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      膠體金法與熒光RT-PCR法檢測禽流感病毒結(jié)果比對分析

      2014-04-20 01:54:22馮秀紅曹建偉陸巧芬馮開容陳修鄧劉廣芹關(guān)建新
      養(yǎng)禽與禽病防治 2014年12期
      關(guān)鍵詞:膠體金禽流感抗原

      馮秀紅 曹建偉 陸巧芬 馮開容 陳修鄧 劉廣芹 關(guān)建新

      (廣東省江門市動物疫病預(yù)防控制中心 廣東江門 529000)

      自2013年4月報道人感染H7N9流感以來,禽流感疫病的防控與監(jiān)測再一次引起社會各界的關(guān)注[1-2]。用于禽流感病毒的檢測方法主要包括傳統(tǒng)的病毒分離鑒定、血清學(xué)方法和分子生物學(xué)方法等,其中分子生物學(xué)方法有著靈敏、特異、快速、準(zhǔn)確及易于操作等優(yōu)點,成為當(dāng)前禽流感病毒檢測的主要發(fā)展方向[3]。江門市動物疫病預(yù)防控制中心在嚴(yán)格進行日常的禽流感疫病監(jiān)控的同時,通過增加對活禽批發(fā)市場的抽樣檢測數(shù)量,及時監(jiān)測并掌握疫病特別是禽流感疫病的流行及發(fā)展動態(tài)。對于所采集到的禽流感樣品,如,咽/泄殖腔拭子、環(huán)境樣品等,從經(jīng)濟、方便和快捷的角度考慮,疫控中心一向選用膠體金方法進行檢驗。但面對來勢洶洶的禽流感,要提高檢測的準(zhǔn)確度和檢測速度就要求采用檢測結(jié)果更準(zhǔn)確的國標(biāo)熒光RT-PCR法,此法具有用樣少、特異性強、敏感性高及快速準(zhǔn)確等特點,大大縮短了對AIV的檢出時間,為我國禽流感的綜合防制提供了先進、有效的早期快速診斷技術(shù)[4]。

      本著“公正、科學(xué)、準(zhǔn)確、高效”的實驗室管理方針,為確保對禽流感疫病檢測結(jié)果的準(zhǔn)確性,自2013年10月起,實驗室就嘗試采用不同的檢測方法進行比對試驗,通過對江門市區(qū)內(nèi)耙沖市場、江南批發(fā)市場及新會奇榜市場3個活禽交易批發(fā)市場每月2次隨機定量抽樣,然后對抽取的樣品采用膠體金與國標(biāo)熒光RT-PCR2種方法進行檢測結(jié)果比對試驗,根據(jù)實驗結(jié)果分析選取最合適的實驗檢測方法。得出結(jié)論是為了確保檢測的準(zhǔn)確性,在重要和關(guān)鍵時期,選用熒光RT-PCR樣品進行檢測是比較合適的。膠體金法檢測相對熒光RT-PCR法有一定漏檢和誤檢現(xiàn)象,只適用于正常時期的一般性檢測。

      1 研究內(nèi)容

      1.1 實驗材料

      實驗樣品采集要求:每月隨機2次,到3個市場采集至少3個不同品種的禽只各10份咽/泄殖腔拭子[5]、10份環(huán)境樣品(混樣)。

      1.2 實驗試劑

      禽流感快速檢測條(廣州瑞森生物科技有限公司),韓國Anigen禽流感快速診斷試劑卡(韓國Anigen),禽流感病毒通用型熒光RT-PCR檢測試劑盒(深圳澳東檢驗檢測科技有限公司),內(nèi)含RNA提取液、反應(yīng)液、陽性對照、陰性對照、tap酶、反轉(zhuǎn)錄酶、RT-PCR反應(yīng)液和DEPC水;自備:氯仿、異丙醇和75%酒精。

      1.3 實驗方法

      1.3.1 熒光RT-PCR法(參照禽流感病毒通用熒光RT-PCR檢測方法(GB/T19438.2-2004))

      (1)取若干個Eppendorft管,分別加入陰陽對照和已處理的樣品200μL,加入裂解液600μL,吸打混勻,再加入200μL氯仿,振蕩混勻,靜置5min,12000rpm離心10min。

      (2)吸取上層液相轉(zhuǎn)入新的eppendorft 管 中 , 再 加 入400μL-20℃預(yù)冷的異丙醇,顛倒混勻,靜置5min,12000rpm離心10min。

      (3) 輕輕倒去上清,加入700μL75%乙醇,顛倒?jié)櫹磶状危?2000rpm離心5min。輕輕倒去上清,倒置于吸水紙上,盡量沾干液體。

      (4)4000rpm離心10s,用微量移液器盡量將殘余液體吸干,室溫干燥1~5min。

      (5)加入15μLDEPC水,輕彈混勻,溶解管壁上的RNA,-18℃以下保存?zhèn)溆谩?/p>

      (6)每份總體積25μL。取19μLRT-PCR反應(yīng)液 (用前混勻)、0.5μLtap酶、0.5μL反轉(zhuǎn)錄酶,5μL樣品RNA。反應(yīng)體系配制如表1。

      (7)取20μL反應(yīng)體系配制液,分裝成n份,分別加入5μL樣品RNA。做好標(biāo)記,在熒光PCR儀上進行以下循環(huán):50℃20min,95℃3min;擴 增 條 件 為95℃5s,55℃20s,72℃20s,5個循環(huán)95℃5s,60℃40s,40個循環(huán),在60℃處收集熒光。

      1.3.2 膠體金法

      操作方法[6]:將采集樣品浸入樣品稀釋液,充分?jǐn)嚢杌靹蚝?,靜置少許時間,用一次性滴管取上清液(樣品若不能立即測試,應(yīng)冷藏保存,超過24小時,應(yīng)冷凍保存)。將未開封的試紙卡和檢測樣品恢復(fù)至室溫。將試紙卡水平放置,用滴管向試卡孔緩慢逐滴加入3滴不含氣泡的檢測液,5分鐘判斷結(jié)果。

      2 結(jié)果與分析

      膠體金法和熒光RT-PCR法檢測3次(91、96、96份)拭子抗原,結(jié)果見表2、表3和表4。

      (1)由表1可見,2013年10月15日91份拭子,用膠體金法(瑞森)檢測禽流感抗原,陽性23份,陽性率25.27%;用熒光RT-PCR法檢測禽流感抗原,陽性21份,陽性率23.08%。2013年11月5日96份拭子,用膠體金法(瑞森)檢測禽流感抗原,陽性23份,陽性率23.96%;用膠體金法(韓國Anigen)檢測禽流感抗原,陽性0份,陽性率0;用熒光RT-PCR法檢測禽流感抗原,陽性22份,陽性率22.92%。2013年11月12日96份拭子,用膠體金法(韓國Anigen)檢測禽流感抗原,陽性1份,陽性率1.04%;用熒光RT-PCR法檢測禽流感抗原,陽性22份,陽性率22.92%。

      表1 反應(yīng)體系

      表2 膠體金法和熒光RT-PCRifc檢測禽流感抗原結(jié)果數(shù)據(jù)匯總

      表3 膠體金法(瑞森)和熒光RT-PCR法檢測禽流感抗原結(jié)果符合情況

      表4 膠體金法(韓國Anigen)和熒光RT-PCR法檢測禽流感抗原結(jié)果符合情況

      (2)由表2可見,2種方法檢測結(jié)果不相符的有81份。其中38份膠體金法(瑞森)為陰性,熒光RT-PCR法檢測為陽性;43份體金法(瑞森)為陽性,熒光RT-PCR法檢測為陰性。由表3可見,2種方法檢測結(jié)果不相符的有85份。其中44份膠體金法(韓國Anigen)為陰性,熒光RT-PCR法檢測為陽性;1份膠體金法(韓國Anigen)為陽性,熒光RT-PCR法檢測為陰性。膠體金法檢測相對熒光RT-PCR法有一定漏檢和誤檢現(xiàn)象存在。

      (3)由表2可見,相對熒光RT-PCR法檢測,膠體金法(瑞森)檢測陽性(a)為3份,陰性(d)為103份,假陽性(b)為43份,假陰性(c)為38份。膠體金法檢測靈敏度=a/(a+c)×100%=7.32%;特異度=d/(b+d)×100%=70.55%;漏檢率=c/(a+c)×100%=92.68%;誤診率=b/(b+d)×100%=29.45%;診斷符合率=(a+d)/(a+b+c+d)×100%=56.68%。由表3可見,相對熒光RT-PCR法檢測,膠體金法(韓國Anigen)檢測陽性(a)為0份,陰性(d)為147份,假陽性(b)為1份,假陰性(c)為44份。膠體金法檢測靈敏度=a/(a+c)×100%=0%;特異度=d/(b+d)×100%=99.32%;漏檢率=c/(a+c)×100%=100%;誤診率=b/(b+d)×100%=0.67%; 診斷符合率=(a+d)/(a+b+c+d)×100%=76.56%。

      (4)從分析可知,兩家公司的速測條檢測結(jié)果假陰與假陽性情況都比較嚴(yán)重,假陽性使正常健康的禽只被誤診為患病禽只,這對養(yǎng)殖戶與銷售檔主都可能帶來不必要的損失,而假陰性使患病禽只被誤診為正常健康禽只,則不能及時有效地發(fā)現(xiàn)疫病的發(fā)生并杜絕疫病的傳播,這對于禽流感疫病的監(jiān)測防控是一個嚴(yán)重的漏洞。

      (5)膠體金法因其使用方便,檢測時間短,而且成本較低,面對大量檢測的樣品,可以相對降低實驗經(jīng)費的支出,節(jié)省時間,但結(jié)果誤差率較大,尤其是假陽性率過高;熒光RT-PCR檢測結(jié)果準(zhǔn)確,但其試劑相對較貴,實驗步驟復(fù)雜,實驗硬件要求高,面對大量檢測時,在時間與經(jīng)費方面考慮,都存在實質(zhì)性的可行性操作問題。為了確保檢測的準(zhǔn)確性,在重要和關(guān)鍵時期,選用熒光RT-PCR樣品進行檢測是比較合適的。這次研究試驗為今后的工作開展指明了方向。

      [1]孫國根,記者王春項錚,發(fā)現(xiàn)新型人感染H7N9禽流感病毒[N].科技日報,2013年4月13日第001版.

      [2]通訊員朱海洋,記者潘劍凱,H7N9禽流感研究取得重大突破[N].光明日報,2013年4月28日第002版.

      [3]柯艷坤,陳曉春,齊巖,等.禽流感病毒檢測方法的研究進展[J].中國家禽,2008年第30卷第14期.

      [4]EspyMJ,UhlJR,SloanLM,etal.Real-timePCRinclinicalmicrobiology:applicationsforroutine laboratorytesting[J].ClinMicrobiol Rev,2006,19(1):1652256.

      [5]包紅梅,王秀榮,劉麗玲,等.禽流感病毒一步法RT-PCR檢測方法的建立[J].中國獸醫(yī)科學(xué),2006,36(09):701-706.

      [6]彭伏虎,胡思順,王政,等.通用型禽流感病毒膠體金快速檢測試紙條的研制與應(yīng)用研究[C].首屆中國獸藥大會——獸醫(yī)生物制品學(xué)、獸醫(yī)微生物學(xué)學(xué)術(shù)論壇論文集(2008).

      [7]向林遠(yuǎn),杜國芹.膠體金法與ELISA法檢測豬瘟抗體結(jié)果對比分析[J].湖北畜牧獸醫(yī),2012年7月10日第8期.

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