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      多種乳酸菌混合制劑及發(fā)酵乳活菌計數方法的研究

      2014-04-29 08:23:18孫鳴序
      中外食品工業(yè) 2014年3期
      關鍵詞:乳酸菌計數

      孫鳴序

      摘要:本論文研究了目前市場上常用和即將要用于發(fā)酵產品中的幾個菌種,分別是保加利亞乳桿菌、嗜熱鏈球菌、嗜酸乳桿菌、動物雙歧桿菌和鼠李糖桿菌的混合菌液進行試驗。通過乳酸菌可發(fā)酵利用的糖不同,配制選擇培養(yǎng)基,對混合菌液通過平板計數的方法,得到混合菌液中的乳酸菌的種類和乳酸菌的數量。

      關鍵詞:乳酸菌 計數 培養(yǎng)基配

      中圖分類號:TQ921.3 文獻標識碼:A 文章編號:1672-5336(2014)06-0053-01

      近年來,我國乳品行業(yè)處于飛速發(fā)展的時期,大眾對乳酸菌于人體的保健作用的認識日益加深,市場上越來越多的具有功能性的乳酸菌被應用到乳制品的加工中。發(fā)酵產品的生產量、消費量和種類近年都有大幅度的提高。為了確保乳酸菌能起到保健作用,國家相關標準要求益生菌在保質期內的發(fā)酵乳制品的活菌數目要大于106cfu/mL。

      選擇性計數性兩者兼顧的培養(yǎng)基,大多數是針對一種或兩種益生菌,而且這些培養(yǎng)基大多組分復雜,需要的培養(yǎng)時間長,準確計數菌群中活菌的生長水平低。為了獲得更好的鑒別性和選擇性,需要加入例如卡那霉素、新霉索、丙酸鈉、山梨酸和疊氮化鈉等抑菌素,這些抗生素對乳酸菌的計數有不可忽視的影響。加強益生菌相關產品的檢測,對于提高產品質量,保護消費者的利益及健康,都有重要的意義。

      2 選擇性培養(yǎng)基的研究

      2.1 培養(yǎng)基配置原理

      氯化鋰從1980年,就被應用在選擇性培養(yǎng)基中,有關于LiCL的進一步研究發(fā)現,在不含有其他抑制物質存在的情況下,低濃度的氯化鋰對保加利亞乳桿菌的生長有抑制作用。在濃度到達0.05%的時候,保加利亞乳桿菌不能生長。氯化鋰用于選擇計數雙歧桿菌和保加利亞乳桿菌,選擇準確率可以達到95%[1]。

      各種乳酸菌對不同的糖利用能力和程度都不同,同一種屬內的乳酸菌,各種菌株對同一種單糖的分解利用能力也有所不同。雖然有許多糖,是大多數乳酸菌都可以利用的,但是還有很多糖如蔗糖是只有少數乳酸菌可以利用的。微生物在生長的過程中,如果沒有可以利用的糖類作為碳源,就會以含有碳鏈結構的其他成分作為碳源,用以維持生長,但是會嚴重影響乳酸菌的生長速度和數量[2]。

      糖源是細胞的重要組成成分占細胞干物質的50%以上[3],是細菌生長的重要能量來源,所以對糖源的需求非常大。在培養(yǎng)基中主要是營養(yǎng)成分,其中糖原方面,單糖優(yōu)于二糖,己糖優(yōu)于戊糖,多數培養(yǎng)基的碳源都是葡萄糖或乳糖等。乳酸菌可利用的糖的種類不同,用于選擇計數的培養(yǎng)基,通過改變糖原,有良好的效果[4]。

      2.2 選擇培養(yǎng)基的驗證

      2.2.1 實驗方法

      實驗主要采用對已知菌種和菌數的發(fā)酵產品的計數驗證方法對培養(yǎng)基配方進行驗證。選用已知純菌液混合后發(fā)酵脫脂乳,對已知含量和種類的菌粉進行計數培養(yǎng),其次對其發(fā)酵產物進行計數,通過檢出率來驗證培養(yǎng)基配方。

      2.2.2 驗證結果

      (1)混合菌液在43℃時的發(fā)酵能力沒有純菌液的發(fā)酵能力好,需要六個小時,用時比較長,同時,在發(fā)酵結束時,乳凝固品質不高。各菌種的生長均橫。(2)在菌粉中,此選擇計數方法也有很好的檢出率,全部能夠達到90%以上。

      3 結語

      對多種乳酸菌的選擇培養(yǎng)基的配方和培養(yǎng)條件進行研究,得到了針對嗜熱鏈球菌、保加利亞乳桿菌、鼠李糖乳桿菌、動物雙歧桿菌和嗜酸乳桿菌的混合菌液的選擇培養(yǎng)基。其中嗜熱鏈球菌的選擇性培養(yǎng)基為LiCl-MRS培養(yǎng)基,嗜酸乳桿菌的選擇性培養(yǎng)基為甘露醇-MRS培養(yǎng)基,動物雙歧桿菌的選擇性培養(yǎng)基為木糖-MRS培養(yǎng)基,鼠李糖乳桿菌的選擇性培養(yǎng)基為鼠李糖-MRS培養(yǎng)基。最適合的培養(yǎng)條件為37℃、厭氧、傾注法培養(yǎng)混合菌液。

      參考文獻

      [1]Arroyo, L., Cotton, L. N., & Martin, J. H. (2008). Evaluation of mediafor enumeration of Bi,dobacterium adolescentis, B. infantis and B. longum from pure cultures. Cultured Dairy Products Journal, 29(2), 20-24.Beerens, H. (1990). An elective and selective isolation medium forBixdobacterium spp. Letters in Applied Microbiology, 11, 155-157.

      [2]Dave, R. I., & Shah, N. P. (2009). Evaluation of media for selectiveenumeration of Streptococcus thermophilus, Lactobacillus delbrueckiissp. bulgaricus, Lactobacillus acidophilus, and bi"dobacteria. Journalof Dairy Science, 79, 1529}1536.Ghoddusi, H. B., & Robinson, R. K. (1996). Enumeration of startercultures in fermented milks. Journal of Dairy Research, 63, 151}158.

      [3]Gomes, A. M. P., Malcata, F. X., Klaver, F. A. M., & Grande, H. J.(2007). Incorporation and survival of Bixdobacterium sp. strain Boand Lactobacillus acidophilus strain Ki in a cheese product. Netherlands Milk Dairy Journal, 49,71,95.IDF (1995). Detection and enumeration of Lactobacillus acidophilus.Bulletin No. 306/1995.

      [4]Kailasapathy, K., & Rybka, S. (2009). Lactobacillus acidophilus and Bixdobacterium spp.*their therapeutic potential and survival in yogurt. Australian Journal of Dairy Technology, 52, 28-33.

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