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      益生菌與動物腸道自由基的關(guān)系

      2014-12-21 05:32:52王進(jìn)波初佳麗齊莉莉楊在賓
      動物營養(yǎng)學(xué)報(bào) 2014年12期
      關(guān)鍵詞:益生菌自由基抗氧化

      王進(jìn)波 初佳麗, 齊莉莉 楊在賓

      (1.浙江大學(xué)寧波理工學(xué)院,寧波 315100;2.山東農(nóng)業(yè)大學(xué),泰安 271018)

      腸道是物質(zhì)與能量代謝十分旺盛的器官,氧化還原反應(yīng)劇烈,細(xì)胞代謝產(chǎn)生大量自由基。一定水平的自由基對腸道免疫功能具有積極作用,但過量自由基會引起腸道損傷、脂質(zhì)過氧化、加速細(xì)胞衰老等一系列危害。腸道益生菌對動物營養(yǎng)物質(zhì)的消化吸收、腸道組織發(fā)育、免疫調(diào)節(jié)及抑制致病菌的侵染等有著重要生理作用。益生菌調(diào)節(jié)動物腸道生理功能的機(jī)制十分復(fù)雜,最近的研究發(fā)現(xiàn),益生菌可通過調(diào)控腸道自由基水平發(fā)揮重要生理作用。本文對益生菌在通過調(diào)控腸道自由基水平,既可發(fā)揮免疫調(diào)節(jié)作用,又防止對腸道氧化損傷的功能及其相關(guān)機(jī)制進(jìn)行了綜述。

      1 細(xì)菌誘導(dǎo)腸道組織產(chǎn)生自由基的機(jī)制

      腸黏膜上皮組織及細(xì)胞受到某些細(xì)菌刺激后,會產(chǎn)生活性氧自由基(ROS),這些 ROS參與腸道生理功能的調(diào)控。細(xì)菌誘導(dǎo)的腸道細(xì)胞ROS主要是由還原型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(NADPH)氧化酶家族(NADPH oxidase,NOX)催化合成的,NOX家族中NOX1和雙氧化酶(dual oxidase,DUOX)在腸道組織中表達(dá)豐度很高[1]。病原菌能夠刺激機(jī)體腸道組織產(chǎn)生并釋放大量ROS,這些ROS可以協(xié)助機(jī)體對抗病原菌侵染,同時(shí),也會引起嚴(yán)重的炎癥反應(yīng),造成腸黏膜損傷[2-3]。病原菌釋放游離的尿嘧啶堿基作為信號分子,通過G蛋白偶聯(lián)受體(G protein-coupled receptors,GPCRs),激活腸黏膜上皮細(xì)胞中的DUOX,誘導(dǎo)合成大量 ROS(圖 1)[3-5]。與病原菌不同,部分益生菌也能刺激腸道產(chǎn)生少量的ROS,這些ROS不僅不會損傷腸道,還對腸道維持正常的生理功能有益。Alam等[6]研究發(fā)現(xiàn),益生菌能夠通過刺激腸道吞噬細(xì)胞膜上的甲酰肽受體(formyl peptide receptors,F(xiàn)PRs),激活 NOX2,誘導(dǎo)機(jī)體腸道吞噬細(xì)胞產(chǎn)生 ROS。Leoni等[7]的研究指出,乳酸菌誘導(dǎo)的細(xì)胞ROS產(chǎn)生及細(xì)胞增殖依賴于腸上皮細(xì)胞的NOX1。Jones等[8]利用從果蠅腸道中分離的乳酸桿菌進(jìn)行的研究表明,該菌能夠通過激活NOX1誘導(dǎo)腸道組織產(chǎn)生釋放ROS,這些ROS可以刺激小鼠、果蠅等模型動物腸道干細(xì)胞的分化,促進(jìn)腸組織更新。Yan等[9]的研究則發(fā)現(xiàn),益生菌能夠通過產(chǎn)生可溶性蛋白成分,誘導(dǎo)宿主腸道合成一定量的ROS,有助于腸道細(xì)胞的存活及其生長增殖。益生菌的誘導(dǎo)腸道細(xì)胞產(chǎn)生ROS的機(jī)制與致病菌完全不同,其通過細(xì)胞壁上肽聚糖分子中的N-甲酰肽作用于腸黏膜細(xì)胞膜上的FPRs,激活細(xì)胞中的 NOX1,合成一定量的ROS(主要是超氧陰離子),這些ROS可以激活相關(guān)信號通路,刺激腸黏膜組織的更新(圖1)[3]。

      圖1 細(xì)菌誘導(dǎo)腸黏膜上皮細(xì)胞產(chǎn)生ROS的機(jī)制Fig.1 The mechanism of ROS released from intestinal epithelial cells induced by the bacteria[3]

      2 益生菌對腸道自由基的清除作用

      過量的自由基會引起腸道組織受損,腸黏膜通透性增加,進(jìn)而誘發(fā)腸黏膜潰瘍和炎癥反應(yīng);對腸道尚未發(fā)育完全的動物而言,自由基造成的腸黏膜損傷會導(dǎo)致其死亡[10-12]。腸道益生菌參與清除機(jī)體腸道代謝產(chǎn)生的自由基,從而保護(hù)腸道組織免于自由基的氧化損傷。益生菌產(chǎn)生的過氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)、含錳假性過氧化氫酶以及硫氧還蛋白還原酶、煙酰胺腺嘌呤二核苷酸氧化酶等還原酶具有清除ROS的作用[13-16]。腸道中的ROS主要包括超氧陰離子、過氧化氫(H2O2)和羥基自由基等,其中羥自由基的活性最強(qiáng),對細(xì)胞核酸、蛋白質(zhì)和脂類等均有很強(qiáng)的氧化性,其能夠顯著誘導(dǎo)益生菌抗氧化相關(guān)酶的表達(dá),激發(fā)益生菌的抗氧化能力[17]。

      Kullisaar等[17]從1名健康兒童的腸道菌群中分離得到2株抗氧化菌株,這2株菌對過氧化氫、超氧陰離子、羥自由基等活性氧具有明顯的抗性。韓偉等[18]從腌制蔬菜中分離的5株菌均表現(xiàn)較強(qiáng)的自由基清除能力,這些菌株對1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)、羥自由基等的清除率和脂質(zhì)過氧化的抑制率相對較高。白明等[19]研究了乳桿菌、雙歧桿菌、嗜熱鏈球菌和乳酸乳球菌等40株益生菌的抗氧化能力,結(jié)果證明,多數(shù)益生菌具有清除自由基的能力,但種屬和菌株間差別較大,其中乳酸乳球菌清除自由基能力最強(qiáng),嗜熱鏈球菌次之,乳桿菌、雙歧桿菌則比較弱。這些體外試驗(yàn)結(jié)果表明,益生菌能夠清除自由基,其主要機(jī)制可能是自由基刺激了菌體相關(guān)還原酶系的活性,從而激發(fā)了益生菌的還原能力,進(jìn)而清除自由基。

      體內(nèi)試驗(yàn)也表明,益生菌可提高動物機(jī)體的抗氧化能力,清除體內(nèi)代謝產(chǎn)生的自由基,發(fā)揮抗衰老作用。不同研究者以小鼠為模型,研究凝結(jié)芽孢桿菌、雙歧桿菌、德氏乳桿菌、富硒沼澤紅假單胞菌等益生菌的抗氧化作用,結(jié)果表明,其血清、肝臟、腦等組織中SOD、GSH-Px等相關(guān)還原酶的活性提高,丙二醛(MDA)含量下降,抗衰老相關(guān)基因的表達(dá)水平上調(diào)[20-26]。聞平等[27]的研究發(fā)現(xiàn),明串珠菌可提高家兔血清GSH-Px、SOD等還原酶的活性,降低血清MDA含量,并維持較長時(shí)間,這提示明串珠菌及其發(fā)酵產(chǎn)物有提高家兔抗氧化能力的作用。這些體內(nèi)研究結(jié)果提示,益生菌能夠刺激機(jī)體還原酶的表達(dá)或提高其活性,從而協(xié)助機(jī)體清除代謝產(chǎn)生的ROS,從而發(fā)揮抗氧化作用。

      3 自由基在益生菌發(fā)揮生理功能過程中的作用

      ROS的產(chǎn)生是吞噬細(xì)胞對細(xì)菌(包括致病菌和共生菌)免疫應(yīng)答的重要特征,這提示ROS在益生菌與宿主互作過程中發(fā)揮重要作用。腸道益生菌能夠誘導(dǎo)果蠅腸道組織氧化酶系統(tǒng)的表達(dá),刺激腸道細(xì)胞產(chǎn)生過氧化氫,進(jìn)而抑制病原菌在腸道中的增殖及其侵染作用,從而維持腸上皮的完整性[28-29];植物體受到細(xì)菌刺激時(shí)也會產(chǎn)生ROS,從而抑制病原菌對自身的侵染,保護(hù)自身組織、細(xì)胞免受病原破壞[2]。Kumar等[1]的研究發(fā)現(xiàn),鼠李糖乳酸桿菌(Lactobacillus rhamnosus GG,LGG)能夠顯著刺激Caco-2細(xì)胞釋放ROS,這些ROS能夠誘導(dǎo)細(xì)胞泛素-蛋白酶體信號途徑中泛素連接酶 12(ubiquitin conjugating enzyme 12,Ubc12)半胱氨酸殘基的氧化失活,進(jìn)而抑制核轉(zhuǎn)錄因子-κB(NF-κB)炎癥信號通路的活性,從而發(fā)揮其免疫調(diào)節(jié)作用。Lin等[30]利用小鼠進(jìn)行的體內(nèi)試驗(yàn)也得出相似的結(jié)論,LGG誘導(dǎo)的ROS能夠?qū)е录?xì)胞內(nèi)Ubc12失活,抑制泛素-蛋白酶體信號途徑活性,進(jìn)而阻止NF-κB炎癥信號通路激活,阻止細(xì)胞炎癥反應(yīng),并保護(hù)幼齡動物腸道黏膜組織的完整性,防止腹瀉等疾病的發(fā)生。

      此外,ROS還作為炎癥因子及生長因子刺激的細(xì)胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)過程的第二信使。在這一過程中,益生菌誘導(dǎo)產(chǎn)生的ROS會導(dǎo)致細(xì)胞信號通路相關(guān)蛋白的巰基迅速氧化失活,從而發(fā)揮第二信使功能。細(xì)胞內(nèi)的酪氨酸磷酸酶就是這樣一類受ROS調(diào)節(jié)的巰基蛋白酶,而酪氨酸磷酸酶是絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)、黏附斑激酶(focal adhesion kinase,F(xiàn)AK)和NF-κB信號通路的重要調(diào)節(jié)因子,這些信號通路在機(jī)體腸道免疫調(diào)節(jié)、細(xì)胞增殖和運(yùn)動等過程中發(fā)揮著重要作用(圖2)[31-32]。因此,腸道益生菌可通過刺激機(jī)體產(chǎn)生ROS,調(diào)節(jié)上述細(xì)胞信號通路,從而發(fā)揮相關(guān)生理調(diào)節(jié)作用。

      圖2 益生菌誘導(dǎo)的ROS在細(xì)胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)中的作用Fig.2 The roles of ROS induced by probiotics in cell signaling transduction [33]

      4 小結(jié)

      受到細(xì)菌等刺激后,產(chǎn)生釋放自由基是一種十分保守的免疫調(diào)節(jié)機(jī)制,從植物到高等動物均存在類似的機(jī)制。動物腸道中生存著大量微生物,這些微生物通過調(diào)節(jié)腸道細(xì)胞自由基的水平,影響相關(guān)細(xì)胞信號通路的活性,從而調(diào)節(jié)機(jī)體腸道生理功能,這是腸道益生菌發(fā)揮生理作用的重要機(jī)制。解析益生菌誘導(dǎo)及清除腸道自由基的機(jī)制,揭示自由基作為第二信使在益生菌刺激的細(xì)胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)過程中的作用,對全面了解腸道益生菌的免疫調(diào)節(jié)作用機(jī)理、探究腸道菌群與宿主健康的關(guān)系以及新型益生菌制劑的開發(fā)具有重要意義。但益生菌通過何種菌體成分、以何種互作方式激活腸道細(xì)胞信號通路誘導(dǎo)ROS的產(chǎn)生?益生菌參與調(diào)節(jié)維持腸道ROS的穩(wěn)態(tài)的機(jī)制如何?這一系列問題仍需要進(jìn)一步研究。

      [1] KUMAR A,WU H,COLLIER-HYAMS L S,et al.Commensal bacteria modulate cullin-dependent signaling via generation of reactive oxygen species[J].The EMBO Journal,2007,26(21):4457-4466.

      [2] KIM S H,LEE W J.Role of DUOX in gut inflammation:lessons from Drosophila model of gut-microbiota interactions[J].Frontiers in Cellular and Infection Microbiology,2013,3:116.

      [3] PATEL P H,MALDERA J A,EDGAR B A.Stimulating cROSstalk between commensal bacteria and intestinal stem cells[J].The EMBO Journal,2013,32(23):3009-3010.

      [4] LEE K A,KIM S H,KIM E K,et al.Bacterial-derived uracil as a modulator of mucosal immunity and gut-microbe homeostasis in Drosophila [J].Cell,2013,153(4):797-811.

      [5] LEE K A,LEE W J.Drosophila as a model for intestinal dysbiosis and chronic inflammatory diseases[J].Developmental& Comparative Immunology,2014,42(1):102-110.

      [6] ALAM A,LEONI G,WENTWORTH C C,et al.Redox signaling regulates commensal-mediated mucosal homeostasis and restitution and requires formyl peptide receptor 1[J].Mucosal Immunology,2014,7(3):645-655.

      [7] LEONI G,ALAM A,NEUMANN P A,et al.Annexin A1,formyl peptide receptor,and NOX1 orchestrate epithelial repair[J].The Journal of Clinical Investigation,2013,123(1):443-454.

      [8] JONES R M,LUO L,ARDITA C S,et al.Symbiotic lactobacilli stimulate gut epithelial proliferation via Nox-mediated generation of reactive oxygen species[J].The EMBO Journal,2013,32(23):3017-3028.

      [9] YAN F,CAO H,COVER T L,et al.Soluble proteins produced by probiotic bacteria regulate intestinal epithelial cell survival and growth[J].Gastroenterology,2007,132(2):562-575.

      [10] TOMITA T,SADAKATA H,TAMURA M,et al.Indomethacin-induced generation of reactive oxygen species leads to epithelial cell injury before the formation of intestinal lesions in mice[J].Journal of Physiology and Pharmacology,2014,65(3):435-440.

      [11] PERRONE S,TATARANNO M L,SANTACROCE A,et al.The role of oxidative stress on necrotizing enterocolitis in very low birth weight infants[J].Current Pediatric Reviews,2014,10(3):202-207.

      [12] PERRONE S,TATARANNO M L,STAZZONI G,et al.Oxidative injury in neonatal erythrocytes[J].The Journal of Maternal-Fetal& Neonatal Medicine,2012,25(Suppl.5):104-108.

      [13] BRUNO-BáRCENA J M,ANDRUS J M,LIBBY S L,et al.Expression of a heterologous manganese superoxide dismutase gene in intestinal lactobacilli provides protection against hydrogen peroxide toxicity[J].Applied and Environmental Microbiology,2004,70(8):4702-4710.

      [14] ROCHAT T,GRATADOUX JJ,GRUSSA,et al.Production of a heterologous nonheme catalase by Lactobacillus casei:an efficient tool for removal of H2O2and protection of Lactobacillus bulgaricus from oxidative stress in milk[J].Applied and Environmental Microbiology,2006,72(8):5143-5149.

      [15] SERRANO L M,MOLENAAR D,WELS M,et al.Thioredoxin reductase is a key factor in the oxidative stress response of Lactobacillus plantarum WCFS1[J].Microbial Cell Factories,2007,6(1):29.

      [16] TALWALKAR A,KAILASAPATHY K,HOURIGAN J,et al.An improved method for the determination of NADH oxidase in the presence of NADH peroxidase in lactic acid bacteria[J].Journal of Microbiological Methods,2003,52(3):333-339.

      [17] KULLISAAR T,ZILMER M,MIKELSAAR M,et al.Two antioxidative lactobacilli strains as promising probiotics[J].International Journal of Food Microbiology,2002,72(3):215-224.

      [18] 韓偉,劉文群,黃麗嬋,等.5株微生物抗氧化作用的初步研究[J].食品與機(jī)械,2008,24(5):45-47,51.

      [19] 白明,孟祥晨.益生菌抗氧化活性及菌體抗氧化相關(guān)成分的分析[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2009,35(5):6-11.

      [20] 劉鋒,張娟娟,張海,等.凝結(jié)芽孢桿菌TBC169株對亞急性衰老模型小鼠的抗衰老作用[J].中國老年學(xué)雜志,2009,29(4):433-436.

      [21] 王躍,張宏娟,劉明方,等.雙歧桿菌脂磷壁酸抗氧化作用的實(shí)驗(yàn)研究[J].中國老年學(xué)雜志,2007,27(13):1254-1257.

      [22] 陳施羽.小白鼠腸道菌群中乳酸菌的篩選及其抗衰老作用初探[D].碩士學(xué)位論文.成都:四川師范大學(xué),2007:1-66.

      [23] 王挺,李弋.雙歧桿菌對D-半乳糖致衰老小鼠的抗衰老作用[J].中國老年學(xué)雜志,2007,27(1):45-48.

      [24] AKYOL S,MAS M R,COMERT B,et al.The effect of antibiotic and probiotic combination therapy on secondary pancreatic infections and oxidative stress pa-rameters in experimental acute necrotizing pancreatitis[J].Pancreas,2003,26(4):363-367.

      [25] 曩瀟瀟,何瑤,王曉煒,等.富硒沼澤紅假單胞菌對D-半乳糖致衰老小鼠抗氧化系統(tǒng)的影響[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2007,35(16):4850-4852.

      [26] 龔靈芝,陳小連,徐建雄.微生物源性抗氧化劑對高不飽和脂肪酸飼料致大鼠自由基損傷模型的影響[J].飼料工業(yè),2008,29(20):32-34.

      [27] 聞平,黃錫全,汪毅,等.L.SP.HXQ001 菌對家免抗氧化能力的影響[J].中國微生態(tài)學(xué)雜志,2002,14(2):76.

      [28] HA E M,OH C T,BAE Y S,et al.A direct role for dual oxidase in Drosophila gut immunity[J].Science,2005,310(5749):847-850.

      [29] HA E M,OH C T,RYU JH,et al.An antioxidant system required for host protection against gut infection in Drosophila[J].Developmental Cell,2005,8(1):125-132.

      [30] LIN P W,MYERS L E S,RAY L,et al.Lactobacillus rhamnosus blocks inflammatory signaling in vivo via reactive oxygen species generation[J].Free Radical Biology and Medicine,2009,47(8):1205-1211.

      [31] JONES R M,MERCANTE JW,NEISH A S.Reactive oxygen production induced by the gut microbiota:pharmacotherapeutic implications[J].Current Medicinal Chemistry,2012,19(10):1519-1529.

      [32] NEISH A S.Redox signaling mediated by the gut microbiota[J].Free Radical Research,2013,47(11):950-957.

      [33] NEISH A S,JONES R M.Redox signaling mediates symbiosis between the gut microbiota and the intestine[J].Gut Microbes,2014,5(2):250-253.

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