范巧寧,趙 珮,高曉梅,段玉峰
(陜西師范大學(xué)食品工程與營養(yǎng)科學(xué)學(xué)院,陜西西安710062)
槐米 產(chǎn)自山東省臨沂市費縣。
1,1-二苯基-2-苦苯肼自由基(DPPH·) 分析純,美國 Sigma公司產(chǎn)品;三羥基甲基氨基甲烷(Tris)、鄰苯三酚(焦性沒食子酸)、三氯化鐵(FeCl3)、六氰合鐵化鉀([K3Fe(CN)6])、三氯乙酸(TCA)、苯酚、濃硫酸、乙醇(95%)、抗壞血酸(VC)、磷酸二氫鈉、磷酸氫二雙氧水、硫酸亞鐵、水楊酸、鹽酸、FeCl3、CuSO4.5H2O、NaOH、NaOOC(CHOH)2COOK·4H2O、CCl4、異戊醇 均為國產(chǎn)分析純。
AL 204型電子天平 梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;RE52-3旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器 上海滬西分析儀器有限公司;722型可見分光光度計 上海光譜儀器有限公司;KQ 3200DE型超聲波清洗器 昆山市超聲波儀器有限公司;TU 1810紫外-可見分光光度計 北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;HH-8B型數(shù)顯恒溫水浴鍋 國華電器有限公司;HHW-21CU-600型電熱恒溫水槽 上海福瑪實驗設(shè)備有限公司;800B型離心機 上海安亭科學(xué)儀器廠;FD-1冷凍干燥機 北京博醫(yī)康技術(shù)公司;SHA-e型恒溫振蕩器 金壇市富華儀器有限公司;T6新世紀紫外-可見分光光度計 北京普析通用儀器有限責(zé)任公司。
1.2.1 槐米多糖提取工藝流程 原料處理:槐米烘干(60℃)→粉碎→過篩(60目)→脫脂(80%乙醇)
提取方法:超聲提取→抽濾→濃縮→醇沉(過夜)→離心(3000r/min,10min)得沉淀→溶解、脫蛋白(sevag法)→透析→冷凍干燥。
熱水浸提:取處理后的干槐米粉5g,置于錐形瓶中,按文獻[8]得到的最佳條件下提取,之后按超聲波提取工藝中的步驟進行處理。
1.2.2 提取分離 參考文獻[9]的方法。液料比30∶1(v/m),提取時間 42.60min,提取溫度 65.78℃。由于以往文獻沒有介紹超聲功率的影響,本實驗采用單因素實驗法,取5g搓碎槐米,按照上述條件進行超聲波提取醇沉法提取多糖,超聲功率分別為160、240、320、400W,三次平行實驗,苯酚硫酸法[19]測多糖含量,考查超聲功率對槐米多糖得率的影響情況。
1.2.3 多糖含量測定及得率計算 多糖含量的測定采用苯酚-硫酸法[10]。精確稱取粗多糖10.0mg溶解,定容至100mL容量瓶中,吸取該溶液1.0mL于試管中,依次加入5%苯酚溶液1.0、5.0mL濃硫酸,靜置30min,在490nm條件下測其吸光度值。重復(fù)三次,求其平均值。得率計算公式為:
式中,C:溶液中粗多糖濃度;V:溶液總體積;M:脫脂后槐米質(zhì)量。
1.2.4 定性測定
1.2.4.1 紫外光譜分析 蛋白質(zhì)、多肽、核酸等物質(zhì)在260~280nm處有明顯吸收峰,通過紫外掃描鑒別多糖經(jīng)過四次sevag法脫蛋白前后溶液中是否含有蛋白質(zhì)類雜質(zhì)。
1.2.4.2 酚類物質(zhì)檢測 參考文獻[11]的方法。
沈老七是河口最富有的莊園主,這垸里肥得流油的河沙地大多是他置下的。沈家大院有三進四十八大間,是這方圓百里最氣派的莊園。那時時局很亂,常常有兵隊路過河口,他家就成了不折不扣的兵站。雖然折了些錢財?shù)蚣乙策€算平安無事。不過,那年日本人打過長江駐進沈家大院以后卻引來了血光之災(zāi)。
1.2.4.3 還原性檢測 將干燥后的槐米粗多糖溶解于適量的蒸餾水中,得粗多糖溶液。取該溶液2mL,加入新配制的斐林試劑2mL,煮沸2min,觀察反應(yīng)中顏色的變化。
取粗多糖溶液2mL,加入新配制的雙縮脲2mL(先加A試劑2mL,再加B試劑3~4滴),在沸水浴中反應(yīng)2min,觀察反應(yīng)中顏色的變化[11]。
1.2.5 抗氧化活性測定 總還原能力測定:采用普魯士藍法[12],于1mL不同質(zhì)量濃度的粗多糖(0.125、0.25、0.5、1.0、2.0mg/mL)的樣品溶液分別依次加入為2.5mL的磷酸鹽緩沖液(pH=6.6)和2.5mL的鐵氰化鉀溶液(1%),混勻,50℃ 水浴20min后,再加入2.5mL、10% 的三氯乙酸溶液,然后以3000r/min離心分離10min,取上層清液2.5mL,依次加2.5mL蒸餾水和0.1%FeCl3溶液1mL,在700nm處測定吸光度值,吸光度越高,還原能力越強,三次平行,求其平均值,以VC和BHT作為陽性對照。
(DPPH·)清除能力的測定 于0.5mL不同質(zhì)量濃度的粗多糖(0.125、0.25、0.5、1.0、2.0mg/mL)的樣品溶液依次分別加入0.5mL蒸餾水、2mL 2×10-4mol/L DPPH溶液(用95%乙醇配制),充分搖勻,室溫避光反應(yīng)30min后在517nm處測定吸光度。以95%乙醇代替樣品液作為空白組;以95%乙醇代替DPPH·溶液作為對照組,并以VC和BHT作為陽性對照。按下式計算清除率:
式中,A1:加入樣品后的吸光值;A2:對照組吸光值;A0:空白組吸光值。
羥基自由基(·OH)清除能力的測定 采用芬頓(Fenton)體系鄰二氮菲-Fe2+氧化法進行測定[13]于10mL試管中依次加入2mL FeS04溶液(6mmol/L)、2mL 不同質(zhì)量濃度的粗多糖(0.125、0.25、0.5、1.0、2.0mg/mL)的樣品溶液、2mL H2O2(6mmol/L)溶液,充分搖勻,靜置10min。再加入6mmol/L的水楊酸溶液2mL,充分搖勻,靜置30min,在510nm處測定其吸光度值。陰性對照不加樣,以蒸餾水代替。以VC、BHT作陽性對照,每個處理試樣均做三個平行實驗。
計算公式:
式中,A1:加入樣品后的吸光值;A2:樣品本底吸光值;A0:空白吸光值。
式中:A0-鄰苯三酚的自氧化速率;A-加入多糖樣品后鄰苯三酚的自氧化速率。
超聲功率對多糖得率的影響結(jié)果如下:
由圖1知,超聲功率的大小對槐米多糖得率影響不大,超聲功率為320W時,得率最大,得率為1.2%,每個水平進行三次平行實驗(p=0.009<0.01),但超聲功率過高會導(dǎo)致多糖降解,因此,選擇320W為較理想。
圖1 超聲功率對多糖得率的影響Fig.1 Effect of ultrasonic power on the yield of polysaccharides
測定葡萄糖標準曲線如圖2,線性回歸方程為:Y=0.0922X+0.0171,相關(guān)系數(shù) R2=0.9998。
圖2 葡萄糖含量標準曲線Fig.2 Standard curve of polysaccharide
超聲提取:最佳工藝為液料比30.00mL·g-1,提取時間42.60min,提取溫度65.78℃,超聲功率320W,該條件下槐米多糖得率為1.52%;熱水浸提:最佳工藝為提取溫度90℃,料水質(zhì)量比15mL·g-1,提取時間90min,所得槐米粗多糖的得率為1.25%,超聲波提取法比熱水浸提法得率提高了21.6%。由于經(jīng)過了四次脫蛋白,多糖有所損失,因此,測得的槐米多糖得率比以前文獻報道的低一些。
圖3所示:在波長260nm無吸收峰,280nm有吸收峰。說明多糖中不含核酸,但含有蛋白質(zhì)(圖3a);四次脫蛋白后,280nm吸收峰消失,說明已將蛋白清除(圖3b)。
圖3 紫外光譜圖Fig.3 The ultraviolet spectrogram
由表1知:槐米多糖經(jīng)過sevag脫蛋白后,定性反應(yīng)均為陰性,即槐米多糖中無可溶性還原性多糖、游離的蛋白質(zhì)、酚類物質(zhì)。
表1 定性實驗結(jié)果Table 1 The qualitative reaction
2.6.1 總還原能力 抗氧化物質(zhì)的抗氧化活性與其還原力存在直接的聯(lián)系,還原力越強,抗氧化性越強。通常采用鐵氰化鉀氧化樣品來表征還原力,體系中Fe3+在抗氧化劑的促進下變成 Fe2+,形成的Fe2+在700nm處有吸收峰檢出。最終測定的吸光值越大,還原力越強[14]。由圖4可知,超聲提取槐米多糖與水提多糖的還原力與粗多糖質(zhì)量濃度成正相關(guān),與VC還原力相差較大,說明槐米粗多糖的還原力較弱,明顯低于 VC和BHT的還原力。另外,超聲提取所得槐米多糖的還原力略強于水提多糖,當質(zhì)量濃度高于1mg/mL時,超聲提取多糖增加幅度較水提多糖高一些。dps軟件對實驗數(shù)據(jù)分析表明:超聲提取槐米多糖與水提多糖的還原力相比較p=0.0034<0.01。各個水平進行三次平行實驗,Duncan新復(fù)極差法分析:BHT的還原力(p=0.009)達到極顯著水平,VC、超聲提取槐米多糖、水提多糖的還原力(p<0.05)為顯著。
圖4 槐米多糖的總還原能力Fig.4 Reducing power of Flos Sophora polysaccharides
2.6.2 對DPPH自由基的清除作用 DPPH法是評價抗氧化活性的常用方法,抗氧化物質(zhì)可直接作用于DPPH自由基,使其顏色變淺,根據(jù)吸光度的變化可測定物質(zhì)的抗氧化活性[15]。圖5所示,超聲提取所得槐米多糖清除DPPH自由基的能力優(yōu)于水提槐米多糖,但兩者的清除能力都高于BHT,低于VC。隨著質(zhì)量濃度成倍增加,VC、超聲提取多糖對DPPH·清除作用趨于平緩,相比之下,超聲提取多糖的清除作用變化較大。在質(zhì)量濃度低于0.25mg/mL時,超聲提取多糖與水提多糖對DPPH自由基的清除能力接近,而當質(zhì)量濃度高于0.25mg/mL時,與水提多糖相比,超聲提取多糖上升較快。但在所選質(zhì)量濃度范圍內(nèi),其清除能力低于60%。dps軟件對實驗數(shù)據(jù)分析表明:超聲提取槐米多糖與水提多糖清除DPPH自由基的能力相比較p=0.0432<0.05。各個水平進行三次平行實驗,Duncan新復(fù)極差法分析知:BHT、水提多糖、超聲提取槐米多糖、VC對DPPH·清除能力(0.01≤p<0.05)均在顯著水平范圍。
圖5 槐米粗多糖對DPPH自由基的清除效果Fig.5 Scavenging effect of crude polysaccharides from Flos Sophora on DPPH radicals
圖6 槐米粗多糖對羥基自由基的清除效果Fig.6 Scavenging activity of crude polysaccharides from Flos Sophora on hydroxyl radical
2.6.3 對·OH的清除作用 多糖分子上具有還原性的半縮醛羥基,可將自由基還原,達到阻止自由基連鎖反應(yīng)的目的,圖6所示,槐米粗多糖的清除·OH的能力與其質(zhì)量濃度正相關(guān)。在濃度達到2mg/mL時,VC對·OH的清除可達到98.4%,說明超聲提取粗多糖和水提多糖對·OH的清除作用都與多糖濃度有著較大的依賴關(guān)系,隨著粗多糖濃度的增加,·OH清除效果也隨之增加,超聲提取粗多糖比水提多糖的增加幅度大,但當濃度達到2mg/mL時,兩者的清除能力相當,清除率達到75.4%。說明高濃度的槐米粗多糖對·OH也有著明顯的清除作用,能夠有效的抗氧化。dps軟件分析表明:超聲提取槐米多糖與水提多糖清除·OH的能力相比較p=0.0392<0.05。各個水平進行三次平行實驗,結(jié)果表明:Duncan新復(fù)極差法分析p值大小為:BHT(p<0.001)<水提多糖(p<0.01)<超聲提取槐米多糖(p<0.01)<VC(p<0.01),即BHT對·OH的清除能力呈極高顯著,其余三個處理均達到了極顯著水平。
在相同質(zhì)量濃度下,超聲提取所得槐米多糖的抗氧化活性優(yōu)于水提槐米多糖,其原因可能有:超聲提取法大大縮短了提取時間,而且提取過程中無化學(xué)反應(yīng),使得在短時間內(nèi)多糖生物活性沒有損失[18];兩種多糖的抗氧化活性的差異還可能與不同提取方式所導(dǎo)致多糖分子的單糖組成及糖苷鍵型不同有關(guān)[19]。
圖7 槐米粗多糖對·的清除效果Fig.7 Scavenging effect of crude polysaccharides from Flos Sophora on superoxide anion radicals
2.6.5 半數(shù)清除質(zhì)量濃度(EC50)測定結(jié)果 作為評價抗氧化能力的指標EC50,指清除率為50%時所需樣品的質(zhì)量濃度。所需質(zhì)量濃度越低,表明半清除率越高,清除效果越好。由表2知,對自由基清除的EC50值排序為:BHT>水提多糖>超聲提取多糖>VC,這說明在相同質(zhì)量濃度下,超聲提取所得槐米多糖的自由基清除能力要明顯高于水提多糖。因此,超聲提取所得槐米多糖具有較好的抗氧化活性。
表2 多糖和 VC的EC50值Table 2 The value of EC50on polysaccharides and VC
[1]吳笳笛.多糖的作用及其研究進展[J].沈陽師范大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2008,26(2):221-223.
[2]Nakashima H,Kido Y,Kobayashi N,et al.Antiretroviral activity in a marine red alga:reverse transcriptase inhibition by an aqueous extract of Schizymenia pacifica[J].J Cancer Res Clin Oncol,1987,113(5):413.
[3]張昕,張強,梁彥龍.香菇多糖的抗腫瘤和降糖作用機制的研究進展[J].中國藥事,2008,22(2):149-154.
[4]Philip H,Clifford T,Lynnette R F.Effects of two contrasting dietary fiberson starch digestion,short-chain fatty acid production and transit time in rats[J].Journal of the Science of Food and Agriculture,2000,80:2089-2095.
[5]Marguerite R.Main properties and current applications of some polysaccharides as biomaterials[J].Polym Int,2008,57:397-430.
[6]劉芳,鄭育聲,尹學(xué)瓊.灰葉馬尾藻多糖的提取及其生物活性[J].食品科學(xué),2013,34(3):93-96.
[7]龔濤,王曉輝,趙靚,等.枸杞多糖抗氧化作用的研究[J].生物技術(shù),2010,20(1):84-86.
[8]周穎,夏新奎.槐米多糖的提取和純化工藝研究[J].湖北農(nóng)業(yè)科學(xué),2011,50(15):3161-3163.
[9]李納新.星點設(shè)計-響應(yīng)面法優(yōu)化超聲波提取槐米多糖的工藝[J].中國藥師,2013,16(12):1809-1811.
[10]江 培,何杏,王金宏.槐米中多糖的提取和含量測定[J].黑龍江醫(yī)藥,2013,26(2):166-168.
[11]孫宇婧,韓濤,卞科,等.山藥蛋白純化條件及其理化方法鑒定[J].中國糧油學(xué)報,2011,26(3):81-85.
[12]Oyaizu M.Antioxidative activities of browning products of glucosamine fractionated by organicsolventand thin layer chromatography[J].Nippon Shokuhin Kogyo Gakkaishi,1988,35:771-775.
[13]張娥珍,辛明.鐵皮石斛超微粉體外抗氧化性研究[J].食品科技,2014,39(1):84-88.
[14]Isabel C F R Ferreira,Maria-Joao R P Queiroz,Miguel Vilas-Boas,et al.Evaluation of the antioxidant properties of diarylamines in the benzo[b]thiophene series by free radical scavenging activity and reducing power[J].Bioorganic &Medicinal Chemistry Letters,2006,1384-1387.
[15]崔麗霞,張瑩,鄭義,等.繡球菌多糖的提取工藝優(yōu)化及其抗氧化作用[J].食品工業(yè),2013,34(6):24-28.
[16]趙玉紅,金秀明,韓睿,等.鹿茸多糖分離純化及抗氧化活性研究[J].食品工業(yè)科技,2012,33(12):155-158.
[17]李朝陽,李珊,劉魁,等.蒜多糖的分離純化及抗氧化性的研究[J].河北科技大學(xué)學(xué)報,2007,28(3):243-346.
[18]金迪,梁英,孫工兵,等.植物多糖提取技術(shù)的研究進展[J].黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)學(xué)報,2011,23(5):76-79.
[19]涂宗財,寇玉,王輝,等.荷葉多糖的超聲波輔助提取和抗氧化活性[J].食品科學(xué),2013,34(16):108-112.