• <tr id="yyy80"></tr>
  • <sup id="yyy80"></sup>
  • <tfoot id="yyy80"><noscript id="yyy80"></noscript></tfoot>
  • 99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

    成纖維樣滑膜細(xì)胞Toll樣受體在類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎的研究進(jìn)展

    2014-08-11 13:48:49唐媚胡松唐信威劉陽王衍堂鄒強(qiáng)遵義醫(yī)學(xué)院免疫學(xué)教研室遵義563003成都醫(yī)學(xué)院免疫學(xué)教研室成都60083
    關(guān)鍵詞:滑膜配體傳導(dǎo)

    唐媚,胡松,唐信威,劉陽,王衍堂,鄒強(qiáng)*(.遵義醫(yī)學(xué)院免疫學(xué)教研室,遵義 563003;.成都醫(yī)學(xué)院免疫學(xué)教研室,成都 60083)

    ·綜 述·

    成纖維樣滑膜細(xì)胞Toll樣受體在類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎的研究進(jìn)展

    唐媚1,胡松2,唐信威2,劉陽2,王衍堂2,鄒強(qiáng)2*
    (1.遵義醫(yī)學(xué)院免疫學(xué)教研室,遵義 563003;2.成都醫(yī)學(xué)院免疫學(xué)教研室,成都 610083)

    類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎;Toll樣受體;成纖維樣滑膜細(xì)胞

    Toll樣受體(toll-like receptor, TLRs)是一種I型跨膜蛋白受體,可識別微生物上特定結(jié)構(gòu)的病原相關(guān)分子模式(pathogen-associated molecular patterns, PAMPs)和宿主自身損傷細(xì)胞產(chǎn)生的損傷相關(guān)分子模式(damage-associated molecular patterns, DAMPs),在天然免疫中發(fā)揮著重要作用。類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎(rheumatoid arthritis,RA)是以關(guān)節(jié)滑膜炎為主要特征的自身免疫性疾病。成纖維樣滑膜細(xì)胞(fibroblast-like synoviocytes, FLSs)異常增生及分泌炎性細(xì)胞因子,最終可致關(guān)節(jié)慢性炎癥和畸形[1]。FLSs是滑膜組織的重要組成成分之一,巨噬樣滑膜細(xì)胞活化后分泌的細(xì)胞因子如IL-1β可誘導(dǎo)FLSs增殖,隨后增生活化的FLSs一方面分泌趨化因子、炎性細(xì)胞因子引起關(guān)節(jié)炎癥,另一方面FLSs分泌基質(zhì)金屬蛋白酶(matrix metalloproteinases,MMPs)侵蝕軟骨,引起關(guān)節(jié)畸形,從而在RA的病理機(jī)制中發(fā)揮著至關(guān)重要的作用[2]。FLSs上表達(dá)的TLRs活化后,會(huì)激活下游一系列的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,啟動(dòng)炎性細(xì)胞因子、趨化因子以及MMPs的表達(dá),在RA發(fā)病進(jìn)程中扮演了重要角色。為此,對TLRs在免疫反應(yīng)中的調(diào)節(jié)作用及其胞內(nèi)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)激活機(jī)制的研究將為RA治療提供新思路[3]。

    1 TLRs結(jié)構(gòu)、信號通路及配體

    TLRs的發(fā)現(xiàn)是近十余年天然免疫系統(tǒng)研究中最主要的進(jìn)展之一。它主要由3個(gè)功能區(qū)構(gòu)成:胞外區(qū)、跨膜區(qū)和胞內(nèi)區(qū)。其胞外區(qū)有19~25個(gè)富含亮氨酸的重復(fù)序列,此結(jié)構(gòu)能促進(jìn)蛋白質(zhì)間的相互黏附,有利于識別病原體及其產(chǎn)物,不同的TLRs胞外區(qū)同源性較低,可能與其識別不同結(jié)構(gòu)的配體相關(guān)[2]。TLRs的跨膜區(qū)富含半胱氨酸。TLRs的胞內(nèi)區(qū)與白細(xì)胞介素1受體(interleukin-1 receptor, IL-1R)的胞內(nèi)區(qū)結(jié)構(gòu)相似,為TIR(Toll IL-1R)同源區(qū),它是Toll蛋白和IL-1R向下游轉(zhuǎn)導(dǎo)信號的核心元件。不同的TLRs通過特異性識別一類PAMPs,如病毒、細(xì)菌和真菌;或來源于宿主自身損傷細(xì)胞產(chǎn)生DAMPs[4],如熱休克蛋白,介導(dǎo)胞內(nèi)信號轉(zhuǎn)導(dǎo),從而釋放促炎因子、趨化因子,誘導(dǎo)T淋巴細(xì)胞產(chǎn)生適應(yīng)性免疫反應(yīng)。

    TLRs家族信號通路包括髓樣分化蛋白88(myeloid differentiation primary response protein 88, MyD88)依賴性傳導(dǎo)途徑和MyD88非依賴性傳導(dǎo)途徑兩種(見圖1)。在MyD88依賴性傳導(dǎo)途徑中,TLRs胞內(nèi)區(qū)域與MyD88羧基端的TIR結(jié)構(gòu)域相結(jié)合而激活MyD88。MyD88的DD結(jié)構(gòu)域與IL-1R相關(guān)激酶(IL-1R-associated kinases, IRAKs)的氨基端死亡區(qū)域相互作用,招募IRAKs到TLRs信號復(fù)合物上引起IRAKs自身磷酸化[5]。隨之,再與腫瘤壞死因子受體相關(guān)因子6(tumor necrosis factor receptor associates factor 6, TRAF6)結(jié)合[6],促使NF-κB抑制蛋白自身磷酸化,從而激活NF-κB使之從細(xì)胞質(zhì)轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核,最終輔助炎性細(xì)胞因子及刺激分子的轉(zhuǎn)錄、翻譯和表達(dá)。MyD88非依賴性傳導(dǎo)途徑是通過干擾素調(diào)節(jié)因子3(interferon regulatory factor 3, IRF3)和NF-κB的晚發(fā)活化實(shí)現(xiàn)。TLRs是通過β干擾素TIR結(jié)構(gòu)域銜接蛋白(TIR-domain-containing adaptor inducing interferon-β,TRIF)與TRIF連接,再與TRAF6結(jié)合:一方面激活I(lǐng)KKs復(fù)合體,使NF-κB抑制蛋白自身磷酸化,促使NF-κB從細(xì)胞質(zhì)轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核[7],并與DNA上NF-κB的位點(diǎn)結(jié)合,啟動(dòng)轉(zhuǎn)錄調(diào)控機(jī)制;另一方面TRIF與TRF3結(jié)合,促使下游IRF3抑制蛋白自身磷酸化,隨后IRF3從細(xì)胞質(zhì)轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核內(nèi),啟動(dòng)干擾素的表達(dá)。

    TLRs作為連接天然免疫和適應(yīng)性免疫的關(guān)鍵環(huán)節(jié),在免疫應(yīng)答中發(fā)揮著極為重要的作用。迄今已發(fā)現(xiàn)的人類TLRs有10種[8],在多種細(xì)胞中都有表達(dá),其中包括上皮細(xì)胞、成纖維細(xì)胞、免疫細(xì)胞(單核細(xì)胞和巨噬細(xì)胞)和非免疫細(xì)胞(樹突細(xì)胞)等。現(xiàn)已發(fā)現(xiàn)的人關(guān)節(jié)滑膜細(xì)胞TLRs有6種(見表1),其中TLR1在細(xì)胞膜上表達(dá),其配體是來源于細(xì)菌的三酰脂蛋白;TLR2在細(xì)胞膜上表達(dá),其主要配體有脂蛋白、肽聚糖、HSP60、HSP70、Gp96、LDL和HMGB1;TLR3在溶酶體的內(nèi)膜上表達(dá),其主要配體有雙鏈RNA;TLR4在細(xì)胞膜上表達(dá),其主要配體有脂多糖(lipopolysaccharide, LPS)、HSP60、HSP70、HSPB8和Gp96;TLR5在細(xì)胞膜上表達(dá),其配體是來源于細(xì)菌的鞭毛蛋白;TLR6在細(xì)胞膜上表達(dá),其配體是二?;鞍譡8]。此外,FLSs上TLRs的表達(dá)和激活,對RA病理機(jī)制的研究有重要作用。

    Ospelt等[9]在人滑膜細(xì)胞TLR(1-10)表達(dá)譜的研究中發(fā)現(xiàn):TLR(1-6)的mRNA有表達(dá),TLR(7-10)的mRNA無表達(dá),其中TLR3的mRNA表達(dá)最高,TLR2、TLR4的mRNA表達(dá)稍弱,其他TLRs的mRNA的表達(dá)未能檢測出,提示TLR2、TLR3、TLR4對RA上FLSs的研究意義更為重大。為此,以下主要介紹FLSs上TLR2、TLR3、TLR4的配體種類、胞內(nèi)信號傳導(dǎo)途徑以及目前的研究結(jié)果。

    表1 人關(guān)節(jié)滑膜細(xì)胞上TLRs定位、配體及來源

    圖1 人FLSs上TLRs信號傳導(dǎo)途徑

    2 TLR2激活與RA的關(guān)系

    TLR2是目前已克隆出的TLRs家族中識別病原微生物種類最多且表達(dá)范圍最廣的成員。TLR2主要通過識別特異性PAMPs來促發(fā)機(jī)體對病原微生物的級聯(lián)免疫反應(yīng),其配體有革蘭氏陽性菌的菌細(xì)胞壁組分,如胞壁酸、肽聚糖和細(xì)菌脂肽,革蘭氏陰性菌細(xì)胞壁的脂蛋白和脂肽聚糖,霉菌的細(xì)胞壁成分以及真菌的酵母聚糖等。其中,TLR2在識別細(xì)菌肽聚糖時(shí),需要TLR1和TLR6協(xié)助識別?;闹腫10]。新近研究[11]發(fā)現(xiàn),TLR2還可識別組織損傷的DAMPs和某些內(nèi)源性抗原,如熱休克蛋白和其他組織分泌的炎性因子。TLR2胞內(nèi)信號傳導(dǎo)是通過MyD88依賴性傳導(dǎo)途徑完成的。TLR2與TLR1或TLR6結(jié)合形成的異源二聚體可識別特異性配體;活化的TLR2胞內(nèi),TIR與MyD88羧基端結(jié)合后募集MyD88到受體上,隨后MyD88利用N端的DD結(jié)構(gòu)募集同樣含DD結(jié)構(gòu)的IRAK-1和IRAK-4;IRAK-1被IRAK-4作用后磷酸化,并從受體復(fù)合體上解離且與TRAF6結(jié)合使之活化,最終促使NF-κB轉(zhuǎn)遷到核內(nèi),激活相應(yīng)基因的轉(zhuǎn)錄[12]。

    目前實(shí)驗(yàn)研究結(jié)果[13]表明,FLSs上TLR2的激活與RA發(fā)病密切相關(guān),其中主要表現(xiàn)在RA的促炎反應(yīng)中。Schrijver等[14]在RA病人滑膜液中檢測到細(xì)菌的肽聚糖成分,提示TLR2可能參與RA的發(fā)病過程。Kyburz等[15]用TLR2配體刺激滑膜細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)TLR2配體可促進(jìn)滑膜細(xì)胞釋放結(jié)合素、MMP、IL-6和IL-8等促炎因子。在小鼠關(guān)節(jié)動(dòng)物模型[16]中,小鼠關(guān)節(jié)注射TLR2配體(細(xì)菌肽聚糖)可形成嚴(yán)重的關(guān)節(jié)炎,表明在只有肽聚糖而無活菌的情況下,也可刺激關(guān)節(jié)產(chǎn)生炎癥反應(yīng)。Pierer等[17]系統(tǒng)研究了RA病人滑膜細(xì)胞上TLR2介導(dǎo)的炎癥因子表達(dá)情況:通過TLR2配體(細(xì)菌肽聚糖)刺激滑膜細(xì)胞,建立體外模型篩選炎癥因子基因表達(dá);利用高通量寡核苷酸微陣列對其技術(shù)分析發(fā)現(xiàn),有74個(gè)基因表達(dá)增高,其中新發(fā)現(xiàn)了14個(gè)編碼化學(xué)增活素的基因;定量PCR檢測肽聚糖刺激后的正常人FLSs mRNA發(fā)現(xiàn),粒細(xì)胞趨化蛋白2(granulocyte chemotactic protein2, GCP2)、T細(xì)胞激活分泌調(diào)節(jié)因子(RANTES)、單核細(xì)胞趨化蛋白2(monocyte chemoattractant protein2, MCP-2)、IL-8以及生長相關(guān)癌基因-2的表達(dá)均顯著升高,MCP-1、EXODUS、CXCL-16表達(dá)量也有所升高;同時(shí),經(jīng)刺激的細(xì)胞上清中也有GCP2、RANTES和MCP2的分泌,在RA病人的滑膜組織中也檢測到GCP2和MCP2,而在骨關(guān)節(jié)炎病人的滑膜組織中卻未檢測到。由此可見,TLR2配體通過刺激滑膜細(xì)胞活化釋放趨化因子,對RA的炎癥浸潤起了較大作用。

    3 TLR3激活與RA的關(guān)系

    TLR3是位于細(xì)胞內(nèi)的模式識別受體(pattern recognition receptor, PRR),可識別病毒雙鏈RNA(dsRNA)。而宿主細(xì)胞本身不產(chǎn)生dsRNA,因此病毒在細(xì)胞內(nèi)產(chǎn)生的dsRNA可被一種PAMPs識別。TLR3是唯一一種通過MyD88非依賴性傳導(dǎo)途徑進(jìn)行信號傳導(dǎo)的TLRs。Brentano等[18]用TLR3配體poly(I∶C)刺激關(guān)節(jié)滑膜細(xì)胞,可檢測到炎性細(xì)胞因子和趨化因子,如IL-6、IFN-β、CCL5。RA病人壞死的滑膜細(xì)胞刺激FLSs,也可在上清中檢測到上述細(xì)胞因子,提示壞死的滑膜細(xì)胞RNA可能是由TLR3的內(nèi)源性配體刺激FLSs促炎因子基因表達(dá)而形成。FLSs上TLR3受體的激活與RA炎癥的產(chǎn)生關(guān)系密切。Brentano等[18]用TLR3配體刺激RA和骨性關(guān)節(jié)炎(osseous arthritis, OA)病人的FLSs,發(fā)現(xiàn)RA滑膜細(xì)胞上TLR3的表達(dá)量高于OA。Roelofs等[19]發(fā)現(xiàn)RA病人滑膜組織上的TLR3受體比正常人表達(dá)量高。Ospelt等[9]研究顯示,早期RA病人滑膜細(xì)胞上TLR3表達(dá)量比持續(xù)期的表達(dá)量高。然而在FLSs上TLR3的炎性研究中出現(xiàn)了相互矛盾的實(shí)驗(yàn)結(jié)果。 Zare等[20]發(fā)現(xiàn)正常小鼠關(guān)節(jié)在注射了dsRNA后會(huì)出現(xiàn)關(guān)節(jié)炎癥,但同樣的現(xiàn)象也出現(xiàn)在TLR3基因敲除小鼠上,這似乎無法解釋TLR3參與RA促炎的機(jī)制。然而隨后,Magnusson等[21]研究顯示,dsRNA刺激關(guān)節(jié)后是通過單核/巨噬細(xì)胞分泌IFN-α來引起關(guān)節(jié)炎癥反應(yīng)的。Yarilina等[22]在血清和膠原抗體誘導(dǎo)的小鼠關(guān)節(jié)炎動(dòng)物實(shí)驗(yàn)研究[22]中發(fā)現(xiàn),TLR3配體對關(guān)節(jié)炎癥有一定的抑制作用,表明FLSs上的TLR3介導(dǎo)了關(guān)節(jié)的抗炎反應(yīng)。上述實(shí)驗(yàn)結(jié)果說明,TLR3參與了RA病程發(fā)生發(fā)展過程,其中包括促炎和抗炎兩個(gè)方面,但TLR3在RA中介導(dǎo)炎癥反應(yīng)的機(jī)制仍不清晰。

    4 TLR4激活與RA的關(guān)系

    TLR4是IL-1R家族的一員,是人類發(fā)現(xiàn)的首個(gè)TLRs相關(guān)蛋白,幾乎表達(dá)在所有細(xì)胞系上[23]。TLR4的配體種類繁多,按不同來源可分為內(nèi)源性配體和外源性配體;其中內(nèi)源性配體主要是因機(jī)體損傷、壞死或凋亡細(xì)胞釋放的熱休克蛋白、氧自由基和神經(jīng)介質(zhì)等,而外源性配體主要是LPS。TLR4胞內(nèi)信號傳導(dǎo)包括MyD88依賴性傳導(dǎo)途徑和MyD88非依賴性傳導(dǎo)途徑兩種。

    目前FLSs上TLR4在炎癥方面的研究結(jié)果相互對立,大部分集中在TLR4介導(dǎo)促炎反應(yīng)方面。Roelofs等[19]在RA病人的滑膜液、血清中檢測到了高含量的TLR4配體,其中TLR4的內(nèi)源性配體通過介導(dǎo)炎性細(xì)胞因子分泌來加重關(guān)節(jié)炎癥。同時(shí),Ospelt等[9]發(fā)現(xiàn),RA病人FLSs上TLR4的表達(dá)量升高,尤其在病程早期和持續(xù)期更為顯著。Nair等[24]通過RA和OA病人的滑膜液刺激體外培養(yǎng)的滑膜細(xì)胞,檢測到微量的IL-8;經(jīng)LPS和滑膜液共同刺激滑膜細(xì)胞后發(fā)現(xiàn)IL-8分泌明顯升高。此外Nair等[24]實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)滑膜液中存在的可溶性CD14分子可增強(qiáng)TLR2和TLR4的表達(dá)。Lee等[25]在CII抗體誘導(dǎo)關(guān)節(jié)炎的小鼠動(dòng)物模型中發(fā)現(xiàn),TLR4基因敲除小鼠的關(guān)節(jié)腫脹程度,促炎因子COX-2、TNF-α的分泌量均低于野生型小鼠。同樣,在用免疫復(fù)合物誘導(dǎo)的小鼠關(guān)節(jié)炎模型(immune comlex-mediated arthritis,ICA)中發(fā)現(xiàn),TLR4-/-小鼠關(guān)節(jié)腫脹程度輕于野生型小鼠,趨化因子以及IL-1、IL-6等促炎因子的分泌也明顯減少。然而,在含有沙眼衣原體滑膜細(xì)胞誘導(dǎo)的關(guān)節(jié)炎動(dòng)物模型[26]中,發(fā)現(xiàn)TLR4基因缺陷小鼠的關(guān)節(jié)炎癥狀較正常組小鼠嚴(yán)重。TLR4受體激活后會(huì)加重IL-1引起的關(guān)節(jié)炎癥[27],而TLR4-/-小鼠可減輕因IL-1Ra基因缺失引起的關(guān)節(jié)炎癥狀[28],表明TLR4參與了抗炎反應(yīng)。目前對TLR4配體存在、受體表達(dá)和發(fā)病機(jī)制的研究已較廣泛,但仍存在一些相互矛盾的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,說明現(xiàn)階段還不能透徹地認(rèn)識TLR4參與RA發(fā)病的分子機(jī)制。由此猜想,TLR4介導(dǎo)促炎反應(yīng)和抗炎反應(yīng)是否與其存在兩條信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑相關(guān):MyD-88依賴性轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑參與的促炎反應(yīng)起著主要作用,而MyD88非依賴性轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑參與的抗炎反應(yīng)起著次要作用。

    5 滑膜細(xì)胞上TLRs在RA靶向治療的應(yīng)用

    傳統(tǒng)的藥物和療法對RA病情的緩解有一定療效,但不能完全治愈。靶向關(guān)鍵細(xì)胞因子的生物制劑因價(jià)格昂貴、需反復(fù)注射和存在局部不良反應(yīng)等缺陷,也無法滿足RA的治療需要,這使得探究治療RA的有效方法成為研究的熱點(diǎn)。研究結(jié)果[29]證實(shí),TLRs在RA的發(fā)病機(jī)制中起著重要作用,因此靶向TLRs受體也成為RA的治療方法:阻斷TLRs下游信號介導(dǎo)蛋白質(zhì)分子,采用中和抗體或可溶性假性抗體來阻斷TLRs配體和受體結(jié)合以抑制炎癥以及阻斷受體二聚化[30]等。

    在抑制關(guān)節(jié)炎動(dòng)物模型[31]中,輔助T細(xì)胞2表達(dá)的內(nèi)毒素和肥大細(xì)胞表達(dá)的ST2蛋白可阻斷TLR4介導(dǎo)的信號傳導(dǎo)通路,從而減輕炎癥反應(yīng)。SIGIRR可通過負(fù)向調(diào)控TLR4的信號傳導(dǎo)通路,來抑制RA病人FLSs產(chǎn)生炎性因子和細(xì)胞因子[32]。NovImmune公司研發(fā)的單克隆抗體NI0101/α可抑制TLR4激活,從而阻斷下游信號傳導(dǎo)[33]。烷酮衍生物、蘿卜硫素和OSL07可抑制TLR4二聚化從而阻斷下游信號[34]。Opsona公司研發(fā)的抗TLR2抗體、OPN-301可阻止RA病人體外培養(yǎng)的FLSs分泌炎性細(xì)胞因子?;ぜ?xì)胞上TLRs信號傳導(dǎo)途徑與RA的發(fā)生發(fā)展有必然聯(lián)系,因此,闡明靶向滑膜細(xì)胞上TLRs信號傳導(dǎo)途徑將為RA的治療提供新的思路。

    6 展望

    目前,臨床上傳統(tǒng)的RA治療方法存在諸多不足,迫切需要尋找新的有效療法。研究[29]發(fā)現(xiàn),TLRs在RA的發(fā)病機(jī)制中發(fā)揮著至關(guān)重要的作用,主要表現(xiàn)在介導(dǎo)炎性介質(zhì)生成和促進(jìn)滑膜細(xì)胞增殖兩大方面。然而,目前對TLRs參與RA的分子機(jī)制及TLRs之間的相互影響仍無全面透徹的認(rèn)識,希望在不久的將來能從多角度透徹研究TLRs和RA之間的關(guān)系,以便為RA的臨床治療提供新思路。

    [1] Fox DA, Gizinski A, Morgan R,etal.Cell-cell interactions in rheumatoid arthritis synovium[J]. Rheum Dis Clin North Am, 2010,36(2): 311-323.

    [2] Huber LC, Distler O, Tarner I,etal.Synovial fibroblasts: key players in rheumatoid arthritis[J]. Rheumatology:Oxford,2006,45(6): 669-675.

    [3] Bartok B, Firestein GS. Fibroblast-like synoviocytes: key effector cells in rheumatoid arthritis[J]. Immunological Reviews, 2010, 233(1): 233-255.

    [4] Akira S, Takeda K. Toll-like receptor signalling[J]. Nature Reviews Immunology, 2004, 4(7): 499-511.

    [5] Li T, Hu J, Thomas JA,etal. Differential induction of apoptosis by LPS and taxol in monocytic cells[J]. Molecular Immunology, 2005, 42(9): 1049-1055.

    [6] Kaisho T, Akira S. Toll-like receptor function and signaling[J]. Journal of Allergy and Clinical Immunology, 2006, 117(5): 979-987.

    [7] Muroi M, Ohnishi T, Tanamoto K. Regions of the mouse CD14 molecule required for toll-like receptor 2-and 4-mediated activation of NF-kappa B[J]. J Biol Chem,2002,277(44): 42372-42379.

    [8] Takeuchi O, Akira S. Pattern recognition receptors and inflammation[J]. Cell, 2010, 140(6): 805-820.

    [9] Ospelt C, Brentano F, Rengel Y,etal. Overexpression of toll-like receptors 3 and 4 in synovial tissue from patients with early rheumatoid arthritis: toll-like receptor expression in early and longstanding arthritis[J]. Arthritis Rheum,2008,58(12): 3684-3692.

    [10] Ozinsky A, Underhill DM, Fontenot JD,etal. The repertoire for pattern recognition of pathogens by the innate immune system is defined by cooperation between toll-like receptors[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2000, 97(25): 13766-13771.

    [11] Takeuchi O, Hoshino K, Kawai T,etal. Differential roles of TLR2 and TLR4 in recognition of gram-negative and gram-positive bacterial cell wall components[J]. Immunity, 1999, 11(4): 443-451.

    [12] Qiu Y, Shen Y, Li X,etal. Molecular cloning and functional characterization of a novel isoform of chicken myeloid differentiation factor 88 (MyD88)[J]. Developmental & Comparative Immunology, 2008, 32(12): 1522-1530.

    [13] Radstake TR, Roelofs MF, Jenniskens YM,etal. Expression of toll-like receptors 2 and 4 in rheumatoid synovial tissue and regulation by proinflammatorycytokines interleukin-12 and interleukin-18 via interferon-gamma[J]. Arthritis and Rheum,2004,50(12):3856-3865.

    [14] Schrijver IA, Melief MJ, Tak PP,etal. Antigen-presenting cells containing bacterial peptidoglycan in synovial tissues of rheumatoid arthritis patients coexpress costimulatory molecules and cytokines[J]. Arthritis Rheum, 2000, 43(10): 2160-2168.

    [15] Kyburz D, Rethage J, Seibl R,etal. Bacterial peptidoglycans but not CpG oligodeoxynucleotides activate synovial fibroblasts by toll-like receptor signaling[J]. Arthritis & Rheumatism, 2003, 48(3): 642-650.

    [16] Liu ZQ, Deng GM, Foster S,etal. Staphylococcal peptidoglycans induce arthritis[J]. Arthritis Research, 2001, 3(6): 375-380.

    [17] Pierer M, Rethage J, Seibl R,etal. Chemokine secretion of rheumatoid arthritis synovial fibroblasts stimulated by Toll-like receptor 2 ligands[J]. The Journal of Immunology, 2004, 172(2): 1256-1265.

    [18] Brentano F, Schorr O, Gay RE,etal. RNA released from necrotic synovial fluid cells activates rheumatoid arthritis synovial fibroblasts via toll-like receptor 3[J]. Arthritis & Rheumatism, 2005, 52(9): 2656-2665.

    [19] Roelofs MF, Joosten LA, Abdollahi-Roodsaz S,etal. The expression of toll-like receptors 3 and 7 in rheumatoid arthritis synovium is increased and costimulation of toll-like receptors 3, 4, and 7/8 results in synergistic cytokine production by dendritic cells[J]. Arthritis & Rheumatism, 2005, 52(8): 2313-2322.

    [20] Zare F, Bokarewa M, Nenonen N,etal. Arthritogenic properties of double-stranded (viral) RNA[J]. The Journal of Immunology, 2004, 172(9): 5656-5663.

    [21] Magnusson M, Zare F, Tarkowski A. Requirement of type I interferon signaling for arthritis triggered by double-stranded RNA[J]. Arthritis & Rheumatism, 2006, 54(1): 148-157.

    [22] Yarilina A, DiCarlo E, Ivashkiv LB. Suppression of the effector phase of inflammatory arthritis by double-stranded RNA is mediated by type I IFNs[J]. The Journal of Immunology, 2007, 178(4): 2204-2211.

    [23] Muzio M, Bosisio D, Polentarutti N,etal. Differential expression and regulation of toll-like receptors (TLR) in human leukocytes: selective expression of TLR3 in dendritic cells[J]. The Journal of Immunology, 2000, 164(11): 5998-6004.

    [24] Nair A, Kanda V, Bush-Joseph C,etal. Synovial fluid from patients with early osteoarthritis modulates fibroblast-like synoviocyte responses to Toll-like receptor 4 and Toll-like receptor 2 ligands via soluble CD14[J]. Arthritis & Rheumatism, 2012, 64(7): 2268-2277.

    [25] Lee EK, Kang SM, Paik DJ,etal. Essential roles of Toll-like receptor-4 signaling in arthritis induced by type II collagen antibody and LPS[J]. International Immunology, 2005, 17(3): 325-333.

    [26] Zhang X, Glogauer M, Zhu F,etal. Innate immunity and arthritis: neutrophil Rac and toll-like receptor 4 expression define outcomes in infection-triggered arthritis[J]. Arthritis & Rheumatism, 2005, 52(4): 1297-1304.

    [27] Abdollahi-Roodsaz S, Joosten LA, Koenders MI,etal. Local interleukin-1-driven joint pathology is dependent on toll-like receptor 4 activation[J]. The American Journal of Pathology, 2009, 175(5): 2004-2013.

    [28] Abdollahi-Roodsaz S, Joosten LA, Koenders MI,etal. Stimulation of TLR2 and TLR4 differentially skews the balance of T cells in a mouse model of arthritis[J]. Journal of Clinical Investigation, 2008, 118(1): 205-216.

    [29] Takagi M. Toll-like receptor-a potent driving force behind rheumatoid arthritis[J]. J Clin Exp Hematopathol, 2011, 51(2): 77-92.

    [30] Meng L, Zhu W, Jiang C,etal.Toll-like receptor 3 upregulation in macrophages participates in the initiation and maintenance of pristane-induced arthritis in rats[J]. Arthritis Res Ther,2010,12(3):103.

    [31] Abdollahi-Roodsaz S, Joosten LA, Roelofs MF,etal. Inhibition of toll-like receptor 4 breaks the inflammatory loop in autoimmune destructive arthritis[J]. Arthritis & Rheumatism, 2007, 56(9): 2957-2967.

    [32] Drexler SK, Kong P, Inglis J,etal. SIGIRR/TIR-8 is an inhibitor of toll-like receptor signaling in primary human cells and regulates inflammation in models of rheumatoid arthritis[J]. Arthritis & Rheumatism, 2010, 62(8): 2249-2261.

    [33] Raby AC, Le Bouder E, Colmont C,etal. Soluble TLR2 reduces inflammation without compromising bacterial clearance by disrupting TLR2 triggering[J]. The Journal of Immunology, 2009, 183(1): 506-517.

    [34] Park SJ, Kang SH, Kang YK,etal. Inhibition of homodimerization of toll-like receptor 4 by 4-oxo-4-(2-oxo-oxazolidin-3-yl)-but-2-enoic acid ethyl ester[J]. International Immunopharmacology, 2011, 11(1): 19-22.

    國家自然基金資助項(xiàng)目(NO:81273530,81202363,81302786)

    鄒強(qiáng),E-mail:qiangzou99@gmail.com

    http://www.cnki.net/kcms/detail/51.1705.R.20140410.1537.005.html

    10.3969/j.issn.1674-2257.2014.02.032

    R392.9

    A

    猜你喜歡
    滑膜配體傳導(dǎo)
    基于滑膜控制的船舶永磁同步推進(jìn)電機(jī)直接轉(zhuǎn)矩控制研究
    高層建筑施工中的滑膜施工技術(shù)要點(diǎn)探討
    神奇的骨傳導(dǎo)
    “散亂污”企業(yè)治理重在傳導(dǎo)壓力、抓實(shí)舉措
    基于配體鄰菲啰啉和肉桂酸構(gòu)筑的銅配合物的合成、電化學(xué)性質(zhì)及與DNA的相互作用
    基于開關(guān)電源的傳導(dǎo)抗擾度測試方法
    滑膜肉瘤的研究進(jìn)展
    新型三卟啉醚類配體的合成及其光學(xué)性能
    原發(fā)性肺滑膜肉瘤診斷與治療——附一例報(bào)告及文獻(xiàn)復(fù)習(xí)
    基于Schiff Base配體及吡啶環(huán)的銅(Ⅱ)、鎳(Ⅱ)配合物構(gòu)筑、表征與熱穩(wěn)定性
    内江市| 察哈| 玛多县| 滨州市| 英德市| 筠连县| 日照市| 天台县| 富锦市| 寿阳县| 辽源市| 靖宇县| 建湖县| 江山市| 临猗县| 万荣县| 陇西县| 龙岩市| 桂东县| 和静县| 玉门市| 华宁县| 涞水县| 康马县| 宝兴县| 松溪县| 洛南县| 沐川县| 天峨县| 雷州市| 金溪县| 温泉县| 肇东市| 轮台县| 镇原县| 环江| 抚松县| 南京市| 荣昌县| 久治县| 平果县|