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    沉默Bmi-1基因表達對人小細胞肺癌細胞H1963增殖與侵襲的抑制作用Δ

    2014-12-03 03:07:44饒進軍何關(guān)生毛楠呂琳臘蕾南方醫(yī)科大學藥學院廣州5055廣州醫(yī)科大學附屬第二醫(yī)院藥學部廣州5060廣州市番禺中心醫(yī)院藥學部廣州5400南方醫(yī)科大學附屬南方醫(yī)院藥學部廣州5055
    中國藥房 2014年33期
    關(guān)鍵詞:孔板細胞周期空白對照

    饒進軍,何關(guān)生,毛楠,呂琳,臘蕾(.南方醫(yī)科大學藥學院,廣州5055;.廣州醫(yī)科大學附屬第二醫(yī)院藥學部,廣州 5060;.廣州市番禺中心醫(yī)院藥學部,廣州 5400;4.南方醫(yī)科大學附屬南方醫(yī)院藥學部,廣州 5055)

    小細胞肺癌(Small cell lung cancer,SCLC)屬肺癌的一種未分化型,發(fā)病率約占肺癌的15%~20%,具有分裂指數(shù)高、倍增時間短、侵襲能力強等特點;確診時大多已出現(xiàn)遠處轉(zhuǎn)移,失去手術(shù)治療機會[1]。鉑類聯(lián)合依托泊苷是當前治療SCLC的一線方案,但由于對藥物的耐受以及腫瘤細胞的高轉(zhuǎn)移率,臨床治療效果很不滿意,患者的平均生存期僅有15~20個月[1]。Bmi-1屬多梳基因(Polycomb group genes,PcG)家族,具有遏制抑癌基因表達(如INK4a/ARF)、誘導細胞惡性轉(zhuǎn)化、維護腫瘤干細胞更新及促進癌細胞侵襲轉(zhuǎn)移等作用,被認為是腫瘤惡性標記之一[2],是一個潛在的抗腫瘤新靶點,目前已被試用于多種腫瘤[3-4]。近來研究發(fā)現(xiàn),98.4%的SCLC病例Bmi-1呈現(xiàn)過表達,顯示Bmi-1在SCLC細胞的生長繁殖中有重要作用[5],但對于Bmi-1能否作為治療SCLC的靶點,目前尚未見報道。本研究擬以人SCLC細胞H1963作為研究對象,通過小分子干擾RNA(siRNA)轉(zhuǎn)染Bmi-1得到沉默Bmi-1基因,研究沉默Bmi-1基因?qū)1963細胞增殖與侵襲的抑制作用,以期為SCLC的治療提供新思路和新方法。

    1 材料

    1.1 儀器

    倒置顯微鏡(日本Nikon公司);5810R型高速離心機(德國Eppendorf公司);M680型酶標儀、蛋白質(zhì)印跡法(Western Blot)印跡轉(zhuǎn)移電泳儀系統(tǒng)(美國Bio-Rad公司);FACS Calibur型流式細胞儀(美國BD公司)。

    1.2 藥品與試劑

    F12K培養(yǎng)基、胎牛血清(美國Gibco公司);siRNA(廣州銳博生物科技有限公司,純度:99.9%);陽離子脂質(zhì)體Lipofectamine RNA imax(美國 Invitrogen公司);MTT(美國Sigma公司);細胞周期檢測試劑盒(武漢碧云天生物技術(shù)研究所);Matrigel基質(zhì)膠(美國BD公司);兔抗人Bmi-1、抑癌基因(P16、P14)和上皮型鈣黏蛋白(E-cadherin)、神經(jīng)型鈣黏蛋白(N-cadherin)、波形蛋白(Vimentin)、基質(zhì)金屬蛋白酶2(MMP-2)、基質(zhì)金屬蛋白酶組織抑制因子1(TIMP-1)、β-肌動蛋白(β-actin)單克隆抗體和辣根過氧化物酶標記的羊抗兔IgG(IgG-HRP)二抗(美國CST公司);增強化學發(fā)光(ECL)試劑盒(美國Milipore公司);其余試劑均為國產(chǎn)分析純。

    1.3 細胞

    H1963細胞株購自中國科學院上海細胞庫。

    2 方法

    2.1 細胞培養(yǎng)與siRNA干擾

    H1963細胞常規(guī)培養(yǎng)于含10%胎牛血清的F12K培養(yǎng)基中,取對數(shù)生長期細胞經(jīng)胰酶消化,按每孔1.5×105個接種于6孔板,每孔5×103個接種于96孔板。siRNA轉(zhuǎn)染Bmi-1基因序列為5′-GGGAAAGUGUAUGAUAAAUTT-3′、陰性對照序列Neg-siRNA為5′-UUCUCCGAACGUGUCACGUTT-3′,以《廣州銳博生物科技有限公司siRNA產(chǎn)品說明》推薦的siRNA劑量(100 nmol/L),按照lipofectamine RNA imax操作說明書進行轉(zhuǎn)染。

    2.2 Western blot法檢測siRNA對H1963細胞Bmi-1的基因沉默效果

    取“2.1”項接種于6孔板的細胞,隨機分組,每組3個復孔,即試驗組(100 nmol/L特異性Bmi-1的siRNA轉(zhuǎn)染)、陰性對照組(100 nmol/L Neg-siRNA轉(zhuǎn)染)和空白對照組。細胞轉(zhuǎn)染48 h后分別提取細胞總蛋白,以二喹啉甲酸(BCA)法測定濃度。十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠(SDS-PAGE)電泳分離總蛋白后,半干法轉(zhuǎn)印至PVDF膜上,于含5%脫脂奶粉的TBST緩沖液中室溫封閉1 h,以1∶1000稀釋比例的一抗4℃孵育過夜。TBST緩沖液洗滌5 min×3次后用1∶2 000稀釋的IgG-HRP二抗室溫孵育1 h,TBST緩沖液洗膜5 min×3次,ECL顯色后,X光膠片曝光成像。將膠片進行掃描,蛋白表達強度用目的蛋白條帶的灰度和內(nèi)參β-actin蛋白條帶灰度的比值表示,蛋白條帶灰度采用Gel-Pro analyzer 4.0軟件進行分析。

    2.3 MTT法檢測沉默Bmi-1基因?qū)毎鲋衬芰Φ挠绊?/h3>

    取“2.1”項接種于96孔板的細胞,隨機分組同“2.2”項,每組6個復孔。各組細胞在轉(zhuǎn)染后1、2、3、4、5 d分別每孔加MTT(5 mg/ml)10 μl,4 h吸出孔內(nèi)液體,每孔加入二甲基亞砜(DMSO)150 μl,震蕩10 min后檢測570 nm波長下的光密度(OD)值,并按公式計算抑制率(%)=(1-給藥組平均OD值/空白對照組平均OD值)×100%。

    2.4 流式細胞儀檢測沉默Bmi-1基因?qū)毎芷诜植嫉挠绊?/h3>

    取“2.1”項接種于6孔板的細胞,隨機分組同“2.2”項,每組3個復孔。各組細胞轉(zhuǎn)染48 h后,收集細胞,磷酸鹽緩沖液(PBS)洗滌,調(diào)整細胞濃度為2×105L-1后用70%乙醇4℃保存過夜,PBS洗去固定液后,加入500 μl碘化丙啶染色液,37℃避光30 min,流式細胞儀檢測細胞周期分布情況。

    2.5 Transwell侵襲試驗檢測沉默Bmi-1基因?qū)毎忠u能力的影響

    取“2.1”項接種于6孔板的細胞,隨機分組同“2.2”項,每組3個復孔。各組細胞轉(zhuǎn)染48 h后胰酶消化成單個細胞,無血清的F12K培養(yǎng)基洗2次,調(diào)整細胞濃度為3×105ml-1。將Matrigel膠(預先以DMEM培養(yǎng)基按1∶8稀釋)按每孔50 μl均勻鋪于Transwell小室中,在上室加入100 μl細胞懸液,在下室加入600 μl含10%胎牛血清的F12K培養(yǎng)基。培養(yǎng)24 h后,取出上室用棉簽將未遷移過去的上室內(nèi)表面的細胞輕輕拭去,甲醇固定細胞,結(jié)晶紫染色,倒置顯微鏡下取5個視野(×200)計數(shù)穿膜細胞平均值。

    2.6 Western Blot法檢測沉默Bmi-1基因?qū)16、P14、E-cadhe-rin、N-cadherin、Vimentin、MMP-2、TIMP-1蛋白表達的影響

    取“2.1”項接種于6孔板的細胞,隨機分組同“2.2”項,每組3個復孔。各組細胞轉(zhuǎn)染48 h后提取總蛋白,按“2.2”項下方法檢測抑癌基因(P16、P14)和侵襲相關(guān)蛋白(E-cadherin、N-cadherin、Vimentin、MMP-2、TIMP-1)表達。

    2.7 統(tǒng)計學處理

    3 結(jié)果

    3.1 細胞Bmi-1的基因沉默效果

    轉(zhuǎn)染48 h后,與空白對照組和陰性對照組比較,試驗組H1963細胞中Bmi-1蛋白表達量下調(diào)80%,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05),表明siRNA能有效沉默細胞中的Bmi-1基因表達。各組細胞中Bmi-1蛋白表達的電泳圖見圖1。

    3.2 細胞增殖情況

    與陰性對照組比較,試驗組細胞在轉(zhuǎn)染3、4、5 d時的增殖抑制率明顯升高(P<0.05或P<0.01),其中3 d時增殖抑制率最高[增殖抑制率為(63.61±6.97)%,P<0.01],表明沉默Bmi-1基因可顯著抑制H1963細胞的增殖。各組細胞的增殖抑制率比較見圖2。

    圖1 各組細胞中Bmi-1蛋白表達的電泳圖Fig 1 Electrophoretogram of protein expression of Bmi-1 in each group

    圖2 各組細胞的增殖抑制率比較Fig 2 Comparison of the inhibitory effect of cell in each group

    3.3 細胞周期分布情況

    與空白對照組和陰性對照組比較,試驗組細胞在G0/G1期的比例明顯增加(P<0.05),S期、G2/M期的比例明顯減少(P<0.05),表明沉默Bmi-1基因可使H1963細胞發(fā)生G1/S期阻滯。各組細胞的周期分布見表1。

    表1 各組細胞的周期分布(±s,n=3)Tab 1 Distribution of cell cycle in each group(±s,n=3)

    表1 各組細胞的周期分布(±s,n=3)Tab 1 Distribution of cell cycle in each group(±s,n=3)

    與空白對照組和陰性對照組比較:*P<0.05vs.blank control group and negative control group:*P<0.05

    組別空白對照組陰性對照組試驗組細胞比例,%G2/M 24.97±0.75 25.56±1.01 14.36±1.09*G0/G1 48.69±0.83 46.77±0.95 69.72±1.25*S 26.34±0.91 27.71±0.84 15.92±0.89*

    3.4 細胞侵襲能力變化

    空白對照組、陰性對照組和試驗組穿透基底膜的細胞數(shù)分別為(222±51)、(204±44)、(53±17)個,試驗組侵襲細胞數(shù)明顯低于空白對照組和陰性對照組(P<0.01),表明沉默Bmi-1基因可使細胞侵襲能力顯著降低。各組細胞穿透基底膜的顯微鏡圖見圖3。

    3.5 細胞抑癌基因P16、P14的表達情況

    與空白對照組和陰性對照組比較,試驗組細胞的P16、P14蛋白表達分別升高180%、320%,表明沉默Bmi-1基因可顯著上調(diào)抑癌基因P16、P14表達。各組細胞中P16、P14蛋白表達的電泳圖見圖4。

    3.6 細胞E-cadherin、N-cadherin、Vimentin、MMP-2、TIMP-1蛋白的表達情況

    與空白對照組和陰性對照組比較,試驗組細胞的E-cadherin、TIMP-1蛋白表達量分別上調(diào)110%、210%,N-cadherin、Vimentin、MMP-2蛋白表達量分別下調(diào)70%、40%、80%,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05),表明沉默Bmi-1基因可顯著影響細胞侵襲能力的相關(guān)蛋白表達,電泳圖見圖5。

    圖3 各組細胞穿透基底膜的顯微鏡圖(×200)Fig 3 Micrograph of cells penetrating the basement membrane in each grou(p×200)

    圖4 各組細胞中P16、P14蛋白表達的電泳圖Fig 4 Electrophoretogram of protein expression of P16 and P14 in each group

    圖5 各組細胞中E-cadherin、N-cadherin、Vimentin、MMP-2、TIMP-1蛋白表達的電泳圖Fig 5 Electrophoretogram of protein expression of E-cadherin,N-cadherin,Vimentin,MMP-2 and TIMP-1 in each group

    4 討論

    當前關(guān)于肺癌的藥學研究大多聚焦于非小細胞肺癌,而研究SCLC的很少。固然SCLC發(fā)病率遠低于非小細胞肺癌,但由于其增殖快、侵襲力強、致死率極高,且近年來有逐漸增多的趨勢,因此已成為嚴重危害人類生命的一類惡性腫瘤。鑒于現(xiàn)有的治療方案效果都很不理想,尋找新的作用靶點就成為治療SCLC的關(guān)鍵。

    本研究結(jié)果顯示,沉默Bmi-1基因能顯著抑制H1963細胞的增殖,表明Bmi-1有望成為治療SCLC的一個新靶點。Bmi-1作為Polycomb抑制復合物1(PRC1)的核心亞基,與Ring1B協(xié)同催化組蛋白H2A-K119泛素化,使得染色質(zhì)處于收緊狀態(tài),抑制轉(zhuǎn)錄因子對DNA的作用,同時還抑制轉(zhuǎn)錄的延伸過程[4],最終導致基因表達的抑制。重要的抑癌基因INK4a/ARF就是Bmi-1主要的靶基因[6]。INK4a/ARF基因編碼P16、P14抑癌蛋白,是維持細胞周期平衡、調(diào)節(jié)細胞增殖與衰老的關(guān)鍵基因[7],一旦該基因受抑或缺失會使細胞發(fā)生惡性轉(zhuǎn)化[8]。本研究發(fā)現(xiàn),沉默Bmi-1基因可使P14、P16表達升高和細胞周期的G1/S期阻滯,說明干擾Bmi-1后產(chǎn)生的抑癌作用與其激活INK4a/ARF、阻滯細胞周期有關(guān),不過是否還通過其他環(huán)節(jié)產(chǎn)生抑癌作用,則尚待進一步考證。

    Bmi-1不僅參與惡性腫瘤的發(fā)生發(fā)展,還參與腫瘤的侵襲轉(zhuǎn)移[9-10]。Bmi-1對Snail、Twist、ZEB1具有穩(wěn)定、激活和協(xié)同作用,并由此誘導細胞發(fā)生上皮-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(Epithelial-mesenchymal transition,EMT),增強細胞遷移侵襲能力。

    近來研究發(fā)現(xiàn),沉默Bmi-1基因能逆轉(zhuǎn)鼻咽癌、頭頸鱗狀細胞癌的EMT,減少其侵襲轉(zhuǎn)移[11-12]。本研究通過Transwell小室試驗發(fā)現(xiàn)沉默Bmi-1對H1963細胞有明顯的抗侵襲轉(zhuǎn)移作用,這一結(jié)果更進一步提升了Bmi-1抗SCLC的應用價值。

    根據(jù)經(jīng)典的斯蒂芬·佩吉特“種子-土壤”理論,腫瘤轉(zhuǎn)移過程大體是:具有轉(zhuǎn)移能力的癌細胞(種子)從原病灶脫離——遠處遷移——侵襲組織器官(土壤)——生長繁殖、轉(zhuǎn)移瘤塊生成等。這過程涉及細胞的黏附、遷移、侵蝕等幾個環(huán)節(jié),結(jié)合試驗結(jié)果,提示沉默Bmi-1基因可從多環(huán)節(jié)產(chǎn)生抗侵襲轉(zhuǎn)移作用:(1)誘導E-cadherin表達,這可使細胞間的黏附增強,抑制細胞的脫落分離;(2)抑制Vimentin、N-cadherin,這可降低細胞運動能力,抑制細胞遷移運動;(3)MMP-2表達減弱,TIMP-1表達增強,這可使細胞侵蝕能力減弱,從而使在“土壤”上種植機會減少。由此,沉默Bmi-1基因可遏制SCLC的轉(zhuǎn)移。

    本研究證明了抑制Bmi-1的表達可有效抑制SCLC的增殖及轉(zhuǎn)移,這為以Bmi-1為靶點的新藥開發(fā)提供了一定的理論與實驗依據(jù)。

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