韓 潔, 楊 慧,杜建穎, 王春妹, 王啟明 ,田德潤(rùn)
(天津醫(yī)科大學(xué) 解剖與組織胚胎學(xué)系,天津 300070)
mTOR(mammalian target of rapamycin),即哺乳動(dòng)物雷帕霉素靶點(diǎn),在所有的真核生物中普遍高表達(dá),是調(diào)節(jié)細(xì)胞生長(zhǎng)的中心,與人類的健康息息相關(guān),許多慢性疾病的發(fā)生都與mTOR通路信號(hào)的改變有關(guān),如II型糖尿病、肥胖、代謝綜合征以及多種腫瘤性疾病[1-3]。mTOR存在于兩種復(fù)合體中,mTORC1和mTORC2[4]。其中,mTORC1由四個(gè)亞基組成,其下游底物包括4E-BP1和S6K等;而mTORC2由五個(gè)亞基組成,包括其下游底物包括AKT、PKC等。兩種復(fù)合體中,mTORC1與代謝聯(lián)系緊密[5],它可以控制細(xì)胞生長(zhǎng),血管發(fā)生和代謝等[6- 7]。mTOR通路上游有多種調(diào)節(jié)因素,如:瘦素(leptin)、脂聯(lián)素、胃饑餓素(ghrelin)、膽囊收縮素、胰島素等,這些因素可以在下丘腦和外周器官通過mTOR通路相互影響以調(diào)控機(jī)體的能量平衡[8]。下丘腦是機(jī)體能量調(diào)節(jié)的中樞,而胰腺作為一個(gè)重要的外周器官,對(duì)能量平衡和代謝也有重要的影響。我們前期的實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)食源性肥胖(DIO)大鼠下丘腦AMPK表達(dá)下調(diào),導(dǎo)致mTOR通路活性增加。本文旨在比較DIO大鼠和DR大鼠胰腺中mTOR通路的變化,并探討這種變化對(duì)整個(gè)機(jī)體能量和代謝過程中的作用。
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 100只剛斷乳雄性SD大鼠,體重40~50 g。動(dòng)物飼養(yǎng)于天津醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,動(dòng)物室溫度:(22±2)℃;每天光照:7:00~19:00;隨意取食飼料和自來水?;A(chǔ)維持飼料適應(yīng)喂養(yǎng)1周后分組:①高脂飲食組(n=80),給予自制高脂飲食飼料;②對(duì)照組(n=20),繼續(xù)給予基礎(chǔ)維持飼料。繼續(xù)喂養(yǎng)14周后,高脂飲食組體重超過對(duì)照組最大體重者,設(shè)為肥胖組(DIO);體重低于對(duì)照組平均體重的設(shè)為肥胖抵抗組(DR)。
1.2 動(dòng)物飼料 基礎(chǔ)維持飼料能量成份:5%脂肪,55%碳水化合物,22%蛋白質(zhì),7%灰分,5%纖維素。飼料熱量為3.80 kcal/g。
自制高能飼料配方為:50%標(biāo)準(zhǔn)動(dòng)物飼料,15%豬油,10%白糖,5%奶粉,10%雞蛋,5%芝麻油,5%花生。能量成份為:30%脂肪,40%碳水化合物,15.5%蛋白質(zhì),4%灰分,3%纖維素。飼料熱量為4.76 kcal/g。
1.3 取材 各組動(dòng)物經(jīng)水合氯醛(500 mg/kg)麻醉后,主動(dòng)脈插管,用生理鹽水快速灌注沖出血液后,用4%多聚甲醛緩慢灌注,至全身肌肉抽搐后停止。迅速剪開腹腔,取胰腺,放入4 ℃4%多聚甲醛溶液中后固定,過夜。
1.4 包埋及切片 部分組織梯度蔗糖脫水(至組織下沉)后,用OCT膠包埋。冰凍切片厚度:6~8 μm。其余組織蒸餾水沖洗后,經(jīng)梯度酒精脫水、二甲苯透明,石蠟包埋。石蠟切片厚度:4 μm。
1.5 免疫組織化學(xué)和免疫熒光
1.5.1 免疫組織化學(xué) 石蠟切片經(jīng)二甲苯和梯度酒精脫蠟至水,0.3% H2O2甲醇溶液滅活過氧化物酶,98℃檸檬酸鈉修復(fù)抗原,10%山羊血清封閉后,加入一抗(AMPK、4E-BP1),4℃過夜,再經(jīng)SP試劑盒(二抗和辣根過氧化物酶),DAB顯色,蘇木素染色,酒精梯度脫水,二甲苯透明,最后用中性樹膠封片。PBS替代一抗作為陰性對(duì)照。
1.5.2 免疫熒光 冰凍切片經(jīng)室溫復(fù)溫后水化,經(jīng)1%Triton-X100增加通透性,10%山羊血清封閉后,加入一抗(S6K),4℃過夜,再避光加入二抗、DAPI,最后用甘油封片。PBS替代一抗作為陰性對(duì)照。用倒置熒光顯微鏡(Olympus IX71)觀察并照相;通過比較熒光信號(hào)的強(qiáng)弱和熒光細(xì)胞的數(shù)量對(duì)結(jié)果進(jìn)行分析。
1.6 圖像分析 針對(duì)各組的免疫組化染色結(jié)果,分別選取5個(gè)獨(dú)立的視野用Image-Pro Plus 6.0圖像分析系統(tǒng)測(cè)量出單位光密度值,并求得平均光密度值(OD值)再進(jìn)行比較分析。
2.1 動(dòng)物模型結(jié)果 初始體重高脂飲食組(49.95±2.56)g,對(duì)照組(48.65±2.94)g,兩組無差別。給予不同飼料4周后開始出現(xiàn)差別,持續(xù)到14周。兩組最終體重分別為高脂飲食組(545.98±49.49)g,對(duì)照組(497.55±37.38)g,具有顯著差異(P<0.001)(見圖1)。其中,高脂飲食組36只大鼠體重超過對(duì)照組最高體重,設(shè)置成DIO組(587.56±39.32)g,11只鼠體重低于對(duì)照組平均體重,設(shè)置成DR組(476.90±15.06)g,對(duì)照組體重取中間10只,設(shè)置成CO組(503.03±17.24)g。DIO組與DR組、DIO組與CO組之間體重有統(tǒng)計(jì)意義(P<0.001),DR組和CO組之間體重?zé)o統(tǒng)計(jì)意義(見圖2)。
注:﹡:P<0.05,﹡﹡:P<0.01,﹡﹡﹡:P<0.001,VS對(duì)照組。圖1 大鼠體重變化圖
注:﹡﹡﹡:P<0.001,vs DR;﹟﹟﹟:P<0.001,vsCO。圖2 分組后大鼠體重圖
2.2 免疫組織化學(xué)和免疫熒光結(jié)果 AMPK在胰腺中的陽性表達(dá)以胞漿為主,呈棕黃色顆粒狀;以內(nèi)分泌部細(xì)胞表達(dá)明顯。DIO組明顯高于DR組,有統(tǒng)計(jì)意義(P<0.05)(見表1、圖3)。
表1大鼠胰腺各組免疫組化結(jié)果平均光密度值(OD值)比較
注:﹡:P<0.05,vs DIO。
4E-BP1陽性表達(dá)同樣以胞漿為主,呈棕黃色顆粒狀,表達(dá)的區(qū)域以胰腺的外分泌部細(xì)胞最為明顯,胰島外周部亦有表達(dá),DIO組明顯低于DR組,有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(見表1、圖4)。
S6K的免疫熒光陽性表達(dá)著色以胞漿為主,呈綠色熒光,胰腺的胰島外周部有典型的綠色熒光信號(hào),DIO組明顯低于DR組(見圖5)。
注: A:DIO胰腺;B:DR胰腺。圖4 4E-BP1免疫組織化學(xué)染色SP法×100
注: A:DIO胰腺;B:DR胰腺。圖5 S6K免疫熒光×200
圖6 AMPK/mTOR通路圖
肥胖及其相關(guān)性代謝性疾病在世界的流行越來越受到人們的關(guān)注。食源性肥胖大鼠模型的建立過程,模擬了人類肥胖發(fā)生的過程。在建模過程中,原本體重?zé)o差異的大鼠,部分表現(xiàn)出攝食過度,成為DIO大鼠,另外的部分則維持了相對(duì)正常的體重,成為DR大鼠,這表明肥胖這種疾病的發(fā)生受基因和環(huán)境(如飲食)共同控制,而不是僅受基因或者環(huán)境單方面的影響。
果蠅和哺乳動(dòng)物基因研究表明TSC1/TSC2是位于mTORC1上游的重要抑制劑,磷酸化TSC1/TSC2可以調(diào)節(jié)mTORC1的活性,缺失TSC1/TSC2會(huì)導(dǎo)致mTORC1過度活躍[9]。 AMPK可以磷酸化TSC2保守的絲氨酸位點(diǎn),抑制mTORC1復(fù)合體的活性[10]。而當(dāng)缺乏TSC2的細(xì)胞時(shí)給予AMPK后,細(xì)胞仍然可以變現(xiàn)出部分抑制,說明AMPK還可以通過除TSC2之外的其他途徑直接或間接影響mTORC1活性[11],如AMPK可以通過直接磷酸化raptor(mTORC1復(fù)合體的一個(gè)亞基)來抑制mTOR通路的活性[12-13]。
AMPK是一種AMP相關(guān)的高度保守的異源三聚體絲氨酸/蘇氨酸激酶復(fù)合體。AMPK可以作為機(jī)體能量的開關(guān),在能量不足的情況下被激活[9]。當(dāng)能量不足時(shí),AMP可以直接綁定AMPKγ亞基的CBS區(qū)域,抑制α亞基的絲氨酸的去磷酸化,而這種絲氨酸的磷酸化是AMPK激活所必須的[14]。AMPK可以對(duì)中樞神經(jīng)系統(tǒng)和外周組織中的激素和營(yíng)養(yǎng)的信號(hào)作出反應(yīng),進(jìn)而調(diào)節(jié)食物攝入和能量消耗。其下游靶點(diǎn)mTOR通路,可以作為細(xì)胞內(nèi)的營(yíng)養(yǎng)傳感器來調(diào)節(jié)蛋白質(zhì)合成、細(xì)胞生長(zhǎng)和代謝。
mTOR通路經(jīng)典的下游靶標(biāo)4E-BP1和S6K都有一個(gè)特殊的基序(TOS基序),可以使二者直接綁定到mTORC1復(fù)合體的raptor上[15]。4E-BP1多個(gè)位點(diǎn)磷酸化,使得4E-BP1從eIF4E上解離,并促進(jìn)eIF4G與eIF4E綁定,最終形成翻譯起始復(fù)合物。同時(shí),S6K1的389位蘇氨酸磷酸化,激活S6K1,隨后磷酸化核糖體蛋白S6,最終促進(jìn)蛋白質(zhì)的合成。另外,S6K1也可以對(duì)準(zhǔn)eIF4B的422位絲氨酸,促進(jìn)其與eIF4A綁定,提高eIF4A解鏈酶活性,然后啟動(dòng)蛋白質(zhì)翻譯過程[16](見圖6)。
胰腺作為機(jī)體重要的內(nèi)分泌器官,分為外分泌部和內(nèi)分泌部。其中內(nèi)分泌部起主要作用的是胰島細(xì)胞,包括α細(xì)胞、β細(xì)胞、D細(xì)胞和PP細(xì)胞等。α細(xì)胞主要位于胰島的外周部分,分泌胰高血糖素;β細(xì)胞和D細(xì)胞主要位于胰島的中間部分,分別分泌胰島素和生長(zhǎng)激素;而PP細(xì)胞含量很少,分泌胰多肽。
我們的結(jié)果顯示,DR大鼠胰島的周圍部分4E-BP1和S6K表達(dá)增加,也就是mTOR通路活性與DIO相比明顯增加,而其上游AMPK信號(hào)卻相對(duì)減弱。而位于胰島外周的是胰島α細(xì)胞[17],信號(hào)活化增加了胰高血糖素的分泌。胰高血糖素可以激活肝細(xì)胞的磷酸化酶,加速糖原分解。也可激活脂肪酶,促進(jìn)脂肪分解,并且加強(qiáng)脂肪酸氧化,使酮體生成增多。還可以促進(jìn)氨基酸進(jìn)入肝細(xì)胞。酮體和氨基酸的增加可以促進(jìn)糖異生,可以與分解的肝糖原共同升高血糖。升高的血糖可以通過下丘腦的AMPK傳遞飽食的營(yíng)養(yǎng)信號(hào),刺激下丘腦弓狀核分泌抑制食欲的POMC[18],導(dǎo)致食物的攝入的減少,從而使DR大鼠維持較正常體重。此外,胰高血糖素在肝臟促進(jìn)脂肪分解,也可以從另一方面維持DR大鼠體重。有文獻(xiàn)報(bào)道,胰島α細(xì)胞缺失的胰島對(duì)葡萄糖刺激產(chǎn)生的胰島素明顯降低[19],也就是說,胰高血糖素刺激了胰島素的分泌,缺乏其刺激作用將減少胰島素的分泌,這可能是DR大鼠能維持正常體重的又一重要原因。但確切的機(jī)制需要進(jìn)一步的研究證實(shí)。
[參考文獻(xiàn)]
[1] Nawroth R, Stellwagen F, Schulz W A, et al. S6K1 and 4E-BP1 are independent regulated and control cellular growth in bladder cancer[J]. PLoS One, 2011,6(11):e27509.
[2] Din F V, Valanciute A, Houde V P, et al. Aspirin inhibits mTOR signaling, activates AMP-activated protein kinase, and induces autophagy in colorectal cancer cells[J]. Gastroenterology, 2012,142(7):1504-1515.
[3] Weijenberg M P, Hughes L A, Bours M J, et al. The mTOR Pathway and the Role of Energy Balance Throughout Life in Colorectal Cancer Etiology and Prognosis: Unravelling Mechanisms Through a Multidimensional Molecular Epidemiologic Approach[J]. Curr Nutr Rep, 2013,2(1):19-26.
[4] Wullschleger S,Loewith R, Hall M N. TOR signaling in growth and metabolism[J]. Cell, 2006,124(3):471-484.
[5] Zoncu R, Efeyan A, Sabatini D M. mTOR: from growth signal integration to cancer, diabetes and ageing[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2011,12(1):21-35.
[6] Garcia-Martinez J M, Alessi D R. mTOR complex 2 (mTORC2) controls hydrophobic motif phosphorylation and activation of serum- and glucocorticoid-induced protein kinase 1 (SGK1)[J]. Biochem J, 2008,416(3):375-385.
[7] Guertin D A, Sabatini D M. Defining the role of mTOR in cancer[J]. Cancer Cell, 2007,12(1):9-22.
[8] Mannaa M, Kr?mer S, Boschmann M, et al. mTOR and regulation of energy homeostasis in humans[J]. J Mol Med (Berl), 2013,91(10):1167-1175.
[9] Shaw R J. LKB1 and AMP-activated protein kinase control of mTOR signalling and growth[J]. Acta Physiol (Oxf), 2009,196(1):65-80.
[10] Inoki K, Ouyang H, Zhu T, et al. TSC2 integrates Wnt and energy signals via a coordinated phosphorylation by AMPK and GSK3 to regulate cell growth[J]. Cell, 2006,126(5):955-968.
[11] Hahn-Windgassen A, Nogueira V, Chen C C, et al. Akt activates the mammalian target of rapamycin by regulating cellular ATP level and AMPK activity[J]. J Biol Chem, 2005,280(37):32081-32089.
[12] Inoki K, Zhu T, Guan K L. TSC2 mediates cellular energy response to control cell growth and survival[J]. Cell, 2003,115(5):577-590.
[13] Gwinn D M, Shackelford D B, Egan D F, et al. AMPK phosphorylation of raptor mediates a metabolic checkpoint[J]. Mol Cell, 2008,30(2):214-226.
[14] Sanders M J, Grondin P O, Hegarty B D, et al. Investigating the mechanism for AMP activation of the AMP-activated protein kinase cascade[J]. Biochem J, 2007,403(1):139-148.
[15] Holz M K, Ballif B A,Gygi S P, et al. mTOR and S6K1 mediate assembly of the translation preinitiation complex through dynamic protein interchange and ordered phosphorylation events[J]. Cell, 2005,123(4):569-580.
[16] Liu Y, Vertommen D, Rider M H, et al. Mammalian target of rapamycin-independent S6K1 and 4E-BP1 phosphorylation during contraction in rat skeletal muscle[J]. Cell Signal,2013,25(9):1877-1886.
[17] Liu Z, Kim W, Chen Z, et al. Insulin and glucagon regulate pancreatic alpha-cell proliferation[J]. PLoS One, 2011,6(1):e16096.
[18] Zhan C, Zhou J, Feng Q, et al. Acute and long-term suppression of feeding behavior by POMC neurons in the brainstem and hypothalamus, respectively[J]. J Neurosci, 2013,33(8):3624-3632.
[19] 李光偉,葉麗亞,李靜,等.小鼠胰島α細(xì)胞的缺失對(duì)移植胰島功能的影響[J].中華醫(yī)學(xué)雜志, 2002,82(20):1427-1431.