張彩喬 耿風(fēng)廷
(華北制藥金坦生物技術(shù)股份有限公司,河北 石家莊 050000)
蛋白質(zhì)的分離純化在現(xiàn)代醫(yī)學(xué)、藥學(xué)、生物化學(xué)等方面使用廣泛,是一項關(guān)鍵核心技術(shù)。尤其是隨著生物制藥的迅猛發(fā)展,蛋白質(zhì)作為藥品中的一部分應(yīng)用越來越廣泛,而作為藥品,如何將目的蛋白進行分離提純就顯得尤為重要。
每種蛋白間的大小、形狀、電荷、疏水性、溶解度和生物學(xué)活性都會有差異。蛋白質(zhì)分離提純就是利用不同蛋白間內(nèi)在的相似性與差異,將目的蛋白從其他蛋白中純化出來?,F(xiàn)在生物制藥研究中,尤其是大規(guī)模生物制藥生產(chǎn)上,蛋白質(zhì)分離純化技術(shù)主要應(yīng)用各項層析技術(shù),其中包括親和層析、離子交換層析、反相層析、疏水層析、分子篩層析等等。
在生物分子中有些分子的特定結(jié)構(gòu)部位能夠同其他分子相互識別并結(jié)合,如酶與底物的識別結(jié)合、受體與配體的識別結(jié)合、抗體與抗原的識別結(jié)合,這種結(jié)合既是特異的,又是可逆的,改變條件可以使這種結(jié)合解除。生物分子間的這種結(jié)合能力稱為親和力。親和層析就是根據(jù)這樣的原理設(shè)計的蛋白質(zhì)分離純化方法。
將具有特殊結(jié)構(gòu)的親和分子制成固相吸附劑放置在層析柱中,當(dāng)要被分離的蛋白混合液通過層析柱時,與吸附劑具有親和能力的蛋白質(zhì)就會被吸附而滯留在層析柱中。那些沒有親和力的蛋白質(zhì)由于不被吸附,直接流出,從而與被分離的蛋白質(zhì)分開,然后選用適當(dāng)?shù)南疵撘?,改變結(jié)合條件將被結(jié)合的蛋白質(zhì)洗脫下來。
離子交換層析是以離子交換劑為固定相,依據(jù)流動相中的組分離子與交換劑上的平衡離子進行可逆交換時的結(jié)合力大小的差別而進行分離的一種層析方法。
離子交換層析中,基質(zhì)是由帶有電荷的樹脂或纖維素組成。帶有正電荷的稱之陽離子交換樹脂;而帶有負電荷的稱之陰離子樹脂。離子交換層析同樣可以用于蛋白質(zhì)的分離純化。由于蛋白質(zhì)也有等電點,當(dāng)?shù)鞍踪|(zhì)處于不同的pH 條件下,其帶電狀況也不同。陰離子交換基質(zhì)結(jié)合帶有負電荷的蛋白質(zhì),所以這類蛋白質(zhì)被留在柱子上,然后通過提高洗脫液中的鹽濃度等措施,將吸附在柱子上的蛋白質(zhì)洗脫下來。結(jié)合較弱的蛋白質(zhì)首先被洗脫下來。反之陽離子交換基質(zhì)結(jié)合帶有正電荷的蛋白質(zhì),結(jié)合的蛋白可以通過逐步增加洗脫液中的鹽濃度或是提高洗脫液的pH 值洗脫下來。
在吸附層析中,高極性物質(zhì)在層析柱上吸附較牢,洗脫時發(fā)生拖尾現(xiàn)象和保留時間長的問題。如果在支持物上涂上一層高碳原子的疏水性強的烷烴類,洗脫液用極性強的溶劑,如甲醇和水的混合物。則被分離樣品中的極性強的物質(zhì)不被吸附,最先洗下來,得到較好的分離效果。這種層析法與普通的吸附層析法相反,故稱為反相層析。
疏水層析和反相層析(reversed phase chromatography)分離蛋白質(zhì)的依據(jù)是一致的,利用固定相載體上偶聯(lián)的疏水性配基與流動相中的一些疏水分子發(fā)生可逆性結(jié)合而進行分離。該方法基于的是蛋白質(zhì)的疏水差異,蛋白質(zhì)表面一般有疏水與親水集團,疏水層析是利用蛋白質(zhì)表面某一部分具有疏水性,與帶有疏水性的載體在高鹽濃度時結(jié)合。在洗脫時,將鹽濃度逐漸降低,因其疏水性不同而逐個地先后被洗脫而純化,可用于分離其它方法不易純化的蛋白質(zhì)。
一般而言,離子強度(鹽濃度)越高,物質(zhì)所形成的疏水鍵越強。影響疏水作用的因素包括:鹽濃度,溫度,pH,表面活化劑和有機溶劑。疏水層析的應(yīng)用與離子交換層析的應(yīng)用剛好互補,因此,可以用于分離離子交換層析很難或不能分離的物質(zhì)。
分子篩層析又稱為凝膠層析或凝膠過濾。分子篩層析是利用有一定孔徑范圍的多孔凝膠作為固定相,.對混合物中各組分按分子大小進行分離的層析技術(shù)。具有分子篩作用的物質(zhì)很多,如浮石、瓊脂、瓊脂糖、聚乙烯醇、聚丙烯酰胺、葡聚糖凝膠等,其中以葡聚糖凝膠應(yīng)用最廣。
凝膠是一種多孔性的不帶表面電荷的物質(zhì),當(dāng)帶有多種成分的樣品溶液在凝膠內(nèi)運動時,由于它們的分子量不同而表現(xiàn)出速度的快慢,在緩沖液洗脫時,分子量大的物質(zhì)不能進入凝膠孔內(nèi),而在凝膠間幾乎是垂直的向下運動,而分子量小的物質(zhì)則進入凝膠孔內(nèi)進行“繞道”運行,這樣就可以按分子量的大小,先后流出凝膠柱,達到分離的目的。
由于蛋白質(zhì)只有在其天然結(jié)構(gòu)狀態(tài)下才具有活性,才能具備相應(yīng)的功能。因此,在進行任何一種蛋白質(zhì)純化的時候,都要時刻注意維護它的穩(wěn)定性,保護它的活性,無論進行何種層析,都需要注意以下方面:
1)生產(chǎn)過程中考慮操作溫度,尤其是目的蛋白穩(wěn)定性較差的樣品,最好置于冰上或者在冷庫內(nèi)進行操作;即使是對溫度不敏感的樣品,也應(yīng)控制操作溫度不超過室溫,溫度過高會導(dǎo)致蛋白緩慢變性。
2)樣品濃度要控制在一定范圍內(nèi),蛋白濃度維持在μg/mL~mg/mL。
3)選用合適pH 的緩沖液,所使用的緩沖溶液pH 避免與蛋白質(zhì)等電點相同,防止蛋白質(zhì)的沉淀。
4)避免樣品反復(fù)凍融和劇烈攪動,以防蛋白質(zhì)的變性。
5)純化用緩沖溶液的溫度盡量控制穩(wěn)定,溫度過低則容易導(dǎo)致層析過程中產(chǎn)生氣泡,溫度過高則容易使蛋白質(zhì)變性。
6)盡量保證各步分離純化過程緊密相連,減少樣品放置時間,因純化過程為非無菌過程,如拖延時間過長,會導(dǎo)致樣品中菌量增加,進而導(dǎo)致樣品內(nèi)毒素水平急劇升高。
隨著科學(xué)技術(shù)的不斷發(fā)展,國家對藥品監(jiān)管力度的不斷加強,以及生物制藥領(lǐng)域市場競爭日益激烈,如何更好更快的將目的蛋白提純就愈發(fā)顯得重要,不僅要求純化收率的提高,更要保證分離純化的純度和質(zhì)量。現(xiàn)在針對不同產(chǎn)品、不同蛋白質(zhì)研發(fā)其專屬的、特異性的層析技術(shù)、層析介質(zhì)就成為蛋白質(zhì)分離純化領(lǐng)域一個重要的發(fā)展方向。