李雯嫻,鄧媛媛,石京山,李 菲,劉 波,龔其海
(遵義醫(yī)學院 藥理學教研室暨基礎(chǔ)藥理省部共建教育部重點實驗室, 貴州 遵義 563099)
腦血流減少是老年人認知功能障礙的重要危險因素之一,其引起的慢性腦低灌注可加快老年癡呆的病程。臨床研究發(fā)現(xiàn),輕度認知障礙患者存在腦血流減少。因此,慢性腦低灌注被認為是導(dǎo)致老年人認知障礙、輕度認知損害、血管性癡呆和遲發(fā)性阿爾茨海默病(Alzheimer’s disease,AD)的關(guān)鍵因素[1-3]。盡管慢性腦低灌注引起的認知缺陷的發(fā)病機制已取得顯著進展,但目前仍缺乏理想的藥物治療。因此,繼續(xù)研究抗慢性腦低灌注所致認知功能減退的藥物意義重大。
淫羊藿苷(icariin, ICA)是淫羊藿的主要成分之一。研究表明,ICA可改善由脂多糖引起的腦功能障礙,抑制神經(jīng)皮質(zhì)酮誘導(dǎo)的細胞凋亡,具有抗炎和神經(jīng)保護作用[4-5]。我們的前期研究發(fā)現(xiàn),ICA可改善腦慢性低灌注誘導(dǎo)的大鼠學習記憶減退[6],但其作用機制尚不完全清楚。因此,本文觀察了ICA對雙側(cè)頸總動脈結(jié)扎所致大鼠慢性腦缺血模型空間學習記憶減退的影響,并探索其可能的作用機制。
1.1 材料
1.1.1 實驗動物 成年雄性SD大鼠60只,SPF級,體重250±20g, 購自重慶第三軍醫(yī)大學動物實驗中心,合格證號:SCXK-( 渝) 2007-00005。
1.1.2 試劑和藥品 淫羊藿苷購自南京澤朗醫(yī)藥有限公司(純度經(jīng)HPLC檢測大于98%);PPARα和PGC-1α抗體購于英國Abcam公司。
1.1.3 儀器 MT-200 Morris水迷宮,成都泰盟科技公司;全自動凝膠圖象分析儀,美國BIO-RAD公司;i-mark酶標儀,美國BIO-RAD公司。
1.2 方法
1.2.1 動物分組和造模 60只大鼠,隨機分為4組:假手術(shù)組、模型組、低和高劑量ICA治療組( 10、40 mg/kg) (n=15)。模型組、ICA低和高劑量組用絲線將雙側(cè)頸總動脈結(jié)扎,假手術(shù)組只分離出頸總動脈, 不結(jié)扎。造模10 d后,ICA低、高劑量組分別連續(xù)灌胃ICA10、40 mg/kg ,連續(xù)23 d,假手術(shù)組和模型組灌胃等體積生理鹽水。
1.2.2 Morris水迷宮 造模后第28天進行水迷宮檢測。方法參照本研究組既往方法進行[7]。
1.2.3 Western blot測定蛋白表達 水迷宮檢測結(jié)束后,處死大鼠,取海馬。稱取100 mg海馬組織,勻漿離心取上清液。在570 nm波長處,用酶標儀進行檢測樣品和標準品吸光度值, 根據(jù)標準品吸光度值和標準品已知濃度作標準曲線,計算上清液蛋白濃度,8% SDS-PAG凝膠電泳后轉(zhuǎn)膜, 封閉、抗體孵育,ECL發(fā)光顯影,實驗結(jié)果采用凝膠成像系統(tǒng)測定泳帶光密度積分值, 并與相應(yīng)內(nèi)參的積分光密度值比較, 得出各蛋白的相對表達量。
2.1 ICA對大鼠空間學習記憶功能的影響 給藥后第18天,Morris水迷宮檢測了大鼠空間學習記憶功能。定位航行實驗中,第1天各組間運動距離無統(tǒng)計學意義。第2、3、4天,與假手術(shù)相比,模型組運動距離明顯增加(P<0.05),與模型組比較,ICA低、高劑量組大鼠的運動距離明顯縮短(P<0.01,P<0.05)。空間探索實驗中,模型組大鼠在目標象限的停留時間明顯低于假手術(shù)組 (P<0.05),這表明雙側(cè)頸總動脈結(jié)扎可使大鼠的空間學習記憶功能減退。而在ICA灌胃23 d后,低、高劑量組大鼠的目標象限停留時間較模型組明顯延長(P<0.05),表明ICA可減輕雙側(cè)頸總動脈結(jié)扎所致大鼠的空間學習記憶功能減退(見表1,表2)。
組別n第1天 (m)第2天 (m)第3天 (m)第4天 (m)假手術(shù)組1039.5±3.411.9±2.29.2±0.95.7±0.8模型組1045.6±3.420.9±2.9*17.4±3.3*10.8±2.1*ICA低劑量組1037.8±2.610.7±1.1##7.8±1.2#5.0±1.0#ICA高劑量組1235.7±4.212.9±1.7#9.5±1.0#6.2±0.6#
與假手術(shù)組比較*P<0.05,與模型組比較 ##P<0.01,#P<0.05。
組別n第5天 (s)假手術(shù)組1032.0±3.3模型組1025.1±2.9*ICA低劑量組1030.9±3.6#ICA高劑量組 1229.2±3.3#
與假手術(shù)組比較*P<0.05,與模型組比較 #P<0.05 。
2.2 ICA對海馬組織PPARα和PGC-1α蛋白表達的影響 水迷宮檢測結(jié)束后,Western blot法檢測了大鼠海馬PPARα和PGC-1α蛋白表達。結(jié)果發(fā)現(xiàn),模型組大鼠海馬的PPARα和PGC-1α蛋白表達均較假手術(shù)組明顯降低(P<0.01,P<0.05);然而,與模型組比較,ICA低、高劑量組大鼠海馬的PPARα和PGC-1α蛋白表達均明顯上調(diào)(分別P<0.01,P<0.05,見圖1)。
以假手術(shù)組為1,其他組與其進行比較。**P<0.01,*P<0.05 versus sham group, ## P<0.01, # P<0.05 versus BCCAO group (n=3)。圖1 ICA對海馬組織PPARα和PGC-1α蛋白表達的影響
本研究首先探索了ICA對慢性腦低灌注模型的有效劑量。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),30~120 mg/kgICA對該模型慢性低灌注大鼠的學習記憶具有改善作用[6],因此,本實驗探究更低劑量的ICA對該模型是否具有改善作用并進一步探究其作用機制。結(jié)果發(fā)現(xiàn),ICA10、40 mg/kg對雙側(cè)頸總動脈結(jié)扎致腦慢性低灌注大鼠的學習記憶具有改善作用。此外,模型組PPARα和PGC-1α蛋白的表達均下調(diào),而給予ICA10、40 mg/kg能使其表達上調(diào)。
雙側(cè)頸總動脈結(jié)扎誘導(dǎo)的大鼠學習記憶減退是一種合適的腦慢性低灌注模型,可以較好地模仿VD和AD的病理特征,被廣泛用于實驗研究[8]。本研究發(fā)現(xiàn),雙側(cè)頸總動脈結(jié)扎可誘導(dǎo)的大鼠學習記憶減退,提示本模型成功。胰島素抵抗與VD或AD的病理密切相關(guān),高胰島素血癥誘導(dǎo)的胰島素抵抗可增加VD或AD的發(fā)病率[9]。此外,甚至有學者提出AD是3型糖尿病,在胰島素抵抗中,胰島素水平異常升高,增加的胰島素與胰島素降解酶競爭Aβ,導(dǎo)致Aβ不能有效降解并在腦內(nèi)沉積,最后導(dǎo)致VD或AD。
本研究檢測了PPARs的PPARα的表達。研究發(fā)現(xiàn), ICA能夠阻遏腦慢性缺血誘導(dǎo)的PPARα蛋白表達下降,表明ICA對中樞神經(jīng)系統(tǒng)中的PPARα具有激動作用。PPARs是配體激活轉(zhuǎn)錄因子受體,屬于核受體家族,其3種亞型(α,β/δ和γ)參與脂質(zhì)和葡萄糖代謝和調(diào)節(jié)。雖然PPARs的3種亞型都存在于成人大腦中,但PPARα和PPARγ是研究得較多的異構(gòu)體[10]。PPARα的激活可誘導(dǎo)不同器官的抗炎和抗氧化作用。在腦缺血模型中,PPARα激動劑非諾貝特和WY-14643預(yù)防性給藥3d和7d,可產(chǎn)生神經(jīng)保護作用[11]。本研究結(jié)果與既往研究一致,提示PPARα可能是ICA抗慢性腦低灌注所致大鼠學習記憶減退的作用靶點之一。
PGC-1α是能量代謝和脂質(zhì)穩(wěn)態(tài)的關(guān)鍵調(diào)節(jié)劑,與糖尿病和肥胖的代謝紊亂有關(guān)。PGC-1α的過度表達可誘導(dǎo)大鼠原代培養(yǎng)骨骼肌細胞中PPARα的表達增加,提示PGC-1α可能通過PPARα信號導(dǎo)致胰島素抵抗[12]。然而,最近研究發(fā)現(xiàn),短暫腦缺血實驗?zāi)P椭?,PGC-1α信號通路的激活可以防止遲發(fā)性海馬CA1區(qū)神經(jīng)元死亡[13]。此外,PPAR激動劑可以通過PGC-1α誘導(dǎo)的線粒體融合裂變動態(tài)過程,這個過程可阻止氧化應(yīng)激對線粒體功能的損害,從而保護海馬神經(jīng)元線粒體功能[14]。本研究發(fā)現(xiàn),ICA能夠阻遏慢性腦缺血誘導(dǎo)的PGC-1α和PPARα的表達下降,提示PGC-1α可能通過PPARα信號對腦慢性低灌注大鼠起神經(jīng)保護作用,從而改善大鼠學習記憶功能。
綜上所述,本研究進一步揭示了ICA可改善腦慢性腦低灌注誘導(dǎo)的大鼠空間學習記憶減退,其機制至少與上調(diào)PPARα和PGC-1α蛋白的表達有關(guān)。因此,ICA有望成為治療抗慢性腦低灌注相關(guān)疾病如AD及VD的藥物,值得進一步研發(fā)。
[參考文獻]
[1] Hanyu H, Sato T, Hirao K, et al.The progression of cognitive deterioration and regional cerebral blood flow patterns in Alzheimer's disease: a longitudinal SPECT study [J]. J Neurol Sci, 2010, 290(1): 96-101.
[2] Kume K, Hanyu H, Sato T, et al.Vascular risk factors are associated with faster decline of Alzheimer disease: a longitudinal SPECT study [J]. J Neurol , 2011, 258(7): 1295-1303.
[3] de la Torre J C. Cerebral hemodynamics and vascular risk factors: setting the stage for Alzheimer's disease [J]. J Alzheimers Dis, 2012, 32(3): 553-567.
[4] Guo J, Li F, Wu Q, et al.Protective effects of icariin on brain dysfunction induced by lipopolysaccharide in rats [J]. Phytomedicine, 2010, 17(12): 950-955.
[5] Zhang H, Liu B, Wu J, et al.Icariin inhibits corticosterone-induced apoptosis in hypothalamic neurons via the PI3-K/Akt signaling pathway [J]. Mol med rep, 2012, 6(5): 967-972.
[6] Xu R X, Wu Q, Luo Y, et al. Protective effects of icariin on cognitive deficits induced by chronic cerebral hypoperfusion in rats [J]. Clin Exp Pharmacol P, 2009, 36(8): 810-815.
[7] Gong Q H, Wang Q, Pan L L, et al.Hydrogen sulfide attenuates lipopolysaccharide-induced cognitive impairment: a pro-inflammatory pathway in rats [J]. Pharmacol Biochem Be, 2010, 96(1): 52-58.
[8] Sarti C, Pantoni L, Bartolini L, et al.Cognitive impairment and chroniccerebral hypoperfusion: what can be learned from experimental models [J]. J Neurol Sci, 2002, 203: 263-266.
[9] Peila R, Rodriguez B L, White L R, et al.Fasting insulin and incident dementia in an elderly population of Japanese-American men [J]. Neurology, 2004, 63(2): 228-233.
[10] Zolezzi J M, Bastias-Candia S, Santos M J, et al. Alzheimer's disease: relevant molecular and physiopathological events affecting amyloid-beta brain balance and the putative role of PPARs [J]. Front Aging Neurosci, 2014, 6: 176.
[11] Inoue H, Jiang X F, Katayama T, et al. Brain protection by resveratrol and fenofibrate against stroke requires peroxisome proliferator-activated receptor alpha in mice [J]. Neurosci Lett, 2003, 352(3): 203-206.
[12] Mortensen O H, Frandsen L,Schjerling P,et al. PGC-1α and PGC-1β have both similar and distinct effects on myofiber switching toward an oxidative phenotype [J]. Am J Physiol Endocrinol Metab,2006,291(4):E807-816.
[13] Chen S D, Lin T K, Yang D I, et al. Protective effects of peroxisome proliferator-activated receptors gamma coactivator-1alpha against neuronal cell death in the hippocampal CA1 subfield after transient global ischemia [J]. J Neurosci Res, 2010, 88(3): 605-613.
[14] Zolezzi J M, Silva-Alvarez C, Ordenes D, et al. Peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR) gamma and PPARalpha agonists modulate mitochondrial fusion-fission dynamics: relevance to reactive oxygen species (ROS)-related neurodegenerative disorders? [J]. Piosone, 2013, 8(5): e64019.