張 珺,吳 奎,肖 峻,陳遠哲,熊 宇
巨噬細胞移動抑制因子(microphage migration inhibitor factor,MIF)主要由活化T淋巴細胞分泌,早期發(fā)現(xiàn)與炎癥反應(yīng)及免疫應(yīng)答有關(guān)的細胞因子。近年來研究[1]顯示,MIF在腫瘤的發(fā)生發(fā)展過程中具有重要的作用,具體表現(xiàn)在促進細胞的增殖、分化、腫瘤血管的形成、腫瘤侵襲能力,甚至抑制腫瘤細胞的凋亡等。實體腫瘤血管的形成是其生長和遷徙的基礎(chǔ),血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)是新生血管形成過程中最重要的刺激因子之一,它能夠通過誘導(dǎo)腫瘤血管的形成促進腫瘤的浸潤轉(zhuǎn)移。研究[2]顯示VEGF與膀胱移形細胞癌的侵襲能力有關(guān),并可能作為判斷預(yù)后的指標。該研究主要探討MIF與VEGF在膀胱尿路上皮癌(bladder transitional cell carcinoma,BTCC)組織中的表達及其臨床意義,并分析二者之間可能存在的關(guān)系。
1.1 病例資料 收集2011年2月~2012年6月在安徽醫(yī)科大學(xué)附屬省立醫(yī)院泌尿外科接受手術(shù)治療的BTCC患者75例,男45例,女30例,年齡16~81(58.30±22.61)歲。根據(jù)國際抗癌協(xié)會2009年第7版TNM病理臨床分期和2004年WHO病理分級標準進行組織學(xué)分級和分期,其中表淺性(Ta~T1期)50例,浸潤性(T2~T4期)25例。低度惡性傾向尿路上皮乳頭狀瘤28例,低分級BTCC 26例,高分級BTCC 21例。伴有淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移患者21例,無淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移患者54例。患者均行手術(shù)治療,其中,經(jīng)尿道膀胱腫瘤電切術(shù)47例,膀胱部分切除術(shù)24例,全膀胱術(shù)4例。另取12例正常膀胱黏膜組織作為對照組。標本取材后分兩部分,一部分立即放入RNA組織保護液中,4℃過夜,-80℃保存用于RT-qPCR;另一部分經(jīng)過10%甲醛溶液固定,石蠟包埋,連續(xù)切片后用于免疫組化染色。
1.2 主要試劑 抗人MIF單克隆抗體購自北京博奧森生物制藥公司;抗人VEGF、CD31單克隆抗體、S-P試劑盒(含二抗、DAB顯色劑)購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;熒光定量PCR檢測系統(tǒng)購自德國 Biometra;TRIzol Reagent、RNase抑制劑、反轉(zhuǎn)錄酶(含 buffer)、dNTP、SYBR Green qPCR mix購自大連寶生物工程公司;引物由上海生工生物工程公司合成。
1.3 實時熒光定量PCR(RT-qPCR)檢測mRNA表達 按照TRIzol說明書對所取組織進行RNA提取,并經(jīng)紫外分光光度計測定A260/A280比值定量在1.8~2.0之間,以其為模板逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA;MIF正向引物:5'-CCATGCCTATGTTCATCGTG-3',反向引物為5'-GAACAGCGGTGCAGGTAAGTG-3';VEGF正向引物為:5'-ACGTCTGCGGATCTTGGACA-3',反向引物為:5'-GGGCTGCTGCAATGATGAAG-3';所選內(nèi)參為 β-actin,正向引物為:5'-CCAAGGCCAAC-CGCGAGAAGATGAC-3',反向引物為:5'-AGGGTACATGGTGGTGGCGCCAGAC-3';RT-qPCR總反應(yīng)體系為 25 μl,SYBR Green mix 12.5 μl,正反向引物各1 μl,ddH2O 8 μl,cDNA 2.5 μl,進行擴增并采用2-ΔCT計算mRNA相對表達量。反應(yīng)條件:94℃ 3 min,1 個循環(huán);94 ℃30 s、55 ℃30 s、72 ℃1 min,40個循環(huán)。
1.4 免疫組化染色 石蠟包埋組織4 μm連續(xù)切片,常規(guī)37℃烘烤30 min,后二甲苯、乙醇脫蠟、水化,3%過氧化氫溶液浸泡10 min,阻斷內(nèi)源性過氧化物酶活性。VEGF采用高溫抗原修復(fù)20 min,MIF、CD31采用微波枸櫞酸鹽抗原修復(fù),緩慢復(fù)溫至室溫水洗后PBS清洗3次,每次3 min,正常血清封閉15 min后加一抗(VEGF濃度為1∶400;MIF濃度為1∶400;CD31濃度為1∶500),4℃過夜,PBS清洗3次,每次3 min。加生物素標記二抗,37℃孵育15 min,PBS洗滌3次,每次3 min;加DAB顯色劑,蘇木精復(fù)染,乙醇脫水,封片。用PBS代替一抗作為陰性對照組。
1.5 結(jié)果判定 RT-qPCR完成后采用2-ΔCT計算mRNA相對表達量,并計算平均表達量。MIF和VEGF陽性型號均位于胞質(zhì)內(nèi),細胞質(zhì)、部分細胞膜、細胞核呈棕黃色為陽性細胞,每張切片在×400高倍視野下隨機選擇4個視野,計數(shù)陽性細胞數(shù)?!埃睘椴槐磉_或者<30%細胞表達,“+”陽性細胞數(shù)為30% ~50%,“”陽性細胞數(shù)為50% ~70%,“”陽性細胞數(shù)為>70%。微血管密度(microvascular density,MVD)計數(shù):先在低倍鏡(×100)下選擇出微血管最密集的區(qū)域,然后于高倍鏡(×400)下計數(shù)5個視野的微血管數(shù)目,取平均值作為該病例的MVD值。所有切片均經(jīng)3位病理醫(yī)師在不清楚患者任何臨床資料的情況下獨立完成。
1.6 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件分析,數(shù)據(jù)以±s表示,各指標與患者臨床病理資料的關(guān)系采用獨立樣本t檢驗和χ2檢驗進行比較分析,各指標間的關(guān)系采用Spearman相關(guān)分析進行檢測。
2.1 MIF、VEGF mRNA的表達差異 實驗結(jié)果顯示MIF的PCR產(chǎn)物長度為368 bp,VEGF的PCR產(chǎn)物長度為380 bp,溶解溫度較均一,峰形也較銳利。分析mRNA表達情況,其中膀胱癌組織中MIF、VEGF mRNA的平均相對表達量與正常黏膜組織比較差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.002,P=0.008);浸潤性癌組織中mRNA的表達量與表淺性癌組織比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.045,P=0.018),見表1。
表1 MIF、VEGF mRNA的表達(±s)
表1 MIF、VEGF mRNA的表達(±s)
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2.2 MIF在BTCC組織中的表達 MIF陽性信號主要位于癌細胞胞質(zhì)內(nèi)(圖1),75例BTCC組織中,53例呈陽性,MIF陽性率為70.6%。12例正常膀胱組織中MIF陽性1例,陽性率為8.3%,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.000)。伴有淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的癌組織中MIF表達水平(20/21,95.5%)與無淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的癌組織(33/54,61.6%)比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.004)。隨著BTCC臨床分期的增高,MIF陽性率呈上升趨勢,在淺表性和浸潤性癌組織中陽性率分別為66%、80%,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.209)。隨著病理分級的增加,MIF陽性率分別為G1(53.6%)、G2(73.0%)、G3(90.4%),且差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.018)。復(fù)發(fā)性癌組織中MIF陽性率高于初發(fā)性,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.019)。MIF陽性表達率在性別、年齡、腫瘤大小及腫瘤數(shù)量的患者之間,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),見表2。
圖1 BTCC及正常膀胱黏膜組織中CD31、MIF和VEGF的表達 SP×400
表2 MIF、VEGF表達與膀胱癌臨床病理特征的關(guān)系
2.3 VEGF在BTCC組織中的表達 VEGF陽性信號主要位于癌細胞胞質(zhì)中(圖1),75例BTCC組織中,46例癌細胞呈陽性,MIF陽性率為61.3%。12例正常膀胱組織中均無表達,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.000)。伴有淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的癌組織中VEGF表達水平(12/21,57.1%)與無淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的癌組織(34/54,63.0%)比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.642)。隨著BTCC臨床分期的增高,VEGF陽性率呈上升趨勢,在淺表性和浸潤性癌組織中陽性率分別為50%、76%,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.031)。隨著病理分級的增加,MIF陽性率分別為 G1(42.9%)、G2(65.4%)、G3(80.9%),差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.022)。復(fù)發(fā)性癌組織中MIF陽性率明顯高于初發(fā)性,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.002)。VEGF陽性表達率在性別、年齡、腫瘤大小及數(shù)量的患者之間,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),見表2。
2.4 MIF與VEGF的相關(guān)性 75例 BTCC組織中,兩者均表達陽性的有38例,均無表達的有14例。采用Spearman秩相關(guān)分析后,兩者在BTCC組織中表達呈正相關(guān)(rs=0.330,P=0.004),見表3。
2.5MIF、VEGF與MVD的關(guān)系 實驗結(jié)果顯示MIF、VEGF陽性例數(shù)MVD值高于陰性例數(shù),差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.000,P=0.001),見表4。
表3 MIF與VEGF在BTCC中的表達(n)
表4 MIF、VEGF與MVD的關(guān)系(±s)
表4 MIF、VEGF與MVD的關(guān)系(±s)
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近年來,研究[1]表明MIF在腫瘤演變過程中發(fā)揮著重要作用,無論在腫瘤細胞增殖、分化、遷移還是腫瘤血管形成過程中都扮演著重要角色。Meyer-Siegler et al[3]發(fā)現(xiàn)膀胱癌細胞株 HT-1376 中存在MIF高表達現(xiàn)象;而通過對細胞加以外源性的MIF抗體或抑制劑后,其分泌受到抑制,同時該腫瘤細胞增殖明顯減弱,這表明MIF可能在促進BTCC癌細胞的增殖過程中起重要作用。Liu et al[4]研究亦發(fā)現(xiàn),MIF高表達與腫瘤的遠處轉(zhuǎn)移有關(guān),經(jīng)MIF抑制劑處理后腫瘤細胞的轉(zhuǎn)移和侵襲能力明顯降低。此外,相關(guān)研究[5-6]顯示多種腫瘤中MIF的表達水平同P53蛋白、VEGF蛋白等的表達呈正相關(guān),而這些蛋白均被認為在腫瘤的增殖、分化及血管形成等過程中扮演著重要角色。
本研究采用RT-qPCR、免疫組化方法分別檢測MIF在BTCC中的表達情況,結(jié)果顯示MIF在膀胱癌組織中的表達水平明顯高于正常黏膜組織。通過對免疫組化染色結(jié)果進一步分析顯示,MIF的表達水平在有淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移癌組織中明顯高于無淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移組織,高級別明顯高于低級別。這間接提示MIF蛋白在BTCC組織的生長、分化以及轉(zhuǎn)移等生物學(xué)行為過程可能發(fā)揮著重要作用,高濃度的MIF有可能促進上述一系列過程的發(fā)生。目前,RT-qPCR結(jié)果顯示MIF mRNA表達量在進展期癌組織中明顯高于早期癌組織,而免疫組化則顯示MIF蛋白表達水平與臨床分期無關(guān)。因此,在BTCC組織中MIF mRNA的表達與MIF蛋白的表達并非完全一致,這一現(xiàn)象在許多基因中普遍存在[7]。
實體腫瘤的生長有賴于腫瘤新生血管的形成,并且腫瘤新生血管的形成也是其轉(zhuǎn)移的病理生理基礎(chǔ)。血管形成是一個非常復(fù)雜的過程,在此過程中需要諸多因素的參與,如VEGF、血管生成素、堿性成纖維生長因子(bFGF)及環(huán)氧合酶-2等,其中VEGF所扮演的角色最為重要,它能夠與血管內(nèi)皮特異性相結(jié)合,促進血管內(nèi)皮細胞分裂增生、增強血管通透性,是作用最強的血管生成因子之一[8]。因此,其在腫瘤的生長、浸潤及轉(zhuǎn)移中起著重要作用。本研究RT-qPCR結(jié)果顯示,癌組織中VEGF mRNA的平均表達量高于正常組織,且浸潤性癌組織中mRNA平均表達量高于表淺性。免疫組化法結(jié)果顯示在不同分期、分級的腫瘤組織中,VEGF的表達水平存在差異,即分化越低、分期越晚的腫瘤組織中其含量越高。且對于復(fù)發(fā)性癌組織,VEGF表達明顯高于初發(fā)性,提示VEGF在BTCC復(fù)發(fā)時血管的形成和腫瘤發(fā)展同樣具有重要作用;但VEGF表達水平與有無淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移無明顯相關(guān)性。筆者推測,這與腫瘤細胞淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移機制相對復(fù)雜有關(guān),單一因素并不能反映出其主要生物學(xué)特性,此外,本研究樣本量相對較少也可能是影響因素之一。
在MIF表達陽性組織中,VEGF和MVD表達均明顯增高,Spearman相關(guān)分析顯示MIF與二者呈正相關(guān)關(guān)系。提示MIF可能促進BTCC組織中VEGF的表達,從而達到間接促進腫瘤組織微血管形成的作用。Cheng et al[6]在宮頸癌的研究中發(fā)現(xiàn),MIF與其受體CD74的高表達能夠增加VEGF的表達,并指出MIF在宮頸癌的腫瘤血管形成中扮演著重要的角色。Rubio et al[9]研究指出,腫瘤組織中 MVD可能成為淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移以及患者預(yù)后的一個新的指標。本研究顯示MVD與淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移相關(guān),而另一方面,MIF與淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移和微血管形成均成明顯的正相關(guān)性。因此,MVD是否能夠直接促進淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移尚不明確,可能為一個伴隨關(guān)系,兩者之間相互作用關(guān)系仍需進一步研究。
綜上所述,MIF與VEGF的高表達且協(xié)同作用可能在BTCC的發(fā)生發(fā)展、浸潤轉(zhuǎn)移及復(fù)發(fā)方面具有重要作用,且MIF可能是影響B(tài)TCC腫瘤組織淋巴轉(zhuǎn)移、微血管形成和VEGF表達的重要因素,進一步研究其作用機制可能成為BTCC分子靶向治療中新的切入點。
[1]Babu S N,Chetal G,Kumar S.Macrophage migration inhibitory factor:a potential marker for cancer diagnosis and therapy[J].A-sian Pac J Cancer Prev,2012,13(5):1737-44.
[2]Sato K,Sasaki R,Ogura Y,et al.Expression of vascular endothelial growth factor gene and its receptor(flt-1)gene in urinary bladder cancer[J].Tohoku J Exp Med,1998,185(3):173 -84.
[3]Meyer-Siegler K L,Leifheit E C,Vera P L.Inhibition of macrophage migration inhibitory factor decreases proliferation and cytokine expression in bladder cancer cells[J].BMC Cancer,2004,4:34.
[4]Liu H,Chen G,Zhang W,et al.Overexpression of macrophage migration inhibitory factor in adenoid cystic carcinoma:correlation with enhanced metastatic potential[J].J Cancer Res Clin Oncol,2013,139(2):287-95.
[5]龐國福,李解方,丁 平,等.P53和MIF在前列腺癌組織中的表達及臨床意義[J].南華大學(xué)學(xué)報,2008,36(4):452-4.
[6]Cheng R J,Deng W G,Niu C B,et al.Expression of macrophage migration inhibitory factor and CD74 in cervical squamous cell carcinoma[J].Int J Gynecol Cancer,2011,21(6):1004 -12.
[7]Ostlund G,Sonnhammer E L.Quality criteria for finding genes with high mRNA-protein expression correlation and coexpression correlation[J].Gene,2012,497(2):228 -36.
[8]Kraizer Y,Mawasi N,Seagal J,et al.Vascular endothelial growth factor and angiopoietin in liver regeneration[J].Biochem Biophvs Res Commun,2001,287(2):209 -15.
[9]Rubio L,Burgo J S,Morera C,et al.Morphometric study of tumor angiogenesis as a new prognostic factor in nasopharyngeal carcinoma patients[J].Pathol Oncol Res,2000,6(3):210 -6.