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      Livin基因在Ⅱ~Ⅲ期結(jié)直腸癌組織中的表達及臨床意義

      2014-07-18 12:06:49劉帥峰
      關(guān)鍵詞:試劑分化直腸癌

      劉帥峰

      ·臨床醫(yī)學·

      Livin基因在Ⅱ~Ⅲ期結(jié)直腸癌組織中的表達及臨床意義

      劉帥峰

      目的 探討組織Livin mRNA表達在直腸癌病理分期Ⅱ、Ⅲ期的差異性, 并對其臨床意義進行分析。方法 選取本院收治的Ⅱ、Ⅲ期直腸癌患者各30例, 行外科根治術(shù);取術(shù)后病理組織及周邊健康組織, 分別以RT-PCR的方法檢測Livin mRNA的陽性表達率, 對比其差異性;同時, 結(jié)合腫瘤體積、病理形態(tài)、Dukes分期、進展情況及患者預后等情況分析該差異表達基因所代表的臨床意義。結(jié)果 Ⅱ期直腸癌患者病理組織及周邊健康組織的Livin mRNA陽性表達率分別為63.3%、6.67%,Ⅲ期直腸癌患者相應(yīng)數(shù)據(jù)為86.7%、10%;兩組患者病理組織Livin mRNA陽性表達率均顯著高于周邊健康組織(P<0.05), 且Ⅲ期患者病理組織Livin mRNA陽性表達率顯著高于Ⅱ期患者病理組織(P<0.05)。Livin mRNA的陽性表達率與腫瘤分化程度及患者術(shù)后復發(fā)密切相關(guān)(P<0.05), 而與其大小、病理形態(tài)及Dukes分期無顯著關(guān)聯(lián)(P<0.05)。結(jié)論 Livin 可能通過激活腫瘤細胞的分化過程發(fā)揮致癌活性, mRNA呈陽性表達患者的腫瘤細胞可能具備更高的分化能力和術(shù)后復發(fā)率。

      Livin;mRNA表達;直腸癌;病理分期;臨床意義

      直腸癌在發(fā)病率和致死率上均居于各惡性腫瘤前列, 據(jù)流行病學調(diào)查結(jié)果顯示, 其發(fā)病年齡日趨年輕化, 發(fā)病群體日趨多極化, 已逐漸成為現(xiàn)代醫(yī)學發(fā)展道路上有待解決的緊迫問題之一。Livin是凋亡抑制蛋白(inhibitor of apoptosis protein, IAP)家族成員之一, 在消化系統(tǒng)、呼吸系統(tǒng)、生殖系統(tǒng)、循環(huán)系統(tǒng)等惡性腫瘤中均有高表達現(xiàn)象[1-3]。本實驗以直腸癌為研究重點, 探討Livin mRNA表達在直腸癌Ⅱ、Ⅲ期的差異性及其臨床意義, 報告如下。

      1 資料與方法

      1.1一般資料 選取本院收治的Ⅱ、Ⅲ期直腸癌患者各30例, 所有患者均行擇期外科根治術(shù)。兩組患者在年齡、性別及腫瘤Dukes分期等方面差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。

      1.1.1Ⅱ期:男14例, 女16例, 年齡33~72歲, 平均(57.4±14.7)歲。分化程度:低分化7例;中分化13例;高分化10例。Dukes分期:A期4例;B期11例;C期9例;D期6例。

      1.1.2Ⅲ期:男15例, 女15例, 年齡31~71歲, 平均(57.7±15.9)歲。分化程度:低分化4例;中分化12例;高分化14例。Dukes分期:A期5例;B期10例;C期8例;D期7例。

      1.2主要儀器 低溫超速離心機(Beckman, XL90);葡聚糖凝膠電泳及其配套裝置(北京六一儀器廠,DYY-4);全自動紫外-可見分析裝置(上海復日, FR200);Mastercycler pro梯度PCR儀(eppendorf, Mastercycler pro);微量電動組織勻裝器(美國KIMBLE, 749540);核酸蛋白測定儀(Eppendorf 公司, Biophotometerplus)等。

      1.3主要試劑

      1.3.1RNA提?。嚎俁NA提取試劑盒提取試劑盒(北京鼎國昌盛生物技術(shù)有限責任公司, NEP019-1);氯仿、無水乙醇等其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

      1.3.2RT試劑:Oligod (T)18 primers (TaKaRa 公司, D511);M-MLV RT (Promega 公司, M1701 );Ribonuclease Inhibitor (TaKaRa 公司, D2313A);10 mmol dNTP Mixture (TaKaRa公司, D4030RA);DEPC (Sigma 公司)等。

      1.3.3PCR試劑:2.5 mmol dNTP Mixture (TaKaRa公司, D4030A);rTaq酶 (TaKaRa公司, DRIOOA);DL500marker (TaKaRa公司, DL )等。

      1.3.4凝膠電泳試劑:瓊脂糖(BIOWEST, 91622);DNA green (北京天恩澤, 70303)等。

      1.4研究方法

      1.4.1RT-PCR方法 以總RNA提取試劑盒提取組織mRNA,使用Mastercycler pro梯度PCR儀自動完成常規(guī)反轉(zhuǎn)錄和擴增過程, 各反應(yīng)體系依據(jù)產(chǎn)品說明書設(shè)定。

      反轉(zhuǎn)錄條件:42℃ 30 min;82℃ 5 min。擴增條件:94℃ 2 min預變性;(94℃ 45 s, 55℃ 45 s, 72℃ 45 s)32循環(huán);72℃延伸5 min。擴增后所得產(chǎn)物進行3%瓊脂糖凝膠(含DNA green)電泳, 穩(wěn)壓100 V, 電泳40~50 min, 以全自動紫外-可見分析裝置觀察, 計算相對光度值?;蛞镄蛄幸姳?。

      1.4.2統(tǒng)計學方法 所得Livin mRNA陽性表達數(shù)據(jù)均以率或構(gòu)成比表示, 以統(tǒng)計學軟件SPSS17.0行χ2檢驗, 檢驗標準:α=0.05, P<0.05表示差異有統(tǒng)計學意義。

      2 結(jié)果

      2.1Ⅱ、Ⅲ期患者的Livin mRNA表達陽性率比較 兩組患者病理組織Livin mRNA陽性表達率均顯著高于周邊健康組織(P<0.05), 且Ⅲ期患者病理組織Livin mRNA陽性表達率顯著高于Ⅱ期患者病理組織(P<0.05)。見表2。

      2.2Livin mRNA的陽性表達率與腫瘤情況及患者預后的關(guān)系 Livin mRNA的陽性表達率與腫瘤分化程度及患者預后復發(fā)密切相關(guān)(P<0.05), 而與其大小、病理形態(tài)及Dukes分期無顯著關(guān)聯(lián)(P<0.05)。見表3。

      表1引物序列

      表2Ⅱ、Ⅲ期患者的Livin mRNA表達陽性率結(jié)果統(tǒng)計(n, %)

      表3Livin mRNA的陽性表達率與腫瘤情況及患者預后的關(guān)系(n, %)

      3 討論

      隨著惡性腫瘤研究領(lǐng)域的擴展及研究層次的遞進, 其分子生物學機制得到進一步挖掘;當前研究表明, 細胞無限制增殖和生長的異常行為過程是惡性腫瘤生成和進行性發(fā)展的重要條件, 凋亡因子及凋亡抑制因子的共調(diào)節(jié)在這一過程中起決定性作用[4]。Livin為近年發(fā)現(xiàn)的新型抗凋亡蛋白, 屬IAP家族成員之一, 基于其在多種惡性腫瘤中的廣泛性表達,迅速成為當前癌癥研究領(lǐng)域的熱點問題。研究表明, Livin的相關(guān)抗凋亡機制主要集中于兩條途徑[5,6]:①直接抑制凋亡蛋白酶活性;②通過活化TAK1/JNK1及PI3K/Akt信號傳導阻止TNF-α和IL誘導的細胞凋亡。

      本研究結(jié)果顯示, 直腸癌患者病理組織的Livin mRNA陽性表達率顯著高于周邊健康組織;且Ⅲ期癌患者病理組織的Livin mRNA陽性表達率顯著高于Ⅱ期患者;提示Livin mRNA陽性表達率與直腸癌的發(fā)生和進展有關(guān)。經(jīng)單因素分析, Livin mRNA的陽性表達率與腫瘤分化程度及患者預后復發(fā)密切相關(guān), 而與其大小、病理形態(tài)及Dukes分期無顯著關(guān)聯(lián)。進一步提示Livin可能通過激活腫瘤細胞的分化過程發(fā)揮致癌活性;同時, 也說明其mRNA呈陽性表達患者的腫瘤細胞可能具備更高的分化能力和術(shù)后復發(fā)率。

      [1] Chen H, Jin Y, Chen T, et al.The antitumor effect of human cord blood-derived dendritic cells modified by the livin α gene in lung cancer cell lines.Oncol Rep, 2013, 29(2):619-627.

      [2] Ye L, Li S, Ye D, et al.Livin expression may be regulated by miR-198 in human prostate cancer cell lines.Eur J Cancer, 2013, 49(3):734-740.

      [3] Liang YZ, Fang TY, Xu HG, et al.Expression of CD44v6 and Livin in gastric cancer tissue.Chin Med J (Engl), 2012, 125(17):3161-3165.

      [4] 崔陽陽,陸建波.Livin及其相關(guān)因子的最新研究進展.醫(yī)學綜述, 2012,18(5):651-653.

      [5] Zhu Z, Sun H, Ma G, et al.Bufalin Induces Lung Cancer Cell Apoptosis via the Inhibition of PI3K/Akt Pathway.Int J Mol Sci, 2012, 13(2):2025-2035.

      [6] 李辰生,王吉文.Livin抑制凋亡的作用機制及其與腫瘤治療的關(guān)系的研究進展.中國普通外科雜志, 2013,22(1):104-108.

      471000 鄭州大學附屬洛陽中心醫(yī)院胃腸胰腺外科

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