武曉旭,章超群,許 坤,徐興欣,吳永貴
近年來研究[1-2]表明炎癥機制是糖尿病腎病(diabetic nephropathy,DN)發(fā)生、發(fā)展的主要機制之一,而內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激 (endoplasmic reticulum stress,ERS)反應(yīng)可以引起一系列壓力信號的傳導(dǎo),其中包括氧化應(yīng)激和炎癥反應(yīng)。在體外培養(yǎng)的實驗[3]中,有學(xué)者用不同濃度的晚期終末產(chǎn)物刺激鼠足細胞,發(fā)現(xiàn)葡萄糖調(diào)節(jié)蛋白78(glucose-regulated protein 78,GRP78)的表達增加,同時誘導(dǎo)ERS。在用鏈脲佐菌素(streptozotocin,STZ)建立大鼠1型糖尿病模型的動物實驗[4]中,顯示模型組腎組織GRP78和CHOP/GADD153表達升高,表明ERS和DN相互聯(lián)系。白芍總苷(total glucosides of paeony,TGP)是從中國傳統(tǒng)中藥芍藥的干燥根中提取的混合物,具有抗炎和抑制自身免疫反應(yīng)的作用[5]。TGP在臨床上已用于類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎患者改善病情;在大量人及動物實驗[6-9]中,也表明其對系統(tǒng)性紅斑狼瘡、強直性脊柱炎、變應(yīng)性接觸性皮炎及佐劑性關(guān)節(jié)炎具有治療作用,且無明顯毒副作用。有研究[10]表明TGP對DN有明顯的保護作用,在此基礎(chǔ)上,該實驗從ERS通路觀察TGP對DN大鼠的影響。
1.1 材料
1.1.1 實驗動物 50只Munich-Wistar大鼠(購自安徽醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心),昆明種,普通級,180~200 g。
1.1.2 主要試劑 STZ(美國Sigma公司);尿白蛋白測定試劑盒(法國SPI公司);兔抗大鼠GRP78多克隆抗體(美國Santa Cruz公司);兔抗大鼠磷酸化的蛋白激酶樣內(nèi)質(zhì)網(wǎng)激酶(protein kinase R-like ER kinase,p-PERK)多克隆抗體及兔抗大鼠磷酸化的真核細胞翻譯起始因子2α(eukaryotic initiation factor 2α,p-eIF2α)多克隆抗體(美國 Cell Signaling 公司);山羊血清、3%H2O2去離子水、二氨基聯(lián)苯胺(DAB)顯色試劑盒、二步法免疫組化檢測試劑盒PV-9000(北京中杉金橋生物技術(shù)公司)。
1.1.3 干預(yù)藥物 TGP由安徽醫(yī)科大學(xué)魏偉教授惠贈。
1.2 方法
1.2.1 飼養(yǎng)條件 實驗前所有大鼠均在室溫(22±2)℃、相對濕度(55±5)%、光照周期12~12 h的環(huán)境中適應(yīng)飼養(yǎng)1周。實驗期間保證所有大鼠飲水、標(biāo)準(zhǔn)飲食充足,定時更換敷料,不予胰島素治療,連續(xù)觀察8周。
1.2.2 糖尿病大鼠分組和模型制備 大鼠適應(yīng)飼養(yǎng)1周后,被隨機分為對照組(n=10)、模型組(n=10)和 TGP給藥組(n=30)。STZ使用前用0.01 mmol/L的無菌檸檬酸緩沖液配制為6.5 g/L,pH 4.5,模型組和TGP給藥組大鼠腹腔單次注射STZ(65 mg/kg),對照組注射等量檸檬酸緩沖液。2~3 d后用血糖儀經(jīng)尾靜脈采血測血糖,隨機血糖≥16.7 mmol/L者視為糖尿病大鼠,TGP給藥組再隨機分為3組(n=10),TGP使用前溶于1%羧甲基纖維素鈉溶液中,每天按50、100、200 mg/kg灌胃給藥,對照組和模型組給予等量蒸餾水。
1.2.3 標(biāo)本收集 實驗8周末,用代謝籠收集所有大鼠24 h尿液,記尿量,置于-80℃冰箱保存待測尿白蛋白。稱量大鼠體重,腹腔注射戊巴比妥麻醉大鼠,行右頸總動脈插管取血,置于-20℃冰箱中待測血糖。再通過右頸總動脈插管注入生理鹽水反復(fù)灌洗腎臟,去除包膜后稱量腎重。
1.2.4 生化指標(biāo)的檢測 尿白蛋白含量使用酶聯(lián)免疫法測定,尿白蛋白含量與24 h尿量乘積即為UAER。血糖使用葡萄糖氧化酶法,用全自動生化分析儀測定。
1.2.5 免疫組化測定 GRP78、p-PERK 及 p-eIF2α的表達 腎組織用4%多聚甲醛溶液固定,石蠟包埋,制成2 μm厚經(jīng)多聚賴氨酸處理的切片,采用PV兩步法,石蠟切片烤片后常規(guī)脫蠟至水,微波熱修復(fù)抗原,3%H2O2去離子水室溫孵育以阻斷內(nèi)源性過氧化物酶,PBS沖洗,甩干后滴加山羊血清37℃孵育封閉非特異性抗原,甩去山羊血清,分別滴加GRP78一抗(1∶1 000),p-PERK一抗(1∶100)及p-eIF2α一抗(1∶100),用PBS代替一抗作為陰性對照,4℃過夜,PBS沖洗,依次滴加聚合物輔助劑和辣根酶標(biāo)記山羊抗兔/小鼠IgG多聚體37℃孵育,應(yīng)用二氨基聯(lián)苯胺(DAB)顯色,自來水充分沖洗、復(fù)染、脫水、透明、封片,鏡下觀察,陽性細胞呈棕黃色。
1.2.6 半定量分析 高倍鏡視野(×400倍)下每張切片隨機采集5個腎皮質(zhì)區(qū),使用Image Pro Plus 6.0圖像分析軟件處理圖像,用平均光密度(mean optical density,MOD)值判定結(jié)果。
1.3 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件進行分析,計量資料以±s表示,UAER為非正態(tài)分布資料,采用對數(shù)轉(zhuǎn)換后以幾何均數(shù)×/÷耐受因子表示。采用單因素方差分析。
2.1 各組一般情況及生化指標(biāo)的變化 實驗期間,模型組及TGP給藥組大鼠均出現(xiàn)體重減輕,多飲、多尿、多食。實驗8周末,TGP不能阻止大鼠血糖增高和體重減低。與對照組相比,模型組大鼠相對腎重(腎重/體重)明顯增加 (P<0.05),血糖、UAER顯著升高(P<0.01)。與模型組相比,各TGP給藥組大鼠相對腎重有所下降,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義;各TGP給藥組大鼠 UAER明顯下降(P<0.05,P<0.01),見表1。
表1 各組大鼠一般指標(biāo)變化(n=10,±s)
表1 各組大鼠一般指標(biāo)變化(n=10,±s)
與對照組比較:*P<0.05,**P<0.01;與模型組比較:#P<0.05,##P<0.01;a表示為幾何均數(shù)×/÷耐受因子
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2.2 各組GRP78蛋白的表達 GRP78在對照組遠曲小管和集合管上皮細胞胞質(zhì)中呈弱表達,在模型組表達增強,主要在近曲小管胞質(zhì)中,部分腎小球細胞胞質(zhì)也呈強陽性表達。與對照組相比,模型組大鼠GRP78蛋白在腎小球和腎小管-間質(zhì)中表達明顯升高(P<0.01)。與模型組相比,TGP各組大鼠GRP78在腎小球中表達低于模型組,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義;但在腎小管-間質(zhì)中表達明顯降低(P<0.01)。見表2,圖1A1~E1。
表2 各組大鼠腎組織免疫組化指標(biāo)GRP78變化(n=10,±s)
表2 各組大鼠腎組織免疫組化指標(biāo)GRP78變化(n=10,±s)
與對照組比較:**P<0.01;與模型組比較:##P<0.01
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2.3 各組p-PERK蛋白的表達 p-PERK在對照組大鼠腎小管上皮細胞內(nèi)呈弱表達,腎小球內(nèi)無表達。與對照組相比,模型組大鼠p-PERK蛋白在腎小管上皮細胞胞質(zhì)中表達明顯增強(P<0.01)。與模型組相比,TGP各組p-PERK蛋白在腎小管-間質(zhì)中表達明顯降低(P<0.01)。見表3,見圖1A2~E2。
2.4 各組 p-eIF2α蛋白的表達 對照組 p-eIF2α蛋白少量表達于腎小球與腎小管-間質(zhì)。與對照組相比,模型組大鼠p-eIF2α蛋白在腎小球及腎小管-間質(zhì)中表達均顯著增加 (P<0.01)。與模型組相比,TGP各組p-eIF2α蛋白在腎小球及腎小管-間質(zhì)中表達均明顯降低 (P<0.01)。見表4、圖1A3~E3。
圖1 各組腎組織中GRP78、p-PERK、p-eIF2α的表達 PV二步法×4001:GRP78;2:p-PERK;3:p-eIF2α;A:對照組;B:模型組;C:TGP 50 mg/(kg·d)組;D:TGP 100 mg/(kg·d)組;E:TGP 200 mg/(kg·d)組
表3 各組大鼠腎組織免疫組化指標(biāo)p-PERK變化(n=10,±s)
表3 各組大鼠腎組織免疫組化指標(biāo)p-PERK變化(n=10,±s)
與對照組比較:**P<0.01;與模型組比較:##P<0.01
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表4 各組大鼠腎組織免疫組化指標(biāo)p-eIF2α變化(n=10,±s)
表4 各組大鼠腎組織免疫組化指標(biāo)p-eIF2α變化(n=10,±s)
與對照組比較:**P<0.01;與模型組比較:##P<0.01
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內(nèi)質(zhì)網(wǎng)穩(wěn)態(tài)情況下,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜上有3種ERS元件與內(nèi)質(zhì)網(wǎng)分子伴侶GRP78結(jié)合,這些蛋白分別是肌醇需求酶1,蛋白激酶樣內(nèi)質(zhì)網(wǎng)激酶(protein kinase R-like ER kinase,PERK)和活化轉(zhuǎn)錄因子6。ERS發(fā)生時,為使細胞適應(yīng)應(yīng)激,GRP78離開上述3種跨膜蛋白,觸發(fā)未折疊蛋白反應(yīng)(unfolded protein response,UPR)[11]。PERK 是一種絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶,當(dāng)未折疊蛋白及錯誤蛋白在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)內(nèi)腔內(nèi)積聚時,PERK發(fā)生自身二聚化和磷酸化,繼而使eIF2α發(fā)生磷酸化,從而衰減大部分蛋白翻譯,消除不成熟蛋白,減輕內(nèi)質(zhì)網(wǎng)負荷[12]。
近年來越來越多的研究[13-14]顯示ERS與腎臟疾病聯(lián)系緊密。Lindenmeyer et al[15]以 DN 患者為研究對象,行腎穿刺或組織檢查,發(fā)現(xiàn)DN患者腎組織中UPR相關(guān)基因GRP78等的mRNA較對照組患者顯著增高,且ERS水平與DN的病變程度密切相關(guān)。另一研究中,研究者用STZ處理的9個月和22個月年齡的小鼠,經(jīng)過4個月的DM病程后,這些小鼠出現(xiàn)蛋白尿,肌酐升高,腎小球硬化,腎小管炎癥浸潤和纖維化,同時糖尿病組小鼠腎組織中GRP78、CHOP、p-PERK 和 p-eIF2α 表達增加,而在22個月的小鼠中表達更加明顯[16]。
對腎組織中ERS的抑制可能延緩DN的發(fā)展。4-苯基丁酸是一種分子伴侶,研究者用4-苯基丁酸處理糖尿病大鼠,結(jié)果顯示用藥組UAER較糖尿病組顯著降低,同時腎組織中GRP78和p-PERK的表達較糖尿病組明顯降低,炎癥因子及纖維化因子也顯著降低[17]。國內(nèi)也有動物模型實驗表明糖尿病大鼠腎小管中p-PERK和p-eIF2α較正常組增多,經(jīng)血管緊張素轉(zhuǎn)換酶抑制劑治療可明顯降低二者的表達[18]。均提示中斷ERS反應(yīng)在防治DN病程進展中具有重要的意義。
TGP為毛茛科植物芍藥的干燥根中提取的一組糖苷類物質(zhì),對T、B淋巴細胞的增殖有雙向調(diào)節(jié)作用,具有抗炎、抗氧化和免疫調(diào)節(jié)的作用,對類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎、系統(tǒng)性紅斑狼瘡及免疫性肝損害等疾病有明確療效。大量國內(nèi)研究[6-9]證實TGP對控制急慢性及免疫炎癥性疾病有明顯的作用,在對系膜增生性腎小球腎炎(mesangial proliferative glomerulonephritis,MsPGN)大鼠的實驗研究中,發(fā)現(xiàn)TGP可以改善MsPGN大鼠腎小球系膜細胞增生和系膜基質(zhì)聚積,同時減輕蛋白尿和血肌酐、尿素氮,提示TGP可以部分逆轉(zhuǎn)受損的腎小球病理改變[19]。該課題組前期研究[20-22]顯示 TGP既可減少 ICAM-1、IL-1及TNF-α,也可抑制氧化應(yīng)激,從而推測TGP對糖尿病大鼠腎臟的保護反應(yīng)與其抑制炎癥免疫反應(yīng)及氧化應(yīng)激有關(guān)。本實驗中,TGP給藥可以顯著降低模型組大鼠UAER,明顯減少腎組織中ERS相關(guān)蛋白 GRP78、p-PERK和 p-eIF2α的表達,提示TGP有保護DN大鼠腎臟的作用,并且可能與抑制DN大鼠腎組織中的UPR反應(yīng),抑制PERK-eIF2α通路有關(guān)。提示TGP對DN腎臟的保護作用可能與抑制ERS反應(yīng)有關(guān),但因ERS與炎癥反應(yīng)通過一系列信號傳導(dǎo)通路包括產(chǎn)生活性氧、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣離子的釋放、核因子κB和有絲分裂原激活蛋白激酶等相互關(guān)聯(lián)[2],其具體機制尚不明確,可在今后的研究中得以闡述。
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