左偉高福強孫偉**
(1.北京大學(xué)中日友好臨床醫(yī)學(xué)研究所;2.中日友好醫(yī)院骨關(guān)節(jié)外科骨壞死與關(guān)節(jié)保留重建中心,北京100029)
體外震波對內(nèi)皮細胞影響的研究進展*
左偉1高福強2孫偉2**
(1.北京大學(xué)中日友好臨床醫(yī)學(xué)研究所;2.中日友好醫(yī)院骨關(guān)節(jié)外科骨壞死與關(guān)節(jié)保留重建中心,北京100029)
體外震波(extracorporealshock wave,ESW)是一種特殊形式的脈沖聲波。當(dāng)ESW以聲能的形式在皮膚、肌肉、脂肪、韌帶、肌腱及骨骼等具有不同聲抗特性的介質(zhì)界面?zhèn)鞑r,產(chǎn)生不同的機械作用力。細胞可以感受各種力學(xué)刺激并將其轉(zhuǎn)化為各種生物信號,從而影響細胞的增殖、分化、遷移、凋亡等生理功能[1]。ESW在臨床已廣泛應(yīng)用于治療足底筋膜炎、肱骨外上髁炎、肩關(guān)節(jié)鈣化性肌腱炎、骨不連、股骨頭缺血性壞死等疾病,并且臨床和動物實驗證實ESW具有抗炎、成血管、成骨、促進創(chuàng)面愈合等作用,然而ESW作用的具體機制還未完全闡明。
內(nèi)皮細胞襯貼于血管的腔面,持續(xù)受到血液流動產(chǎn)生的各種力學(xué)刺激。內(nèi)皮細胞能夠感受各種力學(xué)刺激并將其轉(zhuǎn)化為細胞內(nèi)生化信號,調(diào)節(jié)控制細胞生理功能。與此同時也和許多疾病的發(fā)生發(fā)展相關(guān)[2]。因此機械力學(xué)作為外部信號如何影響內(nèi)皮細胞生理功能的改變及機械力學(xué)導(dǎo)致的細胞內(nèi)生化信號的轉(zhuǎn)導(dǎo)機制成為近年的研究熱點。機械力學(xué)刺激作用于內(nèi)皮細胞通過激活力學(xué)感受器、信號傳導(dǎo)通路、基因和蛋白的表達,調(diào)節(jié)內(nèi)皮細胞生理功能。當(dāng)內(nèi)皮細胞受到具有固定方向的力學(xué)刺激(例如:動脈搏動性剪切力和單軸向拉伸力)時,只引起短暫的促炎癥和促增殖通路分子信號的激活。當(dāng)固定方向的機械刺激持續(xù)存在時,這些信號的傳導(dǎo)都受到抑制。當(dāng)受到?jīng)]有固定方向的機械刺激(例如:血管分支、結(jié)構(gòu)異常部位的湍流和相對無向拉伸力)時,將導(dǎo)致促炎癥和促增殖通路分子信號的持續(xù)激活。因此內(nèi)皮細胞對機械力學(xué)刺激的功能性反應(yīng),一方面構(gòu)成其對生理功能控制調(diào)節(jié)的一個關(guān)鍵因素,同時參與許多血管相關(guān)疾病的發(fā)病因素[3-6]。
研究表明細胞質(zhì)膜上的胞質(zhì)膜微囊,作為質(zhì)膜上平臺介導(dǎo)多種細胞功能,包括機械力學(xué)信號的傳導(dǎo)[7]、血液流動和壓力的改變導(dǎo)致胞質(zhì)微囊部位蛋白磷酸化水平發(fā)生改變[8]。微囊蛋白-1(caveolin-1,Cav-1)是微囊主要組成成分,Cav-1缺失的小鼠對機械刺激的生理反應(yīng)缺失[9]。內(nèi)皮細胞膜蛋白成分如離子通道、血管內(nèi)皮細胞生長因子受體-2(vascular endothelial grow th factor receptor-2,VEGFR-2)、G蛋白偶聯(lián)受體(G-protein coupled receptors,GPCRs)能感受并且傳導(dǎo)機械刺激。在剪切力作用下可誘導(dǎo)內(nèi)皮細胞膜K+通道的開放[10],并且導(dǎo)致舒血管物質(zhì)的釋放和基因的表達。同時研究表明剪切力導(dǎo)致鈣瞬變[11],而拉伸力導(dǎo)致內(nèi)皮細胞非選擇性陽離子通道的開放[12]。值得注意的是,機械刺激誘導(dǎo)的其他分子信號能夠間接活化離子通道。研究表明:在機械刺激開始的1 s,能夠激活內(nèi)皮細胞特定G蛋白偶聯(lián)受體,在機械刺激作用下通過GPCRs直接或間接活化G蛋白,進而引發(fā)細胞內(nèi)磷酸化過程。細胞膜表面原纖毛也是內(nèi)皮細胞的力學(xué)感受器之一,細胞實驗證明,具有纖毛結(jié)構(gòu)的內(nèi)皮細胞比不具有纖毛結(jié)構(gòu)的內(nèi)皮細胞對剪切力反應(yīng)更加強烈[13]。缺乏原纖毛的內(nèi)皮細胞不能將機械刺激轉(zhuǎn)化為內(nèi)皮細胞內(nèi)Ca2+和NO信號。
內(nèi)皮細胞膜表面糖萼不僅作為一個屏障來限制分子和白細胞黏附到內(nèi)皮表面,而且與內(nèi)皮細胞力學(xué)傳導(dǎo)相關(guān)。流體刺激調(diào)節(jié)糖萼的產(chǎn)生與分布[14]。當(dāng)在剪切作用24 h后,糖萼的組成成分,如硫酸乙酰肝素、硫酸軟骨素、磷脂酰肌醇聚糖等,表達增加[15]。當(dāng)用乙酰肝素酶去除糖萼后,流體刺激誘導(dǎo)的內(nèi)皮細胞反應(yīng)則顯著下降[16]。
整合素是內(nèi)皮細胞重要的力學(xué)感受器。在剪切力作用下,整合素與細胞外基質(zhì)配體在黏附斑處的結(jié)合是信號通路傳導(dǎo)的起始,并導(dǎo)致血管的舒張和血壓的調(diào)節(jié)[17]。黏附斑激酶是黏著斑重要組成部分,并且是細胞內(nèi)信號的傳導(dǎo)者。機械性牽張力能快速
增加局部黏著斑激酶(focal adhesion kinase,F(xiàn)AK)的磷酸化。研究表明FAK參與循環(huán)牽張力和剪切力誘導(dǎo)的內(nèi)皮細胞增殖、形態(tài)重構(gòu)和炎性反應(yīng)過程[18]。
2..1 ESW ESW作用于細胞參數(shù)選擇
根據(jù)震波產(chǎn)生的方式不同,可分為液電式、電磁式、電壓式,按能量高低分為低能量ESW(0.1~0.001m J/mm2)和高能量ESW(>0.2m J/mm2)。在應(yīng)用ESW作用于體外培養(yǎng)細胞時通常采用低能量級,但作用的確切參數(shù)目前尚未有統(tǒng)一標(biāo)準(zhǔn)。
Ha等[20]使用能流密度為0.012~0.045m J/mm2的ESW 1000次作用于人臍靜脈內(nèi)皮細胞(human umbilical vein endothelial cells,HUVECs)時細胞形態(tài)、凋亡率、增殖率與對照組無明顯差別。能流密度為0.09 m J/mm2作用1000次時,細胞死亡率很高,當(dāng)達到0.016m J/mm21000次時,幾乎所有細胞與培養(yǎng)皿底部分離并死亡。Takahiro等[19]將HUVECs分為四組,每組分別使用不同能流密度的ESW,分別為0.02、0.09、0.18和0.35 m J/mm2,每組各作用500次后,在相同條件下培養(yǎng)24 h,檢測血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial grow th factor,VEGF)和fms樣酪氨酸激酶(fins-like tyrosine kinase-1,F(xiàn)LT-1)mRNA的表達情況。結(jié)果顯示:在能流密度為0.09m J/mm2的ESW作用500次時,VEGF和FLT-1的mRNA表達為最高水平。
Sansone等[21]將人微血管內(nèi)皮細胞(humanm icrovascular endothelial cell,HMECs)分為兩組,分別使用0.01和0.02m J/mm2的ESW,相同能流密度組按作用次數(shù)200和800劃分小組。結(jié)果顯示:0.01m J/mm2的ESW作用200次時ESW促血管生成作用最強。
Zhang等[22]在研究ESW作用于細胞最佳參數(shù)選擇的實驗中,將內(nèi)皮組細胞分為5組。每組分別使用不同能流密度的ESW,同時每個大組又根據(jù)接受ESW作用次數(shù)的不同分為4小組,48 h后檢測血管生成因子、凋亡因子、炎癥介質(zhì)、趨化因子的表達水平。結(jié)果顯示:當(dāng)細胞受到能流密度為0.04~0.13m J/mm2的ESW刺激作用時,血管生成因子的表達增加,而細胞的凋亡因子表達下降。當(dāng)作用于細胞的ESW能流密度為0.16m J/mm2時,血管生成因子表達下降,細胞凋亡因子表達增加。當(dāng)作用能量相同而次數(shù)不同時,表現(xiàn)出的作用趨勢類似。作用次數(shù)相對少時,細胞因子的表達增加,凋亡因子的表達減少。作用次數(shù)多時,抑制細胞因子的表達且導(dǎo)致細胞的凋亡。由此推斷:ESW作用于體外培養(yǎng)細胞最適宜參數(shù)為0.1~0.13m J/mm2,作用次數(shù)為200~300次。
2.2 ESW ESW促內(nèi)皮細胞血管形成作用
在臨床和活體實驗中應(yīng)用ESW表明,ESW具有促進血管形成作用。Zimpfer等[23]用ESW刺激小鼠心肌梗死模型心外膜,分別在第六周和第十四周通過組織學(xué)定量檢測法顯示,ESW能增加梗死心肌模型微血管密度。Stojadinovic等[24]用ESW作用于小鼠缺血皮膚模型,6 h后檢測到血管生成因子的表達增加,并且在第4天和第7天之后觀察到血管形成增加。Oi等[25]將ESW作用于缺血骨骼肌,28 d后觀察到毛細血管密度的增加。根據(jù)上述描述,ESW作用于組織細胞促進血管形成的可能機制為ESW通過促進VEGF和一氧化氮(nitric oxide,NO)的表達增加促進血管形成。然而在Sansone等[21]用能流密度為0.01m J/mm2ESW 200次作用于3D基質(zhì)培養(yǎng)模型中的HMECs,12 h后觀察到毛細血管連接的顯著增加,但在作用早期3 h并未檢測到血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)和內(nèi)皮型一氧化氮合酶(endothelial nitric oxide synthase,eNOS)的表達增加,在作用后3 h檢測發(fā)現(xiàn),凋亡過程相關(guān)基因(BAX、BCL2LI、GADD45A、PRKCA)、細胞周期相關(guān)基因(CDKN2C、CEBPB、HK2、IRF1、PRKCA)、細胞黏附分子(ICAM-l)、癌基因(JUN、WNT1)表達下降。Nishida等[19]使用0.09m J/mm2的ESW 500次作用于HUVECs,24 h后觀察到VEGF和FLT-1表達的顯著增加。Zhang等[22]用0.012~0.045m J/mm2的ESW 1000次作用于HUVECs,發(fā)現(xiàn)ESW能激活磷脂酰肌醇3激酶(phosphatidylinositol 3-kinase,PI3K)、蛋白激酶B(protein kinase B,Akt)、eNOS和細胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(extracellular regulated protein kinases,Erk1/2)的磷酸化,并進一步證實ESW作用于HUVECs通過激活由VEGF-2、血小板-內(nèi)皮細胞黏附分子(plateletendothelial cell adhesionmolecule-1,PECAM-1)和VE-鈣黏著蛋白組成的機械感覺傳導(dǎo)復(fù)合體,使PI3K、Akt、eNOS和Erk1/2發(fā)生磷酸化,繼而導(dǎo)致血管內(nèi)皮生長因子Akt、eNOS、KLF2、KLF4、MTI-MMP、MMP10、NP4A1的表達增加導(dǎo)致成血管效應(yīng)。
2.3 ESW ESW作用于內(nèi)皮細胞的抗炎癥反應(yīng)作用
ESW在臨床成功應(yīng)用于治療肌肉結(jié)締組織炎性疾病,例如足底筋膜炎、肱骨外上髁炎、肩關(guān)節(jié)鈣化
性肌炎。ESW作用于機體產(chǎn)生抗炎作用的具體機制還未闡明,其可能機制為ESW促進細胞的NO生成增加。Mariotto等[26]用0.03m J/mm2的ESW 1000次作用于HUVECs,30m in后檢測到eNOS活性增加,且用共焦顯微鏡和特殊的NO染色探針證實細胞內(nèi)NO生成增加,并且當(dāng)HUVECs與eNOS抑制劑(LNAME)共同培養(yǎng)時,NO的生成受到顯著抑制,并通過使用ESW作用于脂多糖(LPS)或干擾素(IFN-γ)與HUVECs共同培養(yǎng)制作的細胞炎癥反應(yīng)模型,證實eNOS的激活導(dǎo)致NO生成的增加,抑制了核轉(zhuǎn)錄因子(nuclear factorκgene binding,NF-κB)的活化,由此抑制了炎癥因子基因的表達,產(chǎn)生抗炎作用。
最近有文獻報道,ESW的抗炎作用可能與模式識別受體(toll-like receptor 3,TLR3)的活化有關(guān)。TLR3是固有免疫系統(tǒng)的組成部分,參與識別來自病毒的雙鏈RNA和DNA片段,并且能夠探測到鄰近細胞釋放的細胞溶質(zhì)RNA。Holfeld等[27]使用0.08m J/mm2的ESW 250次作用于HUVECs,后分別在2 h、4 h、6 h檢測TLR3、CYP-B、CYP-A、IL-6、IL-10和VCAM的表達情況,推測ESW作用于HUVECs產(chǎn)生抗炎作用的可能機制為TLR3活化導(dǎo)致的炎癥調(diào)節(jié)三階段反應(yīng)。第一階段由IL-6介導(dǎo)促炎癥反應(yīng)階段。第二階段IL-10表達的逐漸增加并抑制IL-6介導(dǎo)的炎癥反應(yīng)階段。第三階段IL-10表達的持續(xù)增加,IL-6表達下降,炎癥反應(yīng)受到抑制階段。
2.4 ESW ESW對內(nèi)皮細胞的增殖、凋亡、遷移作用的影響
ESW在近些年來被用于治療骨不連和骨壞死,成為骨科領(lǐng)域一個新興的研究熱點,最近又被用于治療缺血性心肌疾病和下肢缺血性疾病,以促進局部組織血管新生。ESW促進組織血管再生的作用機制還未完全闡明。ESW作用于內(nèi)皮細胞影響細胞的增殖、凋亡、遷移以至進一步影響血管的再生。Ma等[29]使用低能量體外震波(low-energy extracorporeal shock wave,LE-ESW)作用于小鼠,研究結(jié)果表明,LE-ESW通過激活內(nèi)皮細胞一氧化氮合酶促進VEGF的表達增加,VEGF是參與血管化調(diào)控的主要生長因子,它可觸發(fā)一系列的修復(fù)反應(yīng),能有效地促進血管內(nèi)皮細胞增殖及遷移,促進新血管的形成。Hayashi等[30]使用0.26 m J/mm2的ESW 2000次作用于股骨頭壞死動物模型,實驗發(fā)現(xiàn)與對照組相比實驗組VEGF在作用后第2、4、8、12周表達明顯增加,且在停止使用ESW作用后實驗組與對照組VEGF表達無明顯差別。與此同時,實驗組VEGF基因表達明顯高于對照組。Sansone等[21]使用ESW作用于HMECs發(fā)現(xiàn)ESW可抑制內(nèi)皮細胞的凋亡從而促進血管再生。然而在Ha等[20]的體外研究中使用0.012~0.045m J/mm2的ESW 1000次作用于HUVECs后檢測內(nèi)皮細胞的增殖和凋亡情況,發(fā)現(xiàn)ESW作用組與對照組無明顯差別,但ESW作用組內(nèi)皮細胞的遷移率顯著高于對照組,顯示ESW促進內(nèi)皮細胞的遷移。
組織細胞的生存不僅受到復(fù)雜的生化環(huán)境的影響,而且面臨各種機械力學(xué)作用。機械力學(xué)刺激對細胞生理功能平衡的調(diào)節(jié)有重要作用,是組織生理平衡和某些疾病發(fā)生發(fā)展的關(guān)鍵[28]。內(nèi)皮細胞在體內(nèi)始終受到血液流體力學(xué)作用,機械力學(xué)作用對血管內(nèi)皮細胞的生理功能以及相關(guān)疾病的發(fā)病機制有著十分重要的影響。體外震波作為一種新型非侵入性治療方法,其在臨床應(yīng)用中的療效取得了廣泛的認(rèn)可,其產(chǎn)生作用的具體機制還未完全闡明。體外震波作為一種特殊形式的機械力學(xué)刺激對內(nèi)皮細胞的生理功能有重要影響。研究體外震波對內(nèi)皮細胞產(chǎn)生作用的具體機制,對于某些與內(nèi)皮細胞功能紊亂相關(guān)疾病的治療有重要意義。
[1]Vogel V.Mechanotrasduction involving multimodular proteins:converting force into biochem ical signals.Annu Rev Biophys BiomolStruct,2006,35:459-488.
[2]Chien S.Mechanotransduction and endothelial cell homeostasis:the w isdom of the cell.Am J Physiol Heart Circ Physiol,2007,292(3):H1209-1224.
[3]Reitsma S,Slaaf DW,Vink H,etal.Theendothelial glycocalyx:composition,functions,and visualization.Pflugers Arch,2007,454(3):345-359.
[4]Davies PF.Hemodynam ic shear stress and the endothelium in cardiovascular pathophysiology.Nat Clin Pract Cardiovasc Med,2009,6(1):16-26.
[5]Zaragoza C,Márquez S,Saura M.Endothelialmechanosensors of shear stress as regulators of atherogenesis.Curr Opin Lipidol,2012,23(5):446-452.
[6]Conw ay D,Schwartz MA.Lessons from the endothelial
junctional mechanosensory complex.F1000 Biol Rep, 2012,4:1.
[7]Zeng Y,Tarbell JM.The adaptive remodeling of endothelial glycocalyx in response to fluid shear stress.PLoS ONE, 2014,9(1):e86249.
[8]Radel C,Rizzo V.Integrinmechanotransduction stimulates caveolin-1 phosphorylation and recruitmentof Csk tomediate actin reorganization.Am J Physiol Heart Circ Physiol,2005,288(2):H 936-945.
[9]Yu J,Bergaya S,Murata T,etal.Directevidence for the role of caveolin-1 and caveolae inmechanotransduction and remodeling of blood vessels.J Clin Invest,2006,116(5): 1284-1291.
[10]Olesen SP,Clapham DE,Davies PF.Haemodynamic shear stress activates a K+current in vascular endothelial cells. Nature,1988,331(6152):168-170.
[11]Schwarz G,CallewaertG,DroogmansG,etal.Shear stressinduced calcium transients in endothelial cells from human umbilical cord veins.JPhysiol,1992,458:527-538.
[12]Popp R,Hoyer J,Meyer J,etal.Stretch-activated non-selective cation channels in the antilum inalmembrane of porcine cerebral capillaries.JPhysiol,1992,454:435-449.
[13]Hierck BP,van der Heiden K,Alkemade FE,etal.Primary cilia sensitize endothelial cells for fluid shear stress.Dev Dyn,2008,237(3):725-735.
[14]Yao Y,Rabodzey A,Dewey CF Jr.Glycocalyx modulates themotility and proliferative responseof vascularendothelium to fluid shear stress.Am JPhysiol Heart Circ Physiol, 2007,293(2):H1023-H1030.
[15]Zeng Y,Tarbell JM.The adaptive remodeling of endothelial glycocalyx in response to fluid shear stress.PLoS One, 2014,9(1):e86249.
[16]MochizukiS,Vink H,Hiramatsu O,etal.Roleof hyaluronic acid glycosam inoglycans in shear-induced endotheliumderived nitric oxide release.Am JPhysiol HeartCirc Physiol,2003,285(2):H722-H726.
[17]Frame MD,RiversRJ,A ltland O,etal.Mechanisms initiating integrin-stimulated flow recruitment in arteriolar networks.JAppl Physiol(1985),2007,102(6):2279-2287.
[18]Zebda N,Dubrovskyi O,Birukov KG.Focal adhesion kinase regulation of mechanotransduction and its impact on endothelial cell functions.M icrovasc Res,2012,83(1):71-81.
[19]Nishida T,Shimokaw a H,Oi K,et al.Extracorporeal cardiac shock wave therapy markedly ameliorates ischemia-induced myocardial dysfunction in pigs in vivo.Circulation, 2004,110(19):3055-3061.
[20]Ha CH,Kim S,Chung J,etal.Extracorporeal shock wave stimulatesexpression of theangiogenic genesviamechanosensory complex in endothelial cells:mimetic effect of fluid shear stress in endothelial cells.Int JCardiol,2013,168 (4):4168-4177.
[21]Sansone V,D'Agostino MC,Bonora C,et al.Early angiogenic response to shock waves in a three-dimensionalmodel of humanm icrovascular endothelial cell culture(HMEC-1).JBiol RegulHomeost Agents,2012,26(1):29-37.
[22]Zhang X,Yan X,Wang C,et al.The dose-effect relationship in extracorporeal shock wave therapy:the optimal parameter for extracorporeal shock wave therapy.JSurg Res, 2014,186(1):484-492.
[23]Zimpfer D,Aharinejad S,Holfeld J,etal.Direct epicardial shock w ave therapy improves ventricular function and induces angiogenesis in ischem ic heart failure.JThorac Cardiovasc Surg,2009,137(4):963-970.
[24]Stojadinovic A,Elster EA,Anam K,et al.Angiogenic response to extracorporeal shock wave treatment in murine skin isografts.Angiogenesis,2008,11(4):369-380.
[25]Oi K,Fukumoto Y,Ito K,etal.Extracorporeal shock wave therapy ameliorates hindlimb ischem ia in rabbits.Tohoku J Exp Med,2008,214(2):151-158.
[26]Mariotto S,Cavalieri E,Amelio E,et al.Extracorporeal shock w aves:from lithotripsy to anti-inflammatory action by NO production.Nitric Oxide,2005,12(2):89-96.
[27]Holfeld J,Tepek?ylüC,Kozaryn R,etal.Shockwave therapy differentially stimulates endothelial cells:im plications on the control of inflammation via toll-Like receptor 3.Inflammation,2014,37(1):65-70.
[28]Huang H,Kamm RD,Lee RT.Cellmechanics and mechanotransduction:pathways,probes,and physiology.Am J PhysiolCell Physiol,2004,287(1):C1-C11.
[29]Ma HZ,Zeng BF,Li XL.Upregulation of VEGF in subchondral bone of necrotic femoral heads in rabbitswith use of extracorporeal shock waves.Calcif Tissue Int,2007,81 (2):124-131.
[30]Hayashi D,Kawakam iK,Ito K,et al.Low-energy extracorporeal shock wave therapy enhances skin wound healing in diabeticm ice:a critical role of endothelial nitric oxide synthase.Wound Repair Regen,2012,20(6):887-895.
2095-9958(2015)04-0 187-04
10.3969/j.issn.2095-9958.2015.02-020
國家自然科學(xué)基金面上項目(項目編號:81372013);中日友好醫(yī)院面上項目(項目編號:2013-MS-27);中日友好醫(yī)院青年科技英才計劃(項目編號:2014-QNYC-A-06)
**通信作者:孫偉,E-mail:sun887@163.com