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      超聲波輔助提取馬蹄皮多酚物質(zhì)的工藝

      2014-07-27 01:13:58
      食品研究與開發(fā) 2014年9期
      關(guān)鍵詞:馬蹄乙醇體積

      (賀州學(xué)院,廣西賀州 542899)

      多酚類物質(zhì)已被稱作人類健康的“第七營養(yǎng)素”,成為人類預(yù)防和治療疾病的天然保健品和藥物[1]。從天然植物的不同部位中提取具有抗氧化能力的物質(zhì)[2-4],已被認(rèn)為是尋求安全可靠天然抗氧化劑的一種有效方式。在馬蹄的加工過程產(chǎn)生的馬蹄皮歷來被視為廢棄物,其質(zhì)量占鮮馬蹄質(zhì)量的20%~25%[5],資源量很大。本文利用超聲波輔助法對馬蹄皮多酚類物質(zhì)進行提取,從而得到更省時間、得率又高的提取方法[6-7],這對于馬蹄皮的綜合利用具有積極的作用,也有利于我國馬蹄生產(chǎn)地區(qū)的經(jīng)濟發(fā)展。

      1 材料與方法

      1.1 材料、試劑與儀器

      馬蹄皮(購買于賀州市各馬蹄收購點):剔除有腐跡者,洗凈,自然風(fēng)干,粉碎備用。

      1 mol/L Folin—Ciocalteu(FC)試劑,沒食子酸,無水碳酸鈉,無水乙醇均為分析純。

      DS-5510DT超聲波清洗器:上海生析超聲儀器有限公司;JA2103N型電子天平:上海明橋精密科學(xué)儀器有限公司;TU-1901紫外可見分光光度計:北京普析通用儀器有限責(zé)任公司。

      1.2 方法

      1.2.1 超聲波法提取馬蹄皮多酚物質(zhì)

      稱取2 g馬蹄皮粉,置于錐形瓶中,用乙醇溶液在某溫度下超聲提取,趁熱減壓抽濾,濾液重復(fù)提取1次,提取液合并,為馬蹄皮多酚提取液。

      1.2.2 馬蹄皮多酚含量測定

      1.2.2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

      參照文獻[8],分別移取一定量的沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)溶液于5支5 mL具塞刻度試管中,再分別加入0.20 mL 1 mol/L FC試劑,立即混勻,振蕩1 min,再分別加入0.15 mL 10%的Na2CO3,振蕩30 s,用蒸餾水定容至5 mL。在25℃下反應(yīng)80 min后于765 nm處測定吸光度A,以試劑空白為參比。

      1.2.2.2 馬蹄皮多酚提取率的計算

      以沒食子酸為標(biāo)樣,采用Folin-Ciocalteu法在765 nm處測定吸光度。馬蹄皮多酚的提取率為得到的多酚總量與原料馬蹄皮的質(zhì)量之比。

      1.2.3 馬蹄皮多酚物質(zhì)提取工藝的單因素試驗

      1.2.3.1 乙醇體積濃度對馬蹄皮多酚物質(zhì)提取率的影響

      選擇不同的乙醇體積濃度:30%、40%、50%、60%、70%,超聲頻率40 KHz、超聲處理時間30 min、料液比(g∶mL)為1∶16、提取溫度50℃條件下進行馬蹄皮多酚物質(zhì)的提取。

      1.2.3.2 超聲時間對馬蹄皮多酚物質(zhì)提取率的影響

      選擇不同的超聲時間:10、20、30、40、50min,在超聲頻率40KHz、乙醇體積濃度50%、料液比(g∶mL)為1∶16、提取溫度50℃條件下進行馬蹄皮多酚物質(zhì)的提取。

      1.2.3.3 料液比對馬蹄皮多酚物質(zhì)提取率的影響

      選擇不同的料液比(g∶mL):1∶8,1∶12,1∶16,1 ∶20,1 ∶24,在超聲頻率 40 KHz、乙醇體積濃度 50%、超聲處理時間30 min、提取溫度50℃條件下進行馬蹄皮多酚物質(zhì)的提取。

      1.2.3.4 超聲溫度對馬蹄皮多酚物質(zhì)提取率的影響

      選擇不同的超聲溫度:30、40、50、60、70℃,在超聲頻率40 KHz、乙醇體積濃度50%、超聲處理時間30 min、料液比(g∶mL)1∶16條件下進行馬蹄皮多酚物質(zhì)的提取。

      1.2.4 正交設(shè)計試驗

      在單因素試驗結(jié)果的基礎(chǔ)上,選取乙醇體積濃度、超聲時間、料液比、超聲溫度為影響因素,以多酚物質(zhì)的提取率為指標(biāo),采用L9(34)正交試驗得出最佳提取工藝條件。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

      以沒食子酸濃度C(μg/mL)對吸光度A作標(biāo)準(zhǔn)曲線,用最小二乘法作線性回歸,得線性回歸方程:C=0.033 62A-0.059 4,相關(guān)系數(shù)R=0.999 5。

      2.2 乙醇體積濃度對馬蹄皮多酚提取率的影響

      乙醇體積濃度對馬蹄皮多酚提取率的影響見圖1。

      圖1 乙醇體積濃度對馬蹄皮多酚提取率的影響Fig.1 Effects of ethanol concentration on extraction

      由圖1可知,開始隨著乙醇體積濃度的增大,馬蹄皮多酚提取率不斷增大,當(dāng)乙醇體積濃度為40%~60%時,多酚物質(zhì)提取率相差不大,而后乙醇體積濃度再升高時多酚的提取率緩慢降低。這或許是由于一些醇溶性雜質(zhì)、色素、等成分溶出量增加,干擾因素隨之增大,從而導(dǎo)致馬蹄皮多酚物質(zhì)的提取率下降。因此,從提取率來看,單因素試驗結(jié)果乙醇溶液的濃度應(yīng)控制在50%。

      2.3 提取時間對多酚提取率的影響

      提取時間對多酚提取率的影響見圖2。

      圖2 超聲時間對馬蹄皮多酚提取率的影響Fig.2 Effects of time on extraction

      由圖2可知,在一定的超聲時間范圍內(nèi),隨著超聲提取時間增加多酚提取率升高,當(dāng)時間達(dá)到30 min候多酚提取率逐漸下降,這或許是由于長時間的超聲作用對多酚物質(zhì)產(chǎn)生破壞,從而導(dǎo)致多酚提取率降低。因此超聲提取時間30 min為宜。

      2.4 料液比對多酚提取率的影響

      料液比對多酚提取率的影響見圖3。

      由圖 3 可知,當(dāng)料液比小于 1∶16(g∶mL)時,增大溶劑用量,多酚提取率明顯增加,料液比達(dá)到 1∶16(g∶mL)時,多酚提取率達(dá)到3.0%;當(dāng)繼續(xù)增加料液比時,多酚提取率趨于平緩,表明提取物質(zhì)已基本提取完全,過大的料液比會造成溶劑和能源的浪費,因此從降低成本等綜合考慮,單因素試驗結(jié)果確定料液比為1∶16(g∶mL)較合理。

      2.5 超聲溫度對多酚提取率的影響

      超聲溫度對多酚提取率的影響見圖4。

      圖3 料液比對馬蹄皮多酚提取率的影響Fig.3 Effects of solid-liquid on extraction

      圖4 超聲溫度對馬蹄皮多酚提取率的影響Fig.4 Effects of temperature on extraction

      由圖4可知,開始馬蹄皮多酚提取率隨溫度的升高而升高,當(dāng)溫度達(dá)到50℃時,多酚提取率達(dá)到最大值,當(dāng)溫度超過50℃后,馬蹄皮多酚提取率明顯下降,這或許是由于溫度過高破壞了多酚物質(zhì),從而影響了馬蹄皮多酚物質(zhì)的提取率。因此,從提取率和操作控制難易程度考慮,單因素試驗結(jié)果確定超聲溫度為50℃。

      2.6 正交試驗

      在單因素試驗的基礎(chǔ)上選擇料液比、提取溫度、乙醇體積濃度、超聲時間4個因素進行L9(34)正交試驗,分析馬蹄皮中多酚物質(zhì)在不同提取條件下的提取率,確定最佳超聲提取條件。因素水平見表1,正交試驗結(jié)果見表2。

      表1 正交試驗因素水平表Table 1 Factor and level of orthogonal test

      表2 正交試驗結(jié)果L9(34)Table 2 Orthogonal experimental results of orthogonal test

      表2中的極差分析表明,影響馬蹄皮多酚類物質(zhì)提取率的因素主次順序為提取時間(D)>乙醇體積濃度(C)>料液比(A)>提取溫度(B)。馬蹄皮多酚的最佳提取條件為A2B2C3D1,即在50℃條件下,用60%乙醇為溶劑,料液比 1 ∶16(g∶mL),超聲時間 20 min,馬蹄皮多酚的提取率高,提取率達(dá)3.00%。

      3 結(jié)論

      超聲波輔助提取馬蹄皮多酚物質(zhì)正交試驗中的4個影響因素的主次順序為:提取時間>乙醇體積濃度>料液比>提取溫度,經(jīng)正交設(shè)計優(yōu)化后確定提取馬蹄皮多酚物質(zhì)的最佳工藝參數(shù)為:乙醇體積濃度60%、超聲浸提 20 min、料液比 1∶16(g∶mL)、超聲溫度 50 ℃,此條件下馬蹄皮多酚提取率達(dá)到3.00%。該工藝條件溫和,生產(chǎn)成本低,也為馬蹄皮多酚物質(zhì)的深入開發(fā)利用提供了新的技術(shù)途徑。

      [1] 李國秀.石榴多酚類物質(zhì)的分離鑒定和抗氧化活性研究[D] .西安:陜西師范大學(xué)食品工程與營養(yǎng)科學(xué)學(xué)院,2009

      [2] Jeong C H,Choi G N,Kim J H,et al.Antioxidant activities from theaerial parts of Platycodon grandiflorum[J] .Food chemistry,2010,118(2):278-282

      [3] Tung Y T,Chang S T.Inhibition of xanthine oxidase by extracts and their phytochemicals[J] .JAgric food Chem,2010,58(2):781-786

      [4] 薛冰,金在久,施溯筠.榆黃蘑干品和鮮品的抗氧化性[J] .食品研究與開發(fā),2011,32(3):23-26

      [5] 羅楊合,陳振林,謝復(fù)青,等.馬蹄皮棕色素的微波提取工藝研究[J] .中國調(diào)味品,2009,34(1):92-94,99

      [6] 丁利君,陳艷.超聲波對佛手瓜果膠提取效果的影響[J] .廣州食品工業(yè)科技,2004(4):53-54

      [7] Manel Masmoud,i Souhail Besbes,Moncef Chaaboun,et al.Optimization of pectin extraction from lemon by product with acidified datejuice usingresponse surface methodology[J] .Carbohydrate polymers,2008,74(2):185-192

      [8] 羅楊合.Folin-Ciocalteu法測定馬蹄皮中多酚的含量[J] .湖北農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,48(9):2247-2249

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