā)現CX3CR1-/-小鼠就引起了MG的神經毒性,誘導了神經元的凋亡〔24〕,所以不同的趨化因子受體發(fā)揮的作用是不同的。

      5 嘌呤P2受體

      嘌呤P2受體是一類核苷酸受體,分為離子通道受體P2X和G蛋白耦聯受體P2Y,它們在體內分布廣泛,功能復雜,目前已有7種P2X受體(P2X1~7)和9種 P2Y 受體(P2Y1,2,4,6,11~15)被克隆。一些嘌呤P2的受體存在于神經元,星形膠質細胞,少突膠質細胞和MG,嘌呤受體系統(tǒng)參與了MG的多種功能,它們保持了MG在正常生理狀態(tài)下突起的形態(tài),調節(jié)了突起伸縮的變化,參與了MG的吞噬功能等,但是一些嘌呤P2受體在受到刺激時會發(fā)生上調,參與了MG的活化和CNS的損傷,如P2X7受體和P2Y12受體。

      在AD和腦損傷中均發(fā)現了P2X7受體的大量表達,研究發(fā)現〔25〕P2X7受體的過表達足夠引起MG的活化和增殖;Verderio等〔26〕還發(fā)現星形膠質細胞釋放的ATP與MG膜上P2X7受體結合,引起了MG延遲性的Ca2+的釋放,Ca2+重復的刺激MG增加了MG膜的通透性,最終引起了MG的凋亡;除P2X7受體外,P2Y12受體在MG活化和軸突髓鞘吞噬方面也發(fā)揮了重要作用,Maeda等〔27〕研究表明神經性的損傷引起背角Ⅱ~Ⅲ層MG數目大量增加,聚集在損傷部位軸突髓鞘周圍,吞噬了軸突髓鞘,而注射P2Y12受體拮抗劑后發(fā)現,聚集在軸突髓鞘周圍的MG減少,軸突髓鞘也不會被吞噬。

      6 IFN-γ受體(IFN-γR)

      研究發(fā)現不僅星形膠質細胞表達IFN-γR,MG和少突膠質細胞也都表達了IFN-γR〔28〕。IFN-γ及其受體系統(tǒng)在CNS的作用是多方面的,一方面可以增加對神經元碎屑和Aβ的吞噬和清除作用,抑制TNF-α和COX-2的表達等,另一方面作為MG強大的活化受體,在引起MG活化后,對CNS造成了損傷。Tsuda等〔29〕發(fā)現IFN-γR信號通路不僅引起了靜息 MG的活化,同時上調了MG的酪氨酸激酶Lyn和嘌呤P2X4受體,引起了背角神經元的異常興奮和神經性疼痛;不僅如此,研究表明從成年豬的腦組織取材培養(yǎng)的MG表達了功能性的IFN-γR,而且IFN-γ刺激MG的培養(yǎng)液引起了神經母細胞瘤細胞的凋亡〔30〕,提示由于 IFN-γ通過刺激 IFN-γR系統(tǒng)引起的有害因子對神經母細胞瘤細胞造成了損傷。

      除了上述之外,還有其他膜受體參與了MG活化,Sonobe等〔31〕發(fā)現MG以自分泌IL-23的形式誘導的趨化因子引起了促炎癥細胞因子的釋放,而且增強了IFN-γ誘導的信號轉導及轉錄激活蛋白(STAT)1磷酸化和趨化因子的表達;如果外界不斷地刺激小鼠,會引起MG CD11b的表達以及多種促炎癥細胞因子的產生,同時小鼠會發(fā)生焦慮樣行為,而應用β-腎上腺素受體拮抗劑則阻斷了上述反應〔32〕,這說明β-腎上腺素受體也參與了MG的活化和促炎癥細胞因子的表達,隨著研究的深入,將會發(fā)現更多的膜受體參與了MG的活化。

      研究表明不僅膜受體參與了MG的活化,其他一些因素在MG的活化過程中也發(fā)揮了積極的作用。例如細胞內鉀和鈣濃度的變化也可以引起MG活化。Küst等〔33〕認為細胞外鉀離子濃度增高可能是MG活化的一個共同因素;LPS可以通過鈣激活鉀離子通道KCNN4/KCa3.1引起MG激活,MAPK通路的活化,NO的產生,同時造成神經元損傷〔34〕;結核分枝桿菌可引起MG釋放分泌型磷脂酶 A2(sPLA2)、TNF、IL-6、COX-2和 iNOS等,促進 NF-κB 和 MAPKs(ERK1/2、p38 和 JNK/SAPK)的活化,而sPLA2阻滯劑可以減少上述信號通路的活化和有害因子的釋放〔35〕,所以PLA2在MG信號通路活化和促炎癥細胞因子表達中也發(fā)揮了極其重要作用;除此以外,炎癥信號通路也參與了 MG 的活化,研究表明〔36,37〕阻斷 MAPK、NF-κB 和 PI3K/Akt信號通路,可以減少MG的活化,降低有害分子的釋放。

      隨著研究的深入,人們對MG活化時的受體、釋放的因子及參與的信號通路等將會有更加全面和深入的了解,才能一方面通過干擾或阻斷一些受體的表達,降低MG的活化,減少炎癥信號通路的活化和促炎癥細胞因子及其他有害因子的表達,阻斷其對CNS的損傷作用;另一方面通過提高抗炎癥細胞因子的表達,增強對細胞碎屑、Aβ的吞噬和清除,發(fā)揮其有利的一面,減少神經退行性疾病的發(fā)生。

      1 Gomez-Nicola D,Valle-Argos B,Nieto-Sampedro M.Blockade of IL-15 activity inhibits micro-glial activation through the NFkappaB,p38,and ERK1/2 pathways,reducing cytokine and chemokine release〔J〕.Glia,2010;58(3):264-76.

      2 Ruan L,Kang Z,Pei G,et al.Amyloid deposition and inflammation in APPswe/PS1dE9 mouse model of Alzheimer′s disease〔J〕.Curr Alzheimer Res,2009;6(6):531-40.

      3 Kokovay E,Cunningham LA.Bone marrow-derived microglia contribute to the neuroinflammatory response and express iNOS in the MPTP mouse model of Parkinson′s disease〔J〕.Neurobiol Dis,2005;19(3):471-8.

      4 Gao Z,Tsirka SE.Animal models of ms reveal multiple roles of microglia in disease pathogenesis〔J〕.Neurol Res Int,2011;2011:383087.

      5 Smith HS.Activated microglia in nociception〔J〕.Pain Physician,2010;13(3):295-304.

      6 Kacimi R,Giffard RG,Yenari MA.Endotoxin-activated microglia injure brain derived endoth-elial cells via NF-κB,JAK-STAT and JNK stress kinase pathways〔J〕.J Inflamm(Lond),2011;8:7.

      7 Jeong JW,Jin CY,Kim GY,et al.Anti-inflammatory effects of cordycepin via suppression of inflammatory mediators in BV2 microglial cells〔J〕.Int Immunopharmacol,2010;10(12):1580-6.

      8 Lim JY,Won TJ,Hwang BY,et al.The new diterpene isodojaponin D inhibited LPS-induced microglial activation through NF-kappaB and MAPK signaling pathways〔J〕.Eur J Pharmacol,2010;642(1-3):10-8.

      9 Capiralla H,Vingtdeux V,Zhao H,et al.Resveratrol mitigates lipopolysaccharide-and Aβ-mediated microglial inflammation by inhibiting the TLR4/NF-κB/STAT signaling cascade〔J〕.J Neurochem,2012;120(3):461-72.

      10 Lin HY,Tang CH,Chen JH,et al.Peptidoglycan induces interleukin-6 expression through the TLR2 receptor,JNK,c-Jun,and AP-1 pathways in microglia〔J〕.J Cell Physiol,2011;226(6):1573-82.

      11 Lin HY,Tang CH,Chen YH,et al.Peptidoglycan enhances proinflammatory cytokine expression through the TLR2 receptor,MyD88,phosphatidylinositol 3-kinase/AKT and NF-kappaB pathways in BV-2 microglia〔J〕.Int Immunol,2010;10(8):883-91.

      12 Li X,Cudaback E,Keene CD,et al.Suppressed microglial E prostanoid receptor 1 signaling selectively reduces tumor necrosis factor alpha and interleukin 6 secretion from toll-like receptor 3 activation〔J〕.Glia,2011;59(4):569-76.

      13 He L,Li H,Chen L,et al.Toll-like receptor 9 is required for opioid-induced microglia apoptosis〔J〕.PLoS One,2011;6(4):e18190.

      14 Veroni C,Gabriele L,Canini I,et al.Activation of TNF receptor 2 in microglia promotes induction of anti-inflammatory pathways〔J〕.Mol Cell Neurosci,2010;45(3):234-44.

      15 Kuno R,Wang J,Kawanokuchi J,et al.Autocrine activation of microglia by tumor necrosis factor-alpha〔J〕.J Neuroimmunol,2005;162(1-2):89-96.

      16 He P,Zhong Z,Lindholm K,et al.Deletion of tumor necrosis factor death receptor inhibits amyloid beta generation and prevents learning and memory deficits in Alzheimer′s mice〔J〕.J Cell Biol,2007;178(5):829-41.

      17 Girard S,Sébire G,Kadhim H.Proinflammatory orientation of the interleukin 1 system and downstream induction of matrix metalloproteinase 9 in the pathophysiology of human perinatal white matter damage〔J〕.J Neuropathol Exp Neurol,2010;69(11):1116-29.

      18 Wang KC,Wang SJ,Fan LW,et al.Interleukin-1 receptor antagonist ameliorates neonatal lipopolysaccharide-induced long-lasting hyperalgesia in the adult rats〔J〕.Toxicology,2011;279(1-3):123-9.

      19 Basu A,Krady JK,O′Malley M,et al.The type 1 interleukin-1 receptor is essential for the efficient activation of microglia and the induction of multiple proinflammatory mediators in response to brain injury〔J〕.J Neurosci,2002;22(14):6071-82.

      20 Biber K,Vinet J,Boddeke HW.Neuron-microglia signaling:chemokines as versatile messengers〔J〕.J Neuroimmunol,2008;198(1-2):69-74.

      21 de Jong EK,Dijkstra IM,Hensens M,et al.Vesicle-mediated transport and release of CCL21 in endangered neurons:a possible explanation for microglia activation remote from a primary lesion〔J〕.J Neurosci,2005;25(33):7548-57.

      22 Zhang J,Shi XQ,Echeverry S,et al.Expression of CCR2 in both resident and bone marrow-derived microglia plays a critical role in neuropathic pain〔J〕.J Neurosci,2007;27(45):12396-406.

      23 Rappert A,Bechmann I,Pivneva T,et al.CXCR3-dependent microglial recruitment is essential for dendrite loss after brain lesion〔J〕.J Neurosci,2004;24(39):8500-9.

      24 Dombrowski S,Dutta R,Lee JC,et al.Control of microglial neurotoxicity by the fractalkine receptor〔J〕.Nat Neurosci,2006;9(7):917-24.

      25 Monif M,Reid CA,Powell KL,et al.The P2X7 receptor drives microglial activation and proliferation:a trophic role for P2X7R pore〔J〕.J Neurosci,2009;29(12):3781-91.

      26 Verderio C,Matteoli M.ATP mediates calcium signaling between astrocytes and microglial cells:modulation by IFN-gamma〔J〕.J Immunol,2001;166(10):6383-91.

      27 Maeda M,Tsuda M,Tozaki-Saitoh H,et al.Nerve injury-activated microglia engulf myelinated axons in a P2Y12 signaling-dependent manner in the dorsal horn〔J〕.Glia,2010;58(15):1838-46.

      28 Hashioka S,Klegeris A,Schwab C,et al.Differential expression of interferon-gamma receptor on human glial cells in vivo and in vitro〔J〕.J Neuroimmunol,2010;225(1-2):91-9.

      29 Tsuda M,Masuda T,Kitano J,et al.IFN-γ receptor signaling mediates spinal microglia activation driving neuropathic pain〔J〕.Proc Natl Acad Sci USA,2009;106(19):8032-7.

      30 Ionescu VA,Villanueva EB,Hashioka S,et al.Cultured adult porcine astrocytes and microglia express functional interferon-γ receptors and exhibit toxicity towards SH-SY5Y cells〔J〕.Brain Res Bull.2011;84(3):244-51.

      31 Sonobe Y,Liang J,Jin S,et al.Microglia express a functional receptor for interleukin-23〔J〕.Biochem Biophys Res Commun,2008;370(1):129-33.

      32 Wohleb ES,Hanke ML,Corona AW,et al.β-Adrenergic receptor antagonism prevents anxiety-like behavior and microglial reactivity induced by repeated social defeat〔J〕.J Neurosci,2011;31(17):6277-88.

      33 Küst B,Buttini M,Sauter A,et al.K(+)-channels and cytokines as markers for microglial activation〔J〕.Adv Exp Med Biol,1997;429:109-17.

      34 Kaushal V,Koeberle PD,Wang Y,et al.The Ca2+-activated K+channel KCNN4/KCa3.1 contributes to microglia activation and nitric oxide-dependent neurodegeneration〔J〕.J Neurosci,2007;27(1):234-44.

      35 Yang CS,Yuk JM,Shin DM,et al.Secretory phospholipase A2 plays an essential role in microglial inflammatory responses to mycobacterium tuberculosis〔J〕.Glia,2009;57(10):1091-103.

      36 Wilms H,Rosenstiel P,Romero-Ramos M,et al.Suppression of map kinases inhibits microglial activation and attenuates neuronal cell death induced by alpha-synuclein protofibrils〔J〕.Int J Immunopathol Pharmacol,2009;22(4):897-909.

      37 Liu HT,Du YG,He JL,et al.Tetramethylpyrazine inhibits production of nitric oxide and inducible nitric oxide synthase in lipopolysaccharide-induced N9 microglial cells through blockade of MAPK and PI3K/Akt signaling pathways,and suppression of intracellular reactive oxygen species〔J〕.J Ethnopharmacol,2010;129(3):335-43.

      R74

      A

      1005-9202(2015)09-2556-04;

      10.3969/j.issn.1005-9202.2015.09.123

      上海市科學技術委員會科研計劃項目(09ZR1432100);上海市教育委員會重點學科項目(J50301);上海市教育委員會預算內科研項目(2010JW04)

      張志雄(1952-),男,教授,博士生導師,主要從事中藥的抗衰老研究。

      賀改英(1982-),女,博士,主要從事中藥的抗衰老研究。

      〔2013-11-17修回〕

      (編輯 苑云杰/張 慧)

      猜你喜歡
      趨化因子活化細胞因子
      無Sn-Pd活化法制備PANI/Cu導電織物
      抗GD2抗體聯合細胞因子在高危NB治療中的研究進展
      小學生活化寫作教學思考
      急性心肌梗死病人細胞因子表達及臨床意義
      趨化因子及其受體在腫瘤免疫中調節(jié)作用的新進展
      細胞因子在慢性腎缺血與腎小管-間質纖維化過程中的作用
      肝細胞癌患者血清趨化因子CXCR12和SA的表達及臨床意義
      基于B-H鍵的活化對含B-C、B-Cl、B-P鍵的碳硼烷硼端衍生物的合成與表征
      趨化因子與術后疼痛
      細胞因子在抗病毒免疫中作用的研究進展
      富裕县| 基隆市| 平江县| 桂东县| 乌恰县| 化德县| 邢台市| 茌平县| 赤壁市| 浮山县| 溧阳市| 武夷山市| 金沙县| 兰考县| 西林县| 五河县| 容城县| 宿松县| 通城县| 弋阳县| 北川| 顺昌县| 开原市| 都匀市| 阿克苏市| 集贤县| 水富县| 许昌县| 江都市| 神池县| 海宁市| 苗栗市| 曲阳县| 财经| 班戈县| 平阴县| 中阳县| 德钦县| 古丈县| 阳东县| 湘西|